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文档简介

.目录一、总体设计11、实验室性质12、建设规模13、实验室面积14、实验项目14.1微生物检验项目14.1.1食品卫生微生物学检验 罐头食品商业无菌的检验 14.1.2大肠菌群的测定34.1.3菌落总数检测44.1.4霉菌检测74.2理化检验项目94.2.1可溶性固形物含呈的测定94.2.2净含量和固形物含量的测定方法104.2.3 pH测定方法104.2.4干燥物含置的测定方法114.2.5总砷的测定114.2.6铅的测定124.2.7锡的测定134.3罐头食品感官检验145、实验台、橱柜146、水龙头和清洗池157、电器和照明158、空调159、设备仪器1510、电容量1511、试剂1512、实验室管理制度1512.1 实验室工作的一般要求1512.2 仪器、试剂的管理1612.3 实验室安全管理16二、设备清单18三、药品清单19四、总体平面布局图(详见附图一)19五、橱柜、实验台正面、侧面示意图(详见附图二、三)19六、水管线路、水龙头位置图、照明灯、电话、网络、电插座位置(详见附图四)19.果蔬罐头厂品质检验室设计一、总体设计1、实验室性质 此次设计的实验室主要用于果蔬罐头成品的感官检验、理化检验和微生物检验,因而设置一间办公室,一间理化分析室(兼作感官分析室);一间微生物检验室,内设无菌操作室2、建设规模 本次实验室的规模属于小型,投资经费约为9万。3、实验室面积 办公室10m2,理化分析室25m2;微生物检验室30m2,其中无菌操作室15m2。4、实验项目 4.1微生物检验项目:4.1.1食品卫生微生物学检验 罐头食品商业无菌的检验 (GB/T 4789.26-2003)4.1.1.1仪器冰箱、恒温培养箱、恒温水浴锅、显微镜、电位pH计、灭菌吸管、灭菌平皿、灭菌试管、罐头打孔器、 白色搪瓷盘、灭菌镊子4.1.1.2步骤抽样、称量、保温、开罐、留样、PH测定、感官检查、涂片染色镜检、接种培养将全部样罐按下述分类在规定温度下按规定时间进行保温见表1。保温过程中应每天检查,如有胖听或泄漏等现象,立即剔出作开罐检查。低酸性罐头食品(每罐)接种培养基、管数及培养条件见表2酸性罐头食品(每罐)接种培养基、管数及培养条件见表3微生物培养检验程序及判定将按表2或表3接种的培养基管分别放人规定温度的恒温箱进行培养,每天观察培养生长情况(见图1)。罐头密封性检验 对确定有微生物繁殖的样罐均应进行密封性检验以判定该罐是否泄漏,参见附录B。结果判定该批(锅)罐头食品经审查生产操作记录,属于正常;抽取样品经保温试验未胖听或泄漏;保温后开罐,经感官检查、pH测定或涂片镜检,或接种培养,确证无微生物增殖现象,则为商业无菌。该批(锅)罐头食品经审查生产操作记录,未发现问题;抽取样品经保温试验有一罐及一罐以上发生胖听或泄漏;或保温后开罐,经感官检查、pH测定或涂片镜检和接种培养,确证有微生物增殖现象,则为非商业无菌。4.1.2大肠菌群的测定(GB/T 4789.3-2010 )4.1.2.1方法大肠菌群MPN计数法4.1.2.2仪器恒温培养箱、冰箱、恒温水浴箱、天平、均质器 、振荡器、无菌吸管或微量移液器及吸头、pH 计或 pH比色管或精密pH 试纸、菌落计数器4.1.2.3步骤 样品的稀释 固体和半固体样品:称取25 9样品,放入盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000 r/minl0000 r/min均质1 min2 min,或放入盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min2 min,制成1:10的样品匀液。液体样品:以无菌吸管吸取25 mL样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10的样品匀液。样品匀液的pH值应在6.57.5之间,必要时分别用1 mol/L NaOH或1 mol/L HCI调节,用1 mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1 mL,沿管壁缓缓注入9 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1 mL无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1:100的样品匀液。