葡萄皮花色苷的提取及稳定性研究（二）的论文

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(33)正交表进行正交试验，以花色苷提取液吸光值为考察指标，选出葡萄皮花色苷的最佳提取条件。见表3-1 因素水平表。表3-1 葡萄皮花色苷提取因素水平实验表代号abc水平温度ph乙醇浓度%123506070608095试验安排中的各个因素是随机安排的，每一行为一个试验。试验结果及分析见表3-2 l9 (33)正交试验结果及分析。表3-2 正交试验结果及直观分析表试验号abc吸光值温度ph乙醇浓度111121123113412151226123713181329133102111121212213132211422215223162311723218233193112031221313223212332224323253312633227333k1t=k2k3k1k 2k 3r表3-2中k1行的数值，即依次为ka1、kb1、kc1表示为因素a在1水平时所对应od530值之和，即ka1= + + + + + + + + = 。kb1、kc1同理。表3-2中k2行的数值，即依次为ka2、kb2、kc2。kc2表示为因素a在2水平时所对应的od530值之和，即ka2= + + + + + + + + =。kb2、kc2同理。表3-2中k3行的数值，即依次为ka3、kb3、kc3。kc3表示为因素c在3水平时所对应的od530值之和，即ka3= + + + + + + + + =。kb3、kc3同理。表3-2中k1行的数值，即依次为ka1、kb1、kc1。ka1=ka1/9=/9=。kb1、kc1 同理，k2、k3行的数值所得的方法与k1同理。表3-2中r行的数值，依次为ra、rb、rc。ra的数值是因素a列k的最大值减去k的最小值，即ra=kamaxkamin=。rb、rc同理。根据r值的大小来确定葡萄皮花色苷的提取温度、ph值、乙醇浓度这三个因素对于本试验的显著性。r值越大，则该因素显著性越大。根据表中r的值可确定以上三个因素的显著性是：bac。表3-2中三个因素的优水平的确定是以k值为依据。例如因素a列，k2k1k3,则因素a中2水平为优水平；又如因素b列，k1k2k3，则因素b中1水平为优水平。依次类推可得试验范围内的优水平为a2、b1、c2，即葡萄皮花色苷的提取温度为60、ph值为、乙醇浓度为80%。葡萄皮花色苷的稳定性研究 稳定剂的选取结果 取葡萄皮花色苷提取液稀释10倍，取四份样液，每份10ml，分别加入等量的%的柠檬酸、l-谷氨酸、半胱氨酸、抗坏血酸溶液各10ml，在80的条件下恒温3h，每隔30 min取样一次，结果见图3-4。图3-4 稳定剂的选取结果从图3-4可以明显看出，加入稳定剂对葡萄皮花色苷的稳定性有一定效果，随着加热时间增加，吸光值不断的下降，而且可以看出柠檬酸下降的最慢，说明柠檬酸对葡萄皮花色苷的稳定性效果更好。稳定剂用量的选取结果 对已选取的稳定剂进行用量试验，分别配置%、%、%、%、%的柠檬酸，在80的条件下恒温2h，每隔30 min取样一次，结果见图3-5。图 3-5 柠檬酸的用量测定结果从图3-5可以明显看出，%柠檬酸的葡萄皮花色苷溶液下降趋势要比对%柠檬酸的葡萄皮花色苷溶液下降趋势小，由于%、%、%柠檬酸的葡萄皮花色苷溶液出现不等量的沉淀，故%柠檬酸对葡萄皮花色苷溶液的稳定性效果更好。温度对葡萄皮花色苷稳定性影响实验 取一定量葡萄皮花色苷提取液，用蒸馏水稀释10倍，分别加入等量的稳定剂分别置于70、80、90恒温下，每30 min测定溶液中花色苷的浓度，结果见图3-6。图 3-6温度对葡萄皮花色苷稳定性影响结果从图3-6可以明显看出，随着温度的提高和加热时间的延长，花色苷溶液的吸光度值变化明显，趋于减小，说明花色苷的耐热性差。在加入稳定剂柠檬酸后，则可以有效地提高花色苷对热的耐受性，其吸光度值均比对照变化小。