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荧光定量pcr基础,纲要,定量pcr介绍荧光定量pcr化学原理仪器的校正定量pcr实验要素数据分析定量pcr常见故障排查常见应用,定量pcr介绍,什么是荧光定量pcr,指在pcr反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个pcr进程，使每一个循环变得“可见”，最后通过ct值和标准曲线对样品中的dna(orcdna)的起始浓度进行定量的方法。,定量pcr体系,普通的pcr体系模板,引物,dntps,buffer,taq酶加入各种类型的荧光染料,定量pcr原理,与传统pcr一样,反应在温度模块里循环进行理论上每经过一个循环目的基因的数量都会增加一倍每个循环结束后,定量pcr仪器通过不同的滤光片记录荧光信号在扩增过程中,荧光信号随着pcr产物的增加而增强,光学结构简图,典型的pcr四阶段,平台期,线性增长期,指数增长期,基线期,pcr理论方程,n=n0 x(1+e)nn=产物分子数n0=起始分子数e=扩增效率n=循环次数pcr方程只在指数期成立,荧光pcr信号方程,什么是阈值,高于背景荧光强度的值被确定为阈值控制在扩增曲线的指数增长阶段范围之内。阈值线与扩增曲线的交叉点确定ct值。,线性图谱,半对数图谱,ct值由阈值确定,ct值：c代表cycle，t代表阈值(threshold)，ct值的含义是：每个反应管内的荧光信号到达设定的阈值时所经历的循环数。,数学关系,log浓度与ct呈线性关系，根据样品扩增达到阈值的循环数就可计算出样品中所含的模板量。,定量pcr的优点,敏感度:可以检测低拷贝的目的基因。典型的单拷贝检测(如果有足够的重复运行,泊松分布显示63%有扩增)高分辨率:1倍分辨率动力学范围宽:约9个数量级.快:节省时间和劳力(不需要跑胶).安全:不用eb或放射性物质,荧光定量pcr化学原理,两种化学方法,探针法,染料法,taqman探针法原理,完整的探针：5端荧光基团吸收能量后将能量转移给临近的3端荧光淬灭基团（发生荧光共振能量转移，fret）退火，探针与模板结合，引物在聚合酶作用下进行延伸反应，遇到探针时发挥3-5外切酶活性将探针切碎到反应体系中报告基团与淬灭基团距离变大，在激发光的作用下发荧光,taqman探针设计要点,mgb探针,r：荧光报告基团nfq：非荧光淬灭基团mgb：小沟结合物（增加探针tm值）,mgb探针的优势,提高信噪比没有背景荧光更高的淬灭效率提高tm值15mer提高18探针更短只要13-19个碱基更多一重pcr（淬灭基团不占通道）需要与模板序列完全匹配才可以结合（适合检测snp）兼并、探针量高的情况也可结合,染料法原理,sybrgreeni是一种dna小沟结合染料游离时不发光与dna结合时发光每一轮反映结束后收集荧光，检测体系中双链产物的量。,溶解曲线：derivativeview,反映结束后，温度逐步提升，双链产物在某一温度区域变性为单链，双链结合染料脱离出来，成为不发荧光的游离态。这一过程检测到的荧光值迅速降低，其监测值曲线即溶解曲线，不同产物的因其不同tm值，会产生不同的溶解曲线峰。,两种方法的比较,优势更特异不需要考虑二聚体可以进行多重反应不需要优化拥有已开发的试剂盒不足比较昂贵,优势比较便宜不足特异性差需要做融解曲线不能进行多重反应需要进行优化须根据自行设计实验,taqman,sybrgreeni,报告集团及淬灭基团的选择vic,不同滤光片对应的发光集团,仪器的校正,5仪器的维护和校正,误差来源,定义,纯荧光光谱：标准荧光的光谱组分是用于荧光定量分析。rox,sybr,fam，vic，这些信息存储于计算机中，在数据分析的时候使用。荧光基团在pcr反应中与纯荧光比较得到准确的荧光计量。原始光谱视图（rawdate）:显示pcr反应中荧光信号的软件视图背景组分:仪器基座的背景“噪音”。背景噪音影响反应的灵敏度。背景读数存储于计算机并被反应的荧光信号扣除,纯荧光校正,纯荧光校正根据一系列荧光标准品收集荧光数据软件将不同纯荧光标准品的荧光信息分析并存储到程序中每次实验运行中，sds软件接收原始光谱信号。软件将原始光谱与纯荧光文件中包含的纯荧光标准进行比较，以确定样本中使用的每一种荧光的光谱表现,纯染料光谱,fam,tamra,vic,rox,ned,sybrgreen,roi校正,roi(regionsofinterest)校正用于生成目标区数据。,由于定量pcr仪使用一组滤光片分离检测运行期间生成的荧光能量，所以必须为每个滤光片生成校正图像，以修正光学系统中的微小差异。