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文档简介

内 蒙 古 大 学 生 命 科 学 学 院 生 物 系 基 因 工 程 实 验 室 本科基因工程大实验开题报告本科基因工程大实验开题报告 论文题目论文题目:纳豆激酶基因表达载体的构建 及在大肠杆菌中的表达 学生姓名学生姓名:燕孟娇 年年级级:2008 专专业业:生物技术 指导教师指导教师:苏慧敏 2011 年 8 月 7日 学号00811047 1 学生姓名 张婷 民族汉性别女出生年月 1990 年 8 月 论文题目 纳豆激酶基因表达载体的构建及在大肠杆菌中的表达 开题时间2011 年 8 月 1 日结题时间2011 年 8 月 7 日 项目来源本科生基因工程大实验课 一、立论依据 “纳豆激酶基因表达载体的构建及在大肠杆菌中的表达” 项目的选题和研究的 意义,国内外研究现状及发展趋势分析,主要参考文献及出处: 纳豆激酶(nattokinase 简称 NK)是一种枯草杆菌蛋白激酶, 是在纳豆 发酵过程中由纳豆枯草杆菌(Bacillus subtilisl natto)产生的一种丝氨 酸蛋白酶。纳豆激酶(NarroKunase,NK)由食品纳豆中提取或纳豆菌发酵 生产,是一种分子量远远小于 UK、SK、tPA 的蛋白质,并可由肠道,吸 收,纳豆激酶的体外、体内溶栓性质通过实验也已得到确定,同时得出纳 豆激酶的体内溶栓活性为纤溶酶的四倍,在体内作用迅速、持续时间长, 还能激活体内的 tPA,使之温和、持续地提高血液的纤溶活性。 纳豆激酶的物理、生化特点: 1)纳豆激酶是在纳豆发酵过程中由纳豆枯 草杆菌(Bacillus subtilisl natto)产生的一种丝氨酸蛋白酶(单链多肽酶), 分子量为 27728 道尔顿。 2)纳豆激酶在温度超过 50时迅速变性失活,但反 复冻融对其影响不大。 3)纳豆激酶在 PH 值从 7 升至 12 时,10min 内稳定; PH 值低于 5 时,迅速变性失活。胃酸环境中的 PH 值只有 1.2 到 2 之间,纳豆 激酶根本无法通过。4)纳豆激酶与粘性物质混合后,在 PH 值 2-3 的酸性环境 中,还能保持不超过 7.5%的活性。 5)纳豆激酶是大分子的单链多肽酶,可被 肠道消化液(糜蛋白酶、胰蛋白酶、小肠液等)分解成氨基酸片段或分子量更 小的肽链。 同其它生物活性物质一样,纳豆激酶的分秘表达受多种因素的影响。纳豆 激酶基因在体外转录有两个启动位点,之间被 15 个核苷酸隔开;体内转录也 在这两个位点或其附近。下游位点(P:)具有一个独特的 d”识别序列。Moran 等人对该基因的 d”启动子和其它两种枯草芽孢杆菌的 d”启动子做了比较, 比较了它们的保守碱基序列,在一 35 区P:启动子的共有序列为 5 个碱基; 在一 10 区共有序列为 8 个碱基两区之间被 15 个碱基隔开。另外两个碱基区 可能调节该基因的表达一个是在启动子上游 35bp 处的二分体对称区,另外 就是 mRNA 上核糖体结台位点,mRNA 上核糖体结台位点序列为:pppAAAA G 一 0 0 A_0 00 U。 此外在纳豆激酶基因的 105-336bp 处编码了一段有 77 个氨基酸的蛋白肽(pmpeptide),其有可能参与调节纳豆激酶的活性。纳豆 激酶的表达同其它枯草杆菌蛋白酶一样受葡萄糖阻遏和被许多 SpoO 孢子形 2 成突变株阻断,另外 Cat A、hpr、Scoe 突变株位点可以提高其表达。 参考文献参考文献 1谢秋玲,孙奋勇,廖美德,张玲,汪炬. 纳豆激酶原基因的克隆及表达J华 南理工大学学报(自然科学版), 2002, (06). 2 朱立成,张耀洲. 纳豆激酶原核表达纯化及多克隆抗体的制备J浙江大 学学报(理学版), 2006, (04) . 3 Hong-Bo Hu,Shan-Jing Yao,Le-He Mei,Zi-Qiang Zhu,Byung-Ki Hur. Partial purification of nattokinase from Bacillus subtilis by expanded bed adsorptionJ Biotechnology Letters, 2000,22, (17) . 4付 利 , 杨 志 兴 . 纳 豆 激 酶 的 研 究 与 应 用 J, 生 物 工 程 进 展.1995,15(15):46-49. 5陈丽娟,沙长青,任永春等.纳豆激酶溶解血栓机制J,中国生物工程杂 志,2003,23(4):53-56. 6 丁贵平,蔡正森,王正刚.纳豆激酶的分离纯化及生化研究J,氨基酸和生 物资源,2001,23(3):13-16. 7 闫达中,许芳,李洁.纳豆激酶基因克隆及其在大肠杆菌中活性表达研究 J,湖北大学学报(自然科学版),2003,25(1):69-72. 