故随着温度的升高花色苷降解速度加快，稳定性逐渐下降。不同类型光照对葡萄皮花色苷稳定性影响实验 取葡萄皮花色苷提取液稀释20倍，分别加入等量的稳定剂分置于日光灯、自然光、避光条件下，每天定时测定溶液中花色苷的浓度，结果见图3-7。图 3-7不同类型光照对葡萄皮花色苷稳定性影响结果从图3-7可以明显看出，光照对花色苷的稳定性有较大影响。葡萄皮花色苷在避光保存时稳定性最好；在自然光条件下的葡萄皮花色苷降解速率最高。这是由于光照可以引起花色苷降解生成c4羟基的中间产物，该中间产物在c2位上水解生成查耳酮后进一步转变为2，4，6-三羟基苯甲醛以及取代的苯甲酸等产物，因此光也能促使花色苷降解褪色。氧化剂对葡萄皮花色苷稳定性影响实验 取一定量葡萄皮花色苷提取液，用蒸馏水稀释10倍，分别加入h2o2，使含量分别达到0%、%、%、%、%，室温静置1h，结果见图3-8。图3-8氧化剂对葡萄皮花色苷稳定性影响结果从图3-8可以明显看出，h2o2对葡萄皮花色苷的稳定性有很大影响。随着h2o2浓度的升高，葡萄皮花色苷的稳定性也逐渐下降。在%是影响最大。说明h2o2对葡萄皮花色苷的稳定性存在着很大的破坏作用，能促进葡萄皮花色苷的降解。这可能是因为h2o2可直接亲核进攻花色苷的c位，使花色苷开环生成查耳酮，查耳酮进一步降解生成各种无色的酯类物质和香兰素的衍生物，这些氧化产物或者进一步降解成小分子物质，或者相互之间发生聚合反应，从而导致花色苷的降解。还原性物质对葡萄皮花色苷稳定性影响实验 取一定量葡萄皮花色苷提取液，用蒸馏水稀释10倍，分别加入不同质量的亚硫酸钠，使溶液中亚硫酸钠分别达到0、10-5 mol/l、10-5mol/l、10-5mol/l、1010-5mol/l，室温静置1h，结果见图3-9。图 3-9还原性物质对葡萄皮花色苷稳定性影响结果从图3-9可以明显看出，亚硫酸钠对葡萄皮花色苷的稳定性有一定影响。随着na2so3浓度的升高，葡萄皮花色苷的稳定性也逐渐下降。说明低浓度的亚硫酸钠对葡萄皮花色苷的稳定性没有太大影响，而高浓度的亚硫酸钠会在一定程度上加速葡萄皮花色苷的降解。食品防腐剂对葡萄皮花色苷稳定性影响实验 取一定量葡萄皮花色苷提取液，用蒸馏水稀释10倍，分别加入不同质量的苯甲酸钠，使溶液中苯甲酸钠的含量分别达到0%、%、%、%、%，室温静置1h，结果见图3-10。图 3-10食品防腐剂对葡萄皮花色苷稳定性影响结果从图3-10可以明显看出，苯甲酸钠这种常用的食品防腐剂对葡萄皮花色苷的稳定性并无较大影响。随着苯甲酸钠含量的提高，花色苷的吸光值呈递减趋势，但是溶液的颜色变化不大。糖对葡萄皮花色苷稳定性影响实验 取一定量葡萄皮花色苷提取液，用蒸馏水稀释10倍，分别加入不同质量的蔗糖，使溶液中蔗糖含量分别达到 0%、%、%、%、%，室温静置1h，结果见图3-11。图 3-11糖对葡萄皮花色苷稳定性影响结果从图3-11可以明显看出，蔗糖对葡萄皮花色苷的稳定性无较大影响。当蔗糖浓度在0%范围内，随着浓度的增大，花色苷的吸光值呈递减趋势，但是溶液的色泽无明显变化。结 论 本课题以葡萄皮为原料，采用单因素轮换实验和正交试验相结合的方法研究不同因素即温度、ph值、乙醇浓度对葡萄皮花色苷提取的影响，同时对葡萄皮花色苷在不同条件下的稳定性进行研究，测定温度、光照、蔗糖、防腐剂、还原性物质、氧化性物质对葡萄皮花色苷的稳定性的影响。得到以下结论：超声波辅助提取葡萄皮中花色苷的单因素试验和正交试验表明，在提取温度为60，提取液的乙醇浓度为80%，提取液ph为的条件下,用超声波辅助法提取葡萄皮中花色苷的提取效果最好；在正交试验设定的水平范围内，提取液 ph 值对花色苷提取率有显著性影响。葡萄皮花色苷的稳定性实验表明，温度和光照对葡萄皮花色苷的稳定性有很大影响。在低温条件下溶液中的葡萄皮花色苷较为稳定，热降解速度较慢，随着温度的升高葡萄皮花色苷降解速度加快，稳定性逐渐下降。在同一温度下，葡萄皮花色苷在避光保存时稳定性最好，而当葡萄皮花色苷溶液处于自然光照射条件下时，葡萄皮花色苷降解速率最高。