校正期间生成的数据，允许sds软件映射样本块（block)上反应孔的位置，从而在仪器操作期间，使软件可判断出反应板上特定反应孔中荧光强度的增量。,背景校正,背景校正程序测量定量pcr仪的环境荧光强度在运行校正程序期间，定量pcr仪在10分钟内连续地读取背景校正反应板的荧光强度，运行温度为60随后，sds软件计算运行期间所收集到的荧光强度的平均值，提取出结果并保存到校正文件中软件在今后的分析中将自动调用此校正文件，从实验数据中减去背景信号,加热槽荧光污染的判断,执行背景校正，当背景荧光信号异常（强度超过72000或7500的滤光片e超过90000）时实验中，连续出现不正常的偏高信号，并表明可能存在荧光物质污染时，需要清除热槽中的污染,清除热槽中的污染,清洁样本块中污染的反应孔a.用移液器吸取少量水或乙醇并滴入每个污染的反应孔中。b.吹打数次。c.将废液吸入废液杯中。重复以上步骤：乙醇三次，去离子水三次确认反应孔中的残留液体蒸发完,确认已除去热槽中的荧光污染物,运行背景校正板，确认污染已除去。如未除去，重新清洁，使用最新的背景校正,定量pcr实验要素,目标基因样品标准曲线标准品监控污染阴性对照监控系统故障阳性对照校准物理误差参比荧光,1目标基因样品,细胞死亡时rna迅速被rnases酶降解另外，样本（组织，血液等）一旦离开机体后，基因表达谱会发生改变可能的解决方案：将样本迅速完全融解在有机溶剂中液氮冻存将组织/细胞存放在稳定的溶液中加入无毒的组织防腐剂和rna稳定剂,选择样本的提取方法,有机溶剂法提取的样本纯度高劳动强度大过柱法(玻璃纤维过滤)简单，各种样本类型都能提取到纯rna磁珠法产量高，洗脱体积小不需要离心，适合高通量提取,选择rt-pcr方法,将未知rna直接加入到实时定量pcr反应管中接着，加入含逆转录酶和taq酶的反应液rt反应完成后，立即进行pcr优势：节省加样步骤注意点:样品反复冻融会造成rna降解（小量等份分装）,先将rna逆转录成cdnas将cdnas1:21:10稀释加入反应板中，实时扩增cdna，或-20c储存（稳定保存数周）优势：cdna远比rna稳定，可以反复冻融多次不足：和一步法相比，需要更多的加样步骤,一步法,两步法,预扩增,传统的基因表达分析,包含预扩增的基因表达分析,1:5or1:20稀释,10-14pcr循环,预防pcr过程中的污染,进行新的扩增反应时，很容易被前一次扩增产物污染（比如：通过气溶胶污染，被污染的移液器等）污染的模板被扩增会影响实验的结果体系中掺入尿嘧啶的扩增产物会被udg酶降解作用于含有du掺入的dna模板,50激活udg.残留污染被降解(因此不会被扩增).95灭活udg,目标样品用量,dna纯度：od260/od280=1.8，1.6-2.0之间dna用量：0.1ng-100ngrna纯度：od260/od280=2.0cdna用量：10-100ng,2标准曲线标准品,定量实验中，单独的ct值本身是没有意义的，需要通过标准曲线，将其转化成有意义的数值。,标准品（浓度/拷贝数）,目的：生成标准曲线，建立ct值与浓度之间的数学关系不要求：数学关系是抽象的，不要求标准品与目标基因使用相同的dna可以使用相同的dna也可以使用不同的：pcr产物、质粒、病毒、人工合成片段要求：浓度已知，ct值在18-30之间，覆盖全部样品浓度区间制备至少5个点的10倍标准曲线(4logs）pcr效率一致，且接近100%与未知样本实验条件平行每个点至少3次重复,制作标准曲线,选择目标提取/pcr纯化测定浓度调整浓度梯度稀,检查相关系数,r20.99eff%=90%-110%slope=-3.58-3.10理想的斜率=-3.32（对应100%扩增效率）；效率在90%-110%（斜率为-3.58到-3.10之间）都表示扩增较好,去除离散值的点,选择离散的孔，右键点击“去除”,3监控污染-阴性对照,实验效果验证种类notemplatecontrolnortcontrolnoprobecontrol如何分析电泳融解曲线测序,nortcontrol探针可能检测到基因组dna,用dnase酶处理样本检测no-rt对照（不进行逆转录的样本）+rt和rt应该至少相差6-7cts(大约1%信号由dna产生).,+rt,-rt,4阳性对照-监控系统故障,内参(管家基因)标准品线性范围灵敏度扩增效率外源阳性内对照来源pcr产物质粒阳性样本,内参-校准生物学误差,内参用于校准实验过程对定量结果的影响核酸提取时通常以重量或体积为单位取样，再加上提取效率和操作误差，造成等量提取物不一定来