8 NaKamura T, Yamagata Y, Ichishima E J. Nucleotide sequence of the subtilisinNATgene,aprNofBacillusSubtilis(natto)J.Biosci Biotech Biochem,1992, 56(11):1869-1871. 3 二、实验方案 1实验内容和实验目标,拟解决的关键问题: 1.1 实验内容:实验内容: 、PCR 扩增 NK。 、将 NK PCR 产物与克隆载体 pMD19-T 连接成过渡质粒。 、连接 pET-trx 与 NK,构建表达载体 pET-trx-NK。 、转化 E. coli BL21(DE3),IPTG 诱导表达 、SDS-PAGE 鉴定。 1.2 实验目标:实验目标: 、学习基因工程的基本研究方法。 、熟悉基因工程常规仪器的使用。 、培养基因工程研究的严密逻辑和科学理念。 、建立做好原始实验记录的习惯。 1.3 拟解决的关键问题:拟解决的关键问题: 、PCR 扩增 NK。 、过渡质粒以及表达载体的构建。 、感受态细菌的转化。 、在 E. coli BL21(DE3)中诱导表达 NK。 、SDS-PAGE 检测表达蛋白。 4 2实验思路、方法、技术路线、实验方案及可行性分析: 2.1、实验思路及方法:、实验思路及方法: 2.1.1、PCR 扩增扩增 NK PCR 引物: NK 上游5-GGATCCGCGCAATCTGTTCCTTATGGC-3 BamH I NK 下游5-GAATTCTTGTGCAGCTGCTTGTACGTTG-3 EcoR I PCR 产物大小:837bp PCR 条件:94变性 30s,60 退火 30s,72 延伸 30 s 2.1.2、NK 的亚克隆的亚克隆 将 NK PCR 产物与 pMD19-T 连接过夜,构建 pMD19-T-NK 过渡质粒,然 后将其转入 DH5感受态菌中。 2.1.3、表达载体的构建、表达载体的构建 EcoRI 和 BamHI 双酶切 pMD19-T-NK 过渡质粒和表达载体 pET-trx,回收 NK 片段和 pET-trx,连接 pET-trx 与 NK,构建表达载体 pET-trx-NK。 2.1.4、诱导表达目的蛋白、诱导表达目的蛋白 将 pET-trx-NK 转化 E. coli BL21(DE3),IPTG 诱导表达,并用 SDS-PAGE 鉴定。 5 2.2、技术路线、技术路线 。 连接 连接 提质粒 pMD1-T-NK、pET-trx EcoRI 和 BamHI pET-trx pMD19-T DH5a 感受态菌 PCR 扩增 NK pMD19-T-NK NKpET-trx pET-trx-NK pET-trx-NK BL21(DE3)感受态菌BL21(DE3)感受态菌 IPTG 诱导表达 SDS-PAGE 检测 6 3. 实验进度(10 天之内) : 第一天 下午:讲解仪器,发放移液器等,灭菌(摇菌试管、培养皿) ,摇 pET-trx、 pMD18T-NK,配置培养基 第二天 上午:提质粒 pET-trx、pMD18T-NK 下午:PCR 扩增 NK,与 pMD19-T 连接过夜;倒平板,要 DH5 第三天 上午:作感受态 DH5,EcoRI 和 BamHI 双酶切 pET-trx 下午:pMD19-T-NK 连接液转化 DH5涂板;回收 pET-trx 第四天 上午:七点挑 pMD19-T-NK 平板克隆,摇菌 8-10h 下午:七点提质粒 pMD19-T-NK 第五天 上午:EcoRI 和 BamHI 双酶切 pMD19-T-NK 验证;回收 NK 下午:NK 与 pET-trx 连接过夜 第六天 上午:七点 pET-trx-NK 连接液转化 DH5,涂板 下午:挑 pET-trx-NK 克隆,摇菌;摇 BL21 第七天 上午:做感受态 BL21,提质粒 pET-trx-NK 下午:Hind酶切验证;转化 BL21,涂板过夜 第八天 上午:七点摇菌(包括空 BL21) ;练习组装 SDS 电泳模具 下午:OD600=0.5 时,诱导表达 3h,离心集菌 第九天 上午:灌胶加样电泳 2-3h,染色 45min,脱色 下午:观察脱色胶,转入清水,照相 7 4. 预期实验成果: SDS-PAGE 检测蛋白表达可观测到大小约为 33-40KD 的蛋白质大量表达。 5. 曾参与与本实验有关的学习和研究工作积累以及已取得的工作成绩: (学过基因工程课程、读过相关的文献、写过有关的综述、参加过相关的实验 设计或研究课题、获得过相关的学术奖励情况等) 曾学过基因工程等相关课程。 6. 请运用已学过的课堂知识结合看过的有关研究文献,提一个你认为适合本 科生基因工程实验课教学的基因工程大实验方案 DREB 转录因子对干旱、高盐和低盐下逆境诱导基因表达起

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