根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释1次,换用1支1 mL无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15 min。初发酵试验 每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量超过1 mL,则用双料LST肉汤),36土1培养24 lt2 h,观察倒管内是否有气泡产生,24 h土2 h产气者进行复发酵试验,如未产气则继续培养至48 h土2 h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。复发酵试验 用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环,移种于煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)管中,36 0C土1培养48 h土2 h,观察产气情况。产气者,计为大肠菌群阳性管。犬肠菌群最可能数(MPN)的报告4.1.3菌落总数检测(GB/T 4789.2-2010)4.1.3.1 方法平板计数法4.1.3.2 仪器恒温培养箱均质器天平恒温水浴箱菌落计数器4.1.3.3 步骤 固体和半固体样品:称取25 9样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000 r/min- 10000 r/min均质1 min2 min,或放入盛有225 mL稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min2 min,制成1:10的样品匀液。液体样品:以无菌吸管吸取25 mL样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10的样品匀液。用1 mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1 mL,沿管壁缓慢注于盛有9 mL稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1:100的样品匀液。按以上操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用1次1 mL无菌吸管或吸头。根据对样品污染状况的估计,选择2个3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释时,吸取1 mL样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取1 mL空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。及时将15 mL20 mL冷却至46的平板计数琼脂培养基(可放置于46土1。C恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。培养待琼脂凝固后,将平板翻转,36土1培养48 h士2 h。水产品30士1培养72 h土3 h。如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基(约4 mL),凝固后翻转平板,按6.2.1条件进行培养。茵落计数 可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位( colony-forming units,CFU)表示。选取菌落数在30 CFU300 CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU的平板记录具体菌落数,大于300 CFU的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。