蔗糖、防腐剂苯钾酸钠对葡萄皮花色苷的稳定性无明显影响。亚硫酸钠这类还原物质对葡萄皮花色苷的稳定性有一定影响，但不是很明显。h2o2对葡萄皮花色苷的稳定性有很大影响，能促进葡萄皮花色苷的降解。参考文献 1 , timberlake. anthocyanins as natural food colours-selected aspectsj. foodchenmistry ,1997,58:1031092 mann j. secondary metabolismm. london:oxford univ. press,1987. 275285.3 bell charwood. secondary plant productsj. encyclopedia of plantphysiology,1980,8(1):340349.4 reinert,yeoman. plant cell and tissue culturem. springer verlag,49.5 j b harborne. the chromatographic identification of anthocyanin pigmentsj. journal of chromatography,1958 ,1:473 4886 yoshimoto m, okuno s, yoshinaga m, et al. antimutagenicity of sweet potato (ipomoea batatas)roots j. bioscience-biotechnology and ,63(3):5375417 suda i, oki t, masuda m, et al. direct absorption of acylated anthocyanin in purple-fleshed sweetpotato into rats j.journal of agricultureand food chemistry. 2002,50(6):167216768 高锦明主编,植物化学m. 北京:科学出版社 ,2003:156-1649 刘邻渭主编,食品化学m. 北京:科学出版社 ,2003:156-16410 丁锐.国外花色素苷的研究现状与进展j.汉中师范学院学报(自然科学),2002(2),22:73-7911 任雁,张惟广.花色素苷的研究进展j. 中国食品添加剂，2006（4）：71-7712 庞志申.花色苷研究概况j.北京农业科学,2000,18(5):374213 卢钰,董现义,杜景平.花色苷研究进展j.山东农业大学学报(自然科学版),2004,35(2): 31532014 温普红,王晓玲,杨得锁.葡萄籽中花色素的分离研究j.精细化工,2001,18(4):21821915 邓军哲,屈慧鸽.葡萄花色素的研究概况j.葡萄栽培与酿酒,1996,(2):252716 段长青,贺普超,康靖全.中国葡萄野生种花色素双糖苷的研究j.西北农业大学学报,1997,25(5):232817 唐传核,彭志英.天然花色苷类色素的生理功能及应用前景j.食品添加剂,2000(1):262818 唐传核,杨晓泉.葡萄及葡萄酒生理活性物质的研究概况()生理活性物质j.中国食品添加剂,2003(1):414819 韩富亮.葡萄与葡萄酒花色素苷 hplc 指纹图谱的初步研究.硕士论文,200420 任玉林,李华,邴贵德等.天然食用色素-花色苷j.食品科学,1995,16(7):222721 高爱红,童华荣.天然食用色素花青素研究进展j.保鲜与加工,2001,(3):252722 郭金耀,杨晓铃.葡萄皮色素的提取及其性能研究j.山西农业大学学报,1994,14(4):41541823 杨贤松,杨占苗,高峰. 紫色甘薯色素的研究进展j.食品科学,2006,22(4):949824 邓洁红,谭兴和,潘小红等.葡萄花色苷研究进展j.2006,24(6):