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文档简介

DGGE实验方法一、 试剂准备(Reagent Preparation)1. 40% Acrylamide/Bis(37.5:1)ReagentAmountAcrylamide38.93gBis-acrylamide1.07gdH2OTo 100.0 ml2. 50 TAE BufferReagentAmountFinal ConcentrationTris base242.0g2 MAcetic acid, glacial57.1 ml1 M0.5 M EDTA, pH 8.0100.0 ml50 mMdH2OTo 1,000.0 mlMix. Autoclave for 20-30 minutes. Store at room temperature.3. 0% Denaturing Solution6% Gel8% Gel 10% Gel12% Gel40% Acrylamide/Bis15ml20ml25 ml30 ml50TAE Buffer2 ml2 ml2 ml2 mldH2O83 ml78 ml73 ml68 mlTotal volume100 ml100 ml100 ml100 mlDegas for 10-15 minutes. Filter through a 0.45 u filter. Store at 4 in a brown bottle for approximately 1 month. 100% Denaturing Solution6% Gel8% Gel10% Gel12% Gel40% Acrylamide/Bis15 ml20 ml25 ml30 ml50TAE Buffer2 ml2 ml2 ml2 mlFormamide(deionized)40 ml40 ml40 ml40 mlUrea42 g42 g42 g 42 gdH2OTo 100 mlTo 100 mlTo 100 mlTo 100 mlDegas for 10-15 minutes. Filter through a 0.45 u filter. Store at 4 in a brown bottle for approximately 1 month. A 100% denaturant solution requires re-dissolving after storage. Place the bottle in a warm bath and stir for faster results.4. For denaturing solutions less than 100%, use the volumes for acrylamide, TAE and water described above in the 100% Denaturing Solution. Use the amounts indicated below for urea and formamideDenaturing Solution10%20%30%40%50%60%70%80%90%Formamide(ml)4812162024283236Urea(g)4.28.412.616.82125.229.433.637.85. 10% Ammonium PersulfateReagentAmountAmmonium persulfate0.1 gdH2O1.0 mlStore at 20 for about a week.6. 2 Gel Loading DyeReagentAmountFinal Concentration2% Bromophenol blue0.25 ml0.05%2% Xylene cyanol0.25 ml0.05%100% Glycerol7.0 ml70%dH2O2.5 mlTotal volume10.0 mlStore at room temperature.7. 1 TAE Running BufferReagentAmount50 TAE buffer140 mldH2O6,860 mlTotal volume7,000 ml8.Denaturing gelGelReagentVolumeReagentVolume0%UF具体根据需要的变性范围按比例计算,共12.5 mlddH2O3.9ml100%UF50 TAE100 uLAPS25 uL40% Acrylamide1 mLTEMED15 uLAPS10 uL配制一个高浓度,一个低浓度,体积各12.5 mL,操作要迅速,配制时抽气和冰浴的必要性不大TEMED8 uL现用现配二、 DGGE 凝胶制备及电泳步骤(1) 仔细清洗玻璃板、塑料隔片和梳子,晾干水分,安装好玻璃板并固定到制胶底座上(短玻璃板面向自己,底座事先调水平),注意玻璃上缘与隔片、夹子平齐;(2) 各取High/Low concentration 两种变性剂12.5 mL,分别加入两个离心管中,加入交联剂(先加APS,再加TEMED),轻轻旋转混匀,吸入相应注射器中,排尽注射器中的气泡,并迅速安装到凝胶传送系统相应的位置上;(3) 将注射器上的塑料软管与Y形管相连,并用夹子将针头固定在长玻璃板上缘中央;(4) 轻柔并匀速推动旋转凸轮来传送凝胶液体,使胶缓慢匀速的注入两块玻璃板中间,速度不易太快,但也不能太慢,以防胶凝固注射器中,直至胶液面距离短玻璃板1厘米左右为止;(5) 迅速在胶液面上加封一层无菌蒸馏水,变性胶即灌制完毕。清洗注射器及传送管。40分钟后小心倒掉胶面上的水,并用吸水纸吸干;(6) 将梳子轻轻插入两块玻璃板之间,配制非变性胶,并用移液器迅速灌入两玻璃板之间,梳齿之间不能有气泡。(此时可打开电泳槽加热开关,预热电泳液至60 )。30分钟后,小心拔去梳子,清洗点样孔,灌胶完成;(7) 将凝胶玻璃从制胶底座上取下,安装到电泳支架上,放入预热至60 的电泳槽内,盖上上层盖子;(8) 点样,将PCR产物减压浓缩至12uL,加入56uL ddH2O至总体积为7uL,加入7uL Dcode 2Loading buffer, 混匀,用移液器加入点样孔中,注意不要有气泡;(9) 调节电源电压为200V,电泳240分钟;(10) SYBR Green 染色; 将电泳支架从电泳槽中取出,卸下凝胶玻璃板,把玻璃板放在装有ddH2O的托盘中,将两侧的隔片取出,轻轻晃动托盘,使凝胶与短玻璃板脱离; 在一个50mL的离心管中加入30 mL 1 TAE,再加入 3 uL SYBR Green ,摇匀; 倒掉托盘中的水,将10mL 上述SYBR Green 倒在胶面上,均匀铺一层,置于避光处; 15min后,复染一次,前次染液不用倒掉; 三次染色后(每次10mL),向托盘中倒入ddH2O,浸没凝胶,轻轻晃动托盘,使凝胶和长玻璃板松动;(11) 紫外凝胶成像系统检测、照相;用长玻璃板托着凝胶,移至载胶台,倾斜玻璃板,使凝胶滑脱玻璃板,平铺在载胶台上,打开紫外灯,照相。三、 配制变性胶的注意事项(1) 配置试剂时一定要用去离子水,制胶时用的各个容器也要用去离子水洗涤干净,以防止氯离子污染。(2) 制胶是实验的

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