腊肉从原料到餐桌的微生物检验.doc

腊肉从原料到餐桌的微生物检验腌腊肉制品，一种传统的食品，也是一种传统的工艺。相对于现代人来讲，腌腊肉制品并非一种过时的食品，它依然是不可或缺的食品。腊肉的加工工艺流程： 选料休整配料腌制滚揉绞切搅拌充填烘烤蒸煮熏制冷却真空包装成品1、感官要求 按国标GB/T5009.44规定的方法检验一级鲜度二级鲜度色泽色泽鲜明，肌肉呈鲜红色或暗红色，脂肪透明或呈乳白色色泽稍淡，肌肉呈暗红色或咖啡色，脂肪呈乳白色，表面可以有霉点，但抹后无痕迹组织状态肉身干爽，结实肉身稍软气味具有广式腊味固有的风味风味略减，脂肪有轻度酸败味2、理化检验（1）亚硝酸盐 按GB/T 5009.33规定的方法测定。主要仪器：小型绞肉机、分光光度计（2）水分 GB/T5009.3-2003主要仪器：干燥箱，分析天平（3）过氧化值 样品处理按GB/T 5009.44规定的方法操作，按GB/T 5009.37规定的方法测定。主要仪器：碱式滴定管、小型绞肉机（4）铅 GB/T5009.12-2003 主要仪器：原子吸收分光光度计、马福炉或恒温干燥箱、瓷坩埚或压力消化器、微波消解装置、分析天平（5）无机砷 GB/T5009.112003主要仪器：可见分光光度计、测砷装置（6）镉 GB/T5009.15-2003主要仪器：马福炉、恒温干燥箱、瓷坩埚或压力消化器、可调式电热板、可调式电炉、原子吸收分光光度计。（7）汞（以Hg计） GB/T5009.17-2003主要仪器：双光束测汞仪、压力消化器、分析天平、恒温干燥箱。(8)添加剂 符合GB2760标准规定a.护色剂：亚硝酸钠(钾)和硝酸钠(钾) GB/T5009.332003 主要仪器：分光光度计、组织捣碎机。b.水分保持剂：磷酸钠、六偏磷酸钠和三聚磷酸钠 GB18902005主要仪器：酸度计 :精度，0 2pH单位，配有饱和甘汞电极和玻璃电极，氟电极电位计，磁力搅拌器。c.增稠剂：明胶和卡拉胶 GB150441994主要仪器：离心管、电炉、红外吸收光谱仪。d.防腐剂：山梨酸GB/T5009.292003 主要仪器：分光光度计、组织捣碎机。e.着色剂：高梁红GB99932005.红曲米GB49291985,红曲红GB159612005主要仪器：分光光度计、微量注射器或色素吸管、展开槽，25 X 6 x 4cm4、层析缸、滤纸、中速滤纸，纸色谱用、薄层板：5 X 20em、电吹风机、水泵3、微生物检验（1）菌落总数 按GB/T 4789.2-2010规定的方法检主要仪器：天平、培养箱、显微镜、均质器。（2）乳酸菌 按GB/T 4789.35-2010规定的方法检主要仪器：天平、培养箱、显微镜、均质器、水浴锅。（3）大肠杆菌 按GB/T 4789.3-2010规定的方法检验主要仪器：天平、培养箱、显微镜、均质器、水浴锅。（4）沙门氏菌。按GB/T 4789.4-2010规定的方法检验主要仪器：天平、培养箱、显微镜、均质器。（5）志贺氏菌。按GB/T 4789.5-2011规定的方法检验主要仪器：天平、培养箱、显微镜、均质器。（6）金黄色葡萄球菌。按GB4789.10-2010规定的方法检验主要仪器：天平、培养箱、显微镜、离心机、均质器。（7）酵母菌和霉菌。按GB4789.15-2010规定的方法检验主要仪器：天平、培养箱、显微镜、离心机、均质器。4、检验指标和合格要求项 目指 标水分（%）25食盐（%，以NaCl计）10铅（Pb），mg/kg 05无机砷，mg/kg 005镉（Cd），mg/kg 01汞（以Hg计），mg/kg 005亚硝酸盐（以NaNO2计），mg/kg 30过氧化值（以脂肪计），g/100g 025大肠菌群，MPN/100g 30致病菌（沙门氏菌、志贺氏菌、金黄色葡萄球菌）不得检出注：净含量应符合国家质量监督检验检疫总局第75号令定量包装商品计量监督管理办法的规定。样品的菌落总数的检验（一）选择检验方法：食品安全国家标准食品微生物学检验 菌落总数测定1 范围本标准规定了食品中菌落总数（Aerobic plate count）的测定方法。本标准适用于食品中菌落总数的测定。2 术语和定义2.1 菌落总数 aerobic plate count食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每g（mL）检样中形成的微生物菌落总数。3 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：3.1 恒温培养箱：36 1 ，30 1 。3.2 冰箱：2 5 。3.3 恒温水浴箱：46 1 。3.4 天平：感量为0.1 g。3.5 均质器。3.6 振荡器。3.7 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。3.8 无菌锥形瓶：容量250 mL、500 mL。3.9 无菌培养皿：直径90 mm。3.10 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。3.11 放大镜或/和菌落计数器。4 培养基和试剂4.1 平板计数琼脂培养基：见附录A 中A.1。4.2 磷酸盐缓冲液：见附录A 中A.2。4.3 无菌生理盐水：见附录A 中A.3。5 检验程序菌落总数的检验程序见图1。