结果与报告 菌落总数的计算方法 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g (mL)样品中菌落总数结果。若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时,按公式(1)计算: 式中: N-样品中菌落数; C一平板(含遁宜范围菌落数的平板)菌落数之和; N1一第一稀释度(低稀释倍数)平板个数; N2第二稀释度(高稀释倍数)平板个数; d-一稀释因子(第一稀释度)。若所有稀释度的平板上菌落数均大于300 CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。若所有稀释度的平板菌落数均小于30 CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。若所有稀释度(包括液体样品原液)平板均无菌落生长,则以小于1乘以最低稀释倍数计算。 若所有稀释度的平板菌落数均不在30 CFU300 CFU之间,其中一部分小于30 CFU或大于300CFU时,则以最接近30 CFU或300 CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算。菌落总数的报告菌落数小于100 CFU时,按“四舍五入”原则修约,以整数报告。菌落数大于或等于100 CFU时,第3位数字采用“四舍五入”原剐修约后,取前2位数字,后面用0代替位数;也可用10的指数形式来表示,按“四舍五入”原则修约后,采用两位有效数字。若所有平板上为蔓延菌落而无法计数,则报告菌落蔓延。若空白对照上有菌落生长,则此次检测结果无效。称重取样以CFU/g为单位报告,体积取样以CFU/mL为单位报告。4.1.4霉菌检测(GB/T 4789.15)4.1.4.1方法按GB/T 4789.15第一法,类似菌落总数计数法。4.1.4.2仪器恒温培养箱均质器天平恒温水浴箱菌落计数器4.1.4.3步骤样品的稀释固体和半固体样品:称取25 g 样品至盛有225 mL 灭菌蒸馏水的锥形瓶中,充分振摇,即为1:10稀释液。或放入盛有225 mL 无菌蒸馏水的均质袋中,用拍击式均质器拍打2min,制成1:10 的样品匀液。液体样品:以无菌吸管吸取25 mL 样品至盛有225 mL 无菌蒸馏水的锥形瓶(可在瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10 的样品匀液。 取1 mL 1:10 稀释液注入含有9 mL 无菌水的试管中, 另换一支1 mL 无菌吸管反复吹吸,此液为1:100 稀释液。按以上操作程序,制备10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用1 次1 mL 无菌吸管。根据对样品污染状况的估计,选择2个3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10 倍递增稀释的同时,每个稀释度分别吸取1 mL 样品匀液于2个无菌平皿内。同时分别取1 mL样品稀释液加入2 个无菌平皿作空白对照。及时将15 mL20 mL 冷却至46 的马铃薯-葡萄糖-琼脂或孟加拉红培养基(可放置于461恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。培养:待琼脂凝固后,将平板倒置,281培养5d,观察并记录。 菌落计数肉眼观察,必要时可用放大镜,记录各稀释倍数和相应的霉菌和酵母数。以菌落形成单位(colonyforming units,CFU)表示。选取菌落数在10 CFU150 CFU 的平板,根据菌落形态分别计数霉菌和酵母数。霉菌蔓延生长覆盖整个平板的可记录为多不可计。菌落数应采用两个平板的平均数。 结果与报告 计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数计算。若所有平板上菌落数均大于150 CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。若所有平板上菌落数均小于10 CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。 