源于等量细胞（或基因组）将定量结果校正为以细胞（或基因组）为单位，不同样品之间才具有可比性校准方法：目的基因/内参=均一化的目的基因表达量内参可以起到阳性对照的作用，以监控反应系统是否正常，试剂、pcr程序、荧光采集、是否存在抑制物内参常选用管家基因，如18srrna、-actin、gapdh等,5rox参比荧光-校准物理误差,mastermix中rox浓度固定rox不参与pcr扩增，信号强度只与mastermix用量有关rox的功能：耗材质量（如管盖厚度、透光性能）、仪器稳定性（如孔间、批间波动）等的误差，反应体系监控(蒸发)校正方式：rn=rreporter/rrox,提高复孔间的精确度,进行rox参比荧光校准后后36个复孔分析结果.,未进行rox参比染料校准的36个复孔分析结果.,数据分析,绝对定量与相对定量,绝对定量：优点:给出目标基因的绝对数量，数据容易处理缺点：必须有标准品，做标准曲线，难以制备和质控相对定量优点：可以不做标准品；相对标准曲线法的标准品容易制备；使用广泛缺点：数据理解困难,绝对定量举例,绝对定量数据处理,如果需要对不同样本的绝对定量数据进行比较，则需内参校准,相对定量：相对标准曲线法,标准品只知道稀释倍数,相对定量：ct法,依据：平均相对含量%=2平均ct好处：不做标准曲线,ct=（ct未知样品-ct未知样品内参）-（ct基准样品-ct基准内参）,ct法计算示例,比较ct值的数学关系,ct为1=2倍差异ct为2=4倍差异ct为3=8倍差异ct为3.3=10倍差异,形成这种数学关系的前提：每经过1个循环，产物的量会加倍在这种情况下，反应的扩增效率为100%,如果扩增效率下降这种数学关系不再成立,pcr效率对定量结果的影响,导致扩增效率达不到100%的原因,实验组分的浓度及质量。如果样品包含pcr抑制剂，反应会减慢，甚至不反应。这种情况常见于来自生物制品样本的核酸。cdna作为起始模板时很少见。扩增产物太长实时定量pcr检测建议扩增产物序列长度为50-150碱基没有选择合适的引物退火温度设计的引物有错配模板序列特殊（比如：gc含量高）二级结构的影响（引物、探针、扩增产物）,定量pcr常见故障排查,无扩增曲线,1.通过电泳检测无条带，也无扩增曲线a.引物设计问题b.引物质量问题c.扩增体系问题d.退火温度问题2.电泳检测有条带，但无扩增曲线a.程序设定问题或仪器出现故障b.探针合成问题c.探针淬灭,阴性对照起飞,1.无模板阴性对照起飞a.探针污染b.引物污染c.体系污染建议：做无探针对照，无引物探针对照，电泳查看有无条带，确认污染源后重合引物或探针或更换试验体系。2.no-rt对照阴性对照起飞基因组dna污染，+rt和rt应该至少相差6-7cts(大约1%信号由dna产生).建议：设计引物时至少有一个跨内含子3.sybergreen法在35个循环之后阴性对照起飞体系中组份的非特异扩增，引物二聚体的自我延伸4.如果使用了rox校正，则可能是rox的降解所造成。,扩增曲线不平滑,1.探针与模板结合不稳定（曲线不平且荧光值低）a.原始序列不准确或有snp，导致探针不宜结合b.将文献中的mgb探针序列直接合成taqman探针，退火温度过低2.仪器或试剂问题参考平行内参阳性对照扩增曲线3.罗氏lightcycler1.0或2.0要在体系中加bsa封闭4.调整探针或染料浓度,斜线型曲线,1.探针降解（本底荧光值高）可以使用变性page胶检测是否降解2.体系中含有抑制成分,异常曲线,某一条曲线与其他不平行体系中含有抑制成分不能用于分析,溶解曲线出现多个峰,引物非特异扩增引物二聚体基因组dna污染：在检测cdna的时候，同时扩增出含有内含子的较长的基因组上的片段。,解决方法：设计引物时，至少有一条跨过两个外显子的接合处，使其无法与含有内含子的基因组dna结合,生物信息学分析不完全导致的风险,实验设计.包含snp位点引物/探针和靶序列无效结合错误序列无效结合，甚至根本未结合转录组中序列并不单一非特异性扩增序列包含重复片段大量非特异性扩增,注意事项,实验室分区：样品处理区、pcr反应制备区、扩增区标准品的稀释最好使用独立的一套移液器标准品的稀释液中最好含有carrierrna移液器使用带滤芯的吸头先阴性对照样，后加样品，再加低浓度标准品，最后加阳性对照pcr管上不可用记号笔标记pcr管使用平盖或光膜，不要裸手触摸光盖或光膜表面pcr管或8联排管要对称放置反应后的pcr管应当直接废弃，切不可在实验区域内开启采用ung防污染系统，消除前次扩增产物的污染影响,常见应用,1snp分析,taqman-mgb基因分型针对等位基因设计