6 操作步骤6.1 样品的稀释6.1.1 固体和半固体样品：称取25 g 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min10000 r/min 均质1 min2 min，或放入盛有225 mL 稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min2 min，制成1:10 的样品匀液。6.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10 的样品匀液。6.1.3 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于盛有9 mL 稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。6.1.4 按6.1.3 操作程序，制备10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1 次1 mL 无菌吸管或吸头。6.1.5 根据对样品污染状况的估计，选择2 个3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10 倍递增稀释时，吸取1 mL 样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。6.1.6 及时将15 mL20 mL 冷却至46 的平板计数琼脂培养基（可放置于46 1 恒温水浴箱中保温）倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。6.2 培养6.2.1 待琼脂凝固后，将平板翻转，36 1 培养48 h2 h。水产品30 1 培养72 h3 h。6.2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基（约4 mL），凝固后翻转平板，按6.2.1 条件进行培养。6.3 菌落计数可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units，CFU）表示。6.3.1 选取菌落数在30 CFU300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU 的平板记录具体菌落数，大于300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。6.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。6.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。7 结果与报告7.1 菌落总数的计算方法7.1.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每g（mL）样品中菌落总数结果。7.1.2 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按下列公式计算：式中：N样品中菌落数；C平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和；n1第一稀释度（低稀释倍数）平板个数；n2第二稀释度（高稀释倍数）平板个数；d稀释因子（第一稀释度）。示例：稀释度1:100（第一稀释度）1:1000（第二稀释度）菌落数（CFU）232，24433，35上述数据按7.2.2数字修约后，表示为25000或2.51047.1.3 若所有稀释度的平板上菌落数均大于300 CFU，则对稀释度最高的平板进行计数，其他平板可记录为多不可计，结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。7.1.4 若所有稀释度的平板菌落数均小于30 CFU，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。7.1.5 若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于1 乘以最低稀释倍数计算。7.1.6 若所有稀释度的平板菌落数均不在30 CFU300 CFU 之间，其中一部分小于30 CFU 或大于300CFU 时，则以最接近30 CFU 或300 CFU 的平均菌落数乘以稀释倍数计算。7.2 菌落总数的报告7.2.1 菌落数小于100 CFU 时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。7.2.2 菌落数大于或等于100 CFU 时，第3 位数字采用“四舍五入”原则修约后，取前2 位数字，后面用0 代替位数；也可用10 的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。7.2.3 若所有平板上为蔓延菌落而无法计数，则报告菌落蔓延。7.2.4 若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效。7.2.5 称重取样以CFU/g 为单位报告，体积取样以CFU/mL 为单位报告。