若所有稀释度平板均无菌落生长,则以小于1 乘以最低稀释倍数计算;如为原液,则以小于1计数。报告菌落数在100 以内时,按“四舍五入”原则修约,采用两位有效数字报告。菌落数大于或等于100 时,前3 位数字采用“四舍五入”原则修约后,取前2 位数字,后面用0 代替位数来表示结果;也可用10 的指数形式来表示,此时也按“四舍五入”原则修约,采用两位有效数字。称重取样以CFU/g 为单位报告,体积取样以CFU/mL 为单位报告,报告或分别报告霉菌或酵母数。4.2理化检验项目罐头食品检验方法 (GB 10786-2006)4.2.1可溶性固形物含呈的测定方法 折光计法仪器阿贝折光计或糖度计组织捣碎器步骤测试溶液的制备透明的液体制品: 充分混匀待测样品后直接测定。非黏稠制品(果浆、菜浆制品): 充分混匀待测样品,用四层纱布挤出滤液,用于测定。黏稠制品(果酱、果珠等)称取适当量(40 9以下)(精确到0. 01 9)的待测样品到已称重的烧杯中,加IOO mL150 mL蒸馏水,用玻璃棒搅拌,并缓和煮沸2 min,-3 rnin,冷却并充分混匀。20 min后称重,精确到0.01 9,然后用槽纹漏斗或布氏漏斗过滤到干燥容器里,留滤液供测定用。固相和液相分开的制品:按固液相的比例,将样品用组织捣碎器捣碎后,用四层纱布挤出滤液用于测定。测定折光计在测定前按说明书进行校正。分开折光计的两面棱镜,以脱脂棉蘸乙醚或酒精擦净。用末端熔圆之玻璃棒蘸取制备好的样液2滴3滴,仔细滴于折光计棱镜平面之中央(注意勿使玻璃棒触及棱镜)。迅速闭合上下两棱镜,静置1 min,要求液体均匀无气泡并充满视野。对准光源,由目镜观察,调节指示规,使视野分成明暗两部。再旋动微调螺旋,使两部界限明晰,其分线恰在接物镜的十字交叉点上,读取读数。如折光计标尺刻度为百分数,则读数即为可溶性固形物的百分率,按可溶性固形物对温度校正表换算成20时标准的可溶性固形物百分率。4.2.2净含量和固形物含量的测定方法步骤净含量 擦净罐头外壁,用天平称取罐头总质量。畜肉、禽及水产类罐头需将罐头加热,使凝冻溶化后开罐。果蔬类罐头不经加热,直接开罐。内容物倒出后,将空罐洗净、擦干后称重。 式中: m罐头净含量,单位为克(g); M3罐头总质量,单位为克(g); M2-空罐质量,单位为克(g)。固形物含星 水果、蔬菜类罐头 开罐后,将内容物倾倒在预先称重的圆筛上,不搅动产品,倾斜筛子,沥干2 min后,将圆筛和沥干物一并称重。按式(3)计算固形物的质量分数,其数值以%表示。式中: X1固形物的质量分数,%; M5果肉或蔬菜沥干物加圆筛质量,单位为克(g); m4 -圆筛质量,单位为克(g); m7-罐头标明净含量,单位为克(g)。注:带有小配料的蔬菜罐头,称量沥干物时应扣除小配料4.2.3 pH测定方法仪器 pH计: 刻度为o1 pH单位或更小些。如果仪器没有温度校正系统,此刻度只适用于在20进行测量。步骤 试液的制备、pH计的校正、测定分析结果的表示法:如果有关重现性的要求已能满足,取两次测定的算术平均值作为结果,报告精确到0. 05 pH单位。重现性: 同一人操作,同时或紧接的两次测定结果之差应不超过0.1 pH单位。4.2.4干燥物含置的测定方法仪器扁形玻璃称量瓶,真空干燥箱,破璃干燥器,不锈钢小勺或玻璃棒,一般干热烘箱。步骤取10 g15 9干净细砂(40目海砂)于扁平玻璃称量瓶中,并与不锈钢小勺或玻璃棒一起置于100105烘箱中烘干至恒重。取出,置于干燥器内冷却30 min,称量(精确至o001 9)。以减量法在瓶中称取试样约5 9(精确至o001 9),用勺或玻璃棒将试样与砂搅匀,铺成薄层,于水浴上蒸发至近干,移入温度70、压力13 332.2 Pa(100 mmHg)以下的真空干燥箱内烘4h。取出,置于干燥器中冷却30 min,称量后再烘,每两小时取出冷却称量一次(两次操作应相同),直至两次质量差不大于o003 9为止。结果计算:干燥物的质量分数按式(5)计算,其数值以%表示。 式中: X3干燥物的质量分数,%; M9烘干后试样、不锈钢小勺(或玻璃棒)、净砂及称量瓶质量,单位为克(g); M8不锈钢小勺(或玻璃捧)、净砂及称量瓶质量,单位为克(g); M10-试样质量,单位为克(g)。允许差: 平行试样结果允许0. 5%误差。