附录A（规范性附录）培养基和试剂A.1 平板计数琼脂（plate count agar，PCA）培养基A.1.1 成分胰蛋白胨 5.0 g酵母浸膏 2.5 g葡萄糖 1.0 g琼 脂 15.0 g蒸馏水 1000 mLpH 7.00.2A.1.2 制法将上述成分加于蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH。分装试管或锥形瓶，121 高压灭菌15 min。A.2 磷酸盐缓冲液A.2.1 成分磷酸二氢钾（KH2PO4） 34.0 g蒸馏水 500 mLpH 7.2A.2.2 制法贮存液：称取34.0 g的磷酸二氢钾溶于500 mL蒸馏水中，用大约175 mL的1 mol/L氢氧化钠溶液调节pH，用蒸馏水稀释至1 000 mL后贮存于冰箱。稀释液：取贮存液1.25 mL，用蒸馏水稀释至1 000 mL，分装于适宜容器中，121 高压灭菌15 min。A.3 无菌生理盐水A.3.1 成分氯化钠 8.5 g蒸馏水 1 000 mLA.3.2 制法称取8.5氯化钠溶于1 000 mL蒸馏水中，121 高压灭菌15 min。乳酸菌的检测1 范围 本标准规定了含乳酸菌食品中乳酸菌（lactic acid bacteria ）的检验方法。 本标准适用于含活性乳酸菌的食品中乳酸菌的检验。 2 规范性引用文件 本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本标准。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。 3 术语和定义 3.1 乳酸菌 lactic acid bacteria 一类可发酵糖主要产生大量乳酸的细菌的通称。本标准中乳酸菌主要为乳杆菌属（Lactobacillus）、双歧杆菌属（Bifidobacterium）和链球菌属（Streptococcus ）。 4 设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下： 4.1 恒温培养箱：36 1 。 4.2 冰箱：2 5 。 4.3 均质器及无菌均质袋、均质杯或灭菌乳钵。 4.4 天平：感量 0.1 g。 4.5 无菌试管：18 mm180 mm 、15 mm100 mm 。 4.6 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL （具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。 4.7 无菌锥形瓶：500 mL、250 mL。 5 培养基和试剂 5.1 MRS（Man Rogosa Sharpe）培养基及莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）改良 MRS培养基：见附录 A 中A.1。 5.2 MC培养基（Modified Chalmers 培养基）：见附录A 中A.2。 5.3 0.5 %蔗糖发酵管：见附录 A 中A.3。 5.4 0.5 %纤维二糖发酵管：见附录 A 中A.3。 5.5 0.5 % 麦芽糖发酵管：见附录 A 中A.3。 5.6 0.5 % 甘露醇发酵管：见附录 A 中A.3。 5.7 0.5 %水杨苷发酵管：见附录A中A.3。 5.8 0.5 %山梨醇发酵管：见附录A中A.3。 5.9 0.5 %乳糖发酵管：见附录A中A.3。 5.10 七叶苷发酵管：见附录A中A.4。 5.11 革兰氏染色液：见附录A中A.5。 5.12 莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）：化学纯。 6 检验程序 乳酸菌检验程序见图1 。 图1 乳酸菌检验程序图7 操作步骤 7.1样品制备 7.1.1 样品的全部制备过程均应遵循无菌操作程序。 7.1.2 冷冻样品可先使其在 2 5 条件下解冻，时间不超过 18 h ，也可在温度不超过 45 的条件解冻，时间不超过15 min 。 7.1.3 固体和半固体食品：以无菌操作称取 25 g 样品，置于装有 225 mL生理盐水的无菌均质杯内，于8000 r/min10000 r/min 均质1 min2 min，制成 1:10 样品匀液；或置于 225 mL生理盐水的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min2 min 制成1:10 的样品匀液。 7.1.4 液体样品：液体样品应先将其充分摇匀后以无菌吸管吸取样品 25 mL 放入装有225 mL 生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分振摇，制成1:10 的样品匀液。 7.2 步骤 7.2.1 用1 mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于装有9 mL生理盐水的无菌试管中（注意吸管尖端不要触及稀释液），振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。 7.2.2 另取1 mL无菌吸管或微量移液器吸头，按上述操作顺序，做 10 倍递增样品匀液，每递增稀释一次，即换用1 次1 mL灭菌吸管或吸头。 7.2.3 乳酸菌计数 7.2.3.1 乳酸菌总数 根据待检样品活菌总数的估计，选择2 个3 个连续的适宜稀释度，每个稀释度吸取0.1 mL样品匀液分别置于2 个MRS琼脂平板，使用 L 形棒进行表面涂布。