4.2.5总砷的测定(GB/T 5009.11-2003)方法氢化物原子荧光光度法仪器 原子荧光光度计步骤试样消解湿消解:试样称样1 g2.5 g,置入50 ml100 ml锥形瓶中,同时做两份试剂空白。加硝酸20 ml40 ml,硫酸1.25 ml,摇匀后放置过夜,置于电热板上加热消解。若消解液处理至10 ml左右时仍有未分解物质或色泽变深,取下放冷,补加硝酸5 mll0 ml,再消解至10 ml左右观察,如此反复两三次,注意避免炭化。如仍不能消解完全,则加入高氯酸l ml2 ml,继续加热至消解完全后,再持续蒸发至高氯酸的白烟散尽,硫酸的白烟开始冒出。冷却,加水25 ml,再蒸发至冒硫酸白烟。冷却,用水将内容物转入25 ml容量瓶或比色管中,加入50 g/L硫脲2.5 ml,补水至刻度并混匀,备测。标准系列制备取25 ml容量瓶或比色管6支,依次准确加入1 ugml砷使用标准液0、0.05、0.2、0.5、2.0、50mL(各相当于砷浓度0,2.0、8.0、20.0、80.0、200.0ngml)各加(1+9)硫酸12.5 ml,50 g/L硫脲2.5 ml,补加水至刻度,混匀备测。测定仪器参考条件:光电倍增管电压:400 V4砷空心阴极灯电流:35 mA;原子化器:温度820850;高度7 mm;:氩气流速:载气600 ml/min,测量方式:荧光强度或浓度直读,读数方式:蜂面积读数延迟时间:l s;读数时间:15 s;硼氢化钠溶液加入时间:5s;标液或样液加入体积:2 ml。浓度方式测量:如直接测荧光强度,则在开机并设定好仪器条件后,预热稳定约20 min。按“B”键进入空白值测量状态,连续用标准系列的“0”管进样,待读数稳定后,按空档键记录下空白值(即让仪器自动扣底)即可开始测量。先依次测标准系列(可不再测“0”管)。标准系列测完后应仔细清洗进样器(或更换一支),并再用“0”管测试使读数基本回零后,才能测试剂空白和试样,每测不同的试样前都应清洗进样器,记录(或打印)下测量数据。仪器自动方式:利用仪器提供的软件功能可进行浓度直读测定,为此在开机、设定条件和预热后,还需输入必要的参数,即:试样量(g成ml);稀释体积(ml);进样体积(ml);结果的浓度单位;标准系列各点的重复测量次数;标准系列的点数(不计零点),及各点的浓度值。首先进入空白值测量状态,连续用标准系列的“o”管进样以获得稳定的空白值并执行自动扣底后,再依次测标准系列(此时“o”管需再测一次)在测样液前,需再进入空白值测量状态,先用标准系列“0”管测试使读数复原并稳定后,再用两个试剂空白各进一次样,让仪器取其均值作为扣底的空白值,随后即可依次测试样。测定完毕后退回主菜单,选择“打印报告”即可将测定结果打出。4.2.6铅的测定(GB/T 5009.12-2003)方法石墨炉原子吸收光谱法仪器原子吸收光谱仪,附石墨炉及铅空心阴极灯马弗炉天平:感量为1 mg干燥恒温箱瓷坩埚可调式电热板可调式电炉步骤试样消解干法灰化:称取1 g:-5 g试样(精确到0.001 g,根据铅含量而定)于瓷坩埚中,先小火在可调式电热板上炭化至无烟,移入马弗炉500C土25灰化6 h8 h,冷却。若个别试样灰化不彻底,则加1 mL混合酸(4.9)在可调式电炉上小火加热,反复多次直到消化完全,放冷,用硝酸将灰分溶解,用滴管将试样消化液洗入或过滤入(视消化后试样的盐分而定)10 mL25 mL容量瓶中,用水少量多次洗涤瓷坩埚,洗液合并于容量瓶中并定容至刻度,混匀备用;同时作试剂空白。 仪器条件:根据各自仪器性能调至最佳状态。参考条件为波长283.3 nm,狭缝0.2 nml.0 nm,灯电流5 mA7 mA,干燥温度120,20 s;灰化温度450,持续15 s20 s,原予化温度:17002300,持续4 s5 s,背景校正为氘灯或塞曼效应。标准曲线绘制:吸取上面配制的铅标准使用液10.0 ng/mL(或ug/L),20.0 ng/mL(或ug/L),40.0 ng/mL(或ug/L),60.0 ng/mL(或ug/L),80.0 ng/mL(或ug/L各10 uL,注入石墨炉,测得其吸光值并求得吸光值与浓度关系的一元线性回方程。试样测定:分别吸取样液和试剂空白液各10 uL,注入石墨炉,测得其吸光值,代入标准系列的一元线性回归方程中求得样液中铅含量。注: 基体改进剂的使用:对有干扰试样,则注入适量的基体改进剂磷酸二氢铵溶液(4.8)(一般为5uL或与试样同量)消除干扰。绘制铅标准曲线时也要加入与试样测定时等量的基体改进剂磷酸二氢铵溶液。4.2.7锡的测定(5009.16-2003)方法氢化物原子分光光谱法仪器双道荧光光度计电热板步骤试样消化 称取试样1.0 g5.0 g于锥形瓶中,加1O mL浓硫酸,10.0 mL硝酸十高氯酸混合酸(4+1),3粒玻璃珠,放置过夜。次日置电热板上加热消化,如酸液过少,可适当补加硝酸,继续消化至冒白烟,待液体体积近1 mL时取下冷却。用水将消化试样转入50 mL容量瓶中,加水定容至刻度,摇匀备用。同时做空白试验。 分别取定容后的试样10 mL于15 mL比色管中,加入2 mL硫脲(150 g/L)+抗坏血酸(150 g/L)混合溶液,摇匀。标准系列的配制 标准曲线;分别吸取锡标准应用液0O、o1、0.5、1. 0.1.5,2.0 mL,于15 mL比色管中,分别加入硫酸溶液(1+9)2.0、19、L 5、1.0、0.5、0.0 mL,用水定容至10 mL,再加入2 mL硫脲(150 g/L)+抗坏血酸(150 g/L)混合溶液。测定仪器参考条件:负高压:380 V;灯电流:70 mA原子化温度:850;炉高:10 mmi屏蔽气流量:1200 mL/min;载气流量500 mL/min测量方式:标准曲线法;读数方式:蜂面积;延迟时间:1 s:读数时间:15 s;加液时间:8 s;进样体积:2 mL。测定:根据试验情况任选以下一种方法。 浓度测定方式测量:设定好仪器最佳条件,逐步将炉温升至所需温度后,稳定10min20 min后开始测量。连续用标准系列零管进样,待读数稳定后,转入标准系列测量,绘制标准曲线。转入试样测定,分别测定试样空白和试样消化液,每测不同的试样前都应清洗进样器。试样测定结果按以下公式计算。仪器自动计算结果方式测量:设定好仪器最佳条件,在试样参数画面输入以下参数:试样质量(g或mL),稀释体积(mL),并选择结果的浓度单位,逐步将炉温升至所需温度,稳定后测量。连续用标准系列零管进样,等读数稳定后,转入标准系列测量,绘制标准曲线。在转入试样测定之前,再进入空白值测量状态,用试样空白消化液进样,让仪器取其均值作为扣除的空白值。随后即可依次测定试样。测定完毕后,选择“打印报告”即可将测定结果自动打印。结果计算 试样中锡含量按式(1)进行计算。 式中; X-试样中锡含量,单位为毫克每千克或毫克每升(mg/kg或mg/L); C:试祥消化液测定浓度,单位为纳克每毫升(ng/mL); Co -试样空白消化液浓度,单位为纳克每毫升(ng/mL); V-试样消化液总体积,单位为毫升(mL); m试样质量或体积,单位为克或毫升(g或mL)。 计算结果保留两位有效数字。精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。4.3罐头食品感官检验组织与形态检验糖水水果类及蔬菜类罐头在室温下将罐头打开,先滤去汤汁,然后将内容物倒人白瓷盘中观察组织、形态是否符合标准。果酱类罐头在室温(1520)下开罐后,用匙取果酱(约20 9)置于干燥的白瓷盘上,在1 min内视其酱体有无流散和汁液析出现象。果汁类罐头打开后内容物倒在玻璃容器内静置30 min后,观察其沉淀程度,分层情况和油圈现象。色泽检验糖水水果类及蔬菜类罐头在白瓷盘中观察其色泽是否符合标准,将汁液倒在烧杯中,观察其汁液是否清亮透明,有无夹杂物及引起浑浊之果肉碎屑。糖浆类罐头将糖浆全部倒人白瓷盘中观察其是否浑浊,有无胶冻和有无大量果屑及夹杂物存在。将不锈钢圆筛上的果肉倒入盘内,观察其色泽是否符合标准。果酱类罐头及番茄酱罐头将酱体全部倒人白瓷盘中,随即观察其色泽是否符合标准。果汁类罐头倒在玻璃容器中静置30 min后,观察其色泽是否符合标准。滋味和气味检验果蔬类罐头,检验其是否具有与原果、蔬相近似之香味。果汁类罐头应先嗅其香味(浓缩果汁应稀释至规定浓度),然后评定酸甜是否适口。5、实验台、橱柜名称尺寸(长*宽*高)台数感官实验台3m*1m*1.5m1实验台3m*1.5m*2.5m2橱柜1.5m*0.5m*2.0m6办公桌1.5m*1m*0.8m26、水龙头和清洗池 水龙头的规格为15mm,数量为15个;清洗池的规格为0.5m*0.4m,数量为7个。7、电器和照明日光灯:9盏,规格为1100*100*50(mm);电插座:34个,型号为86;网络插口数量:4个固定电话:一部台式电脑:2台开关:5个,型号为86。8、空调1台 奥克斯空调KFR-52GW/SD-2。9、设备仪器详见设备清单。10、电容量根据实验室配置的仪器设备,估计实验室的用电量约为:9000W。11、试剂详见试剂清单。12、实验室管理制度12.1 实验室工作的一般要求(1)实验室应制定仪器配备管理、使用制度,药品管理、使用制度,玻璃器皿管理、使用制度,并根据安全制度和环境条件的要求,本室工作人员应严格掌握,认真执行。(2)进入实验室必须穿工作服,进入无菌室换无菌衣、帽、鞋,戴好口罩,非实验室人员不得进入实验室,严格执行安全操作规程。(3)实验室内物品摆放整齐,试剂定期检查并有明晰标签,仪器定期检查、保养、检修, 严禁在冰箱内存放和加工私人食品。实验仪器应放置整齐,实验台面及地面应经常保持干燥、清洁,不得向地上甩水,实验告一段落应及时进行整理。火柴头、碎滤纸等物应放在专设的废物箱内,不得随地乱扔或倒入下水道,对可造成环境污染的废品、废液(包括有毒、有害、易燃)等物品应专门的收集和处理。(4)各种器材应建立请领消耗记录,贵重仪器有使用记录,破损遗失应填写报告;药品、器材、菌种不经批准不得擅自外借和转让,更不得私自拿出。(5)禁止在实验室内吸烟、进餐、会客、喧哗,实验室内不得带入私人物品,离开实验室前认真检查水电,对于有毒、有害、易燃、污染、腐蚀的物品和废弃物品应按有关要求执行。(6)负责人严格执行本制度,出现问题立即报告,造成病原扩散等责任事故者,应视情节直至追究法律责任。12.2 仪器、试剂的管理(1)精密仪器的管理 精密仪器应按其性质、灵敏度要求以及精密程度,固定房间及位置。精密仪器室与化学处理室隔开,以防腐蚀性气体及水汽对仪器的腐蚀;烘箱、高温炉应放置在不燃的水泥台或坚固的铁架上;天平及其它精密仪器应放在防震、防晒、防潮、防腐蚀的房间内,并罩上棉布制的仪器罩。小件仪器用完应收藏在仪器柜中。 对精密仪器应建立技术档案。技术资料包括:说明书、装箱单、安装调试验收记录、检修记录等。精密仪器必须由专人操作,并上岗操作,每使用一次要进行登记签名。对某种仪器没有使用过的人员,应进行培训后才能操作。 精密仪器的购置、拆箱、验收、安装、调试都应由专人负责,未经批准不得任意拆卸。(2)玻璃仪器的管理玻璃仪器应建立领用、破损登记制度。所用的容量仪器应进行校准。根据测试项目的要求,申报玻璃仪器的采购计划、详细注明规格、产地、数量、要求,硬质中性玻璃仪器应经计量验证合格。 玻璃器皿使用前应除去污垢,并用清洁液或2%稀盐酸溶液浸泡24 h后,用清水冲洗干净备用。器皿使用后随时清洗,染菌后应严格高压灭菌,不得乱弃乱扔。(3) 试剂的管理药品试剂陈列整齐,放置有序、避光、防潮、通风干燥,瓶签完整,剧毒药品加锁存放、易燃、挥发、腐蚀品种单独贮存。称取药品试剂应按操作规范进行,用后盖好,必要时可封口或黑纸包裹,不使用过期或变质药品。经常检查危险品储藏情况,以消除事故隐患。实验室及库房中应准备好消防器材,管理人员必须具备防火灭火知识。12.3 实验室安全管理(1) 进入实验室工作衣、帽、鞋必须穿戴整齐。(2) 在进行高压、干燥、消毒等工作时,工作人员不得擅自离现场,认真观察温度、时间,蒸馏易挥发、易燃液体时,不准直接加热,应置水浴锅上进行,试验过程中如产生毒气时应在避毒柜内操作。(3) 严禁用口直接吸取药品和菌液,按无菌操作进行,如发生菌液、病原体溅出容器外时,应立即用有效消毒剂进行彻底消毒,安全处理后方可离开现场。(4) 工作完毕,两手用清水肥皂洗净,必要时可用新洁尔灭、过氧乙酸泡手,然后用水冲洗,工作服应经常清洗,保持整洁,必要时高压消毒。(5) 实验完毕,即时清理现场和实验用具,对染菌带毒物品,进行消毒灭菌处理.(6) 每日下班,尤其节假日前后认真检查水、电和正在使用的仪器设备,关好门窗,方可离去。(7) 一旦发生火灾,要临危不惧,冷静沉着,及时采取灭火措施。若局部起火,应立即切断电,并关闭燃气阀门,用湿抹布或石棉覆盖熄火。若火势较猛,应根据具体情况,选用适当的灭火方法进行灭火,并立即与有关部门联系,请求救援。(8) 应了解毒物的侵

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