36 1 ，厌氧培养 48 h2 h 后计数平板上的所有菌落数。从样品稀释到平板涂布要求在15min 内完成。 7.2.3.2 双歧杆菌计数 根据对待检样品双歧杆菌含量的估计，选择 2 个3 个连续的适宜稀释度，每个稀释度吸取 0.1 mL样品匀液于莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）改良MRS琼脂平板，使用灭菌L 形棒进行表面涂布，每个稀释度作两个平板。36 1 ，厌氧培养 48 h2 h 后计数平板上的所有菌落数。从样品稀释到平板涂布要求在15 min 内完成。 7.2.3.3 嗜热链球菌计数 根据待检样品嗜热链球菌活菌数的估计，选择2 个3 个连续的适宜稀释度，每个稀释度吸取0.1 mL样品匀液分别置于2 个MC琼脂平板，使用 L 形棒进行表面涂布。36 1 ，需氧培养 48 h2 h 后计数。嗜热链球菌在MC琼脂平板上的菌落特征为：菌落中等偏小，边缘整齐光滑的红色菌落，直径2 mm1 mm，菌落背面为粉红色。从样品稀释到平板涂布要求在15 min 内完成。 7.2.3.4 乳杆菌计数 7.2.3.1 项乳酸菌总数结果减去7.2.3.2 项双歧杆菌与7.2.3.3 项嗜热链球菌计数结果之和即得乳杆菌计数。 7.3 菌落计数 可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units ，CFU ）表示。 7.3.1 选取菌落数在 30 CFU300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于 30 CFU的平板记录具体菌落数，大于300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。 7.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2 ，代表一个平板菌落数。 7.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。 7.4 结果的表述 7.4.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每g （mL）中菌落总数结果。 7.4.2 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按公式（1 ）计算： (1) 式中： N 样品中菌落数； C 平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和； n1 第一稀释度（低稀释倍数）平板个数； n2 第二稀释度（高稀释倍数）平板个数； d 稀释因子（第一稀释度）。 7.4.3 若所有稀释度的平板上菌落数均大于 300 CFU ，则对稀释度最高的平板进行计数，其他平板可记录为多不可计，结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。 7.4.4 若所有稀释度的平板菌落数均小于30 CFU，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。 7.4.5 若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于 1 乘以最低稀释倍数计算。 7.4.6 若所有稀释度的平板菌落数均不在 30 CFU300 CFU 之间，其中一部分小于30 CFU或大于300 CFU 时，则以最接近30 CFU或300 CFU 的平均菌落数乘以稀释倍数计算。 7.5 菌落数的报告 7.5.1 菌落数小于 100 CFU 时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。 7.5.2 菌落数大于或等于 100 CFU 时，第 3 位数字采用“四舍五入”原则修约后，取前 2 位数字，后面用0 代替位数；也可用 10 的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。 7.5.3 称重取样以 CFU/g 为单位报告，体积取样以 CFU/mL 为单位报告。 8 结果与报告 根据菌落计数结果出具报告，报告单位以CFU/g （mL）表示。 9 乳酸菌的鉴定（可选做） 9.1 纯培养 挑取3 个或以上单个菌落，嗜热链球菌接种于 MC琼脂平板，乳杆菌属接种于 MRS琼脂平板，置36 1 厌氧培养 48 h 。 9.2 鉴定 9.2.1 双歧杆菌的鉴定按 GB/T 4789.34 的规定操作。 9.2.2 涂片镜检：乳杆菌属菌体形态多样，呈长杆状、弯曲杆状或短杆状。无芽胞，革兰氏染色阳性。嗜热链球菌菌体呈球形或球杆状，直径为 0.5 m2.0 m，成对或成链排列，无芽胞，革兰氏染色阳性。 9.2.3 乳酸菌菌种主要生化反应见表 1 和表2 。 附录 A （规范性附录） 培养基及试剂 A.1 MRS培养基 A.1.1 成分 蛋白胨 10.0 g牛肉粉 5.0 g酵母粉 4.0 g葡萄糖 20.0 g吐温80 1.0 mLK2 HPO 4 7H2O 2.0 g醋酸钠3H2O 5.0 g柠檬酸三铵 2.0 gMgSO47H2O 0.2 gMnSO44H2O 0.05 g琼脂粉 pH 6.2 15.0 gA.1.2 制法 将上述成分加入到1000 mL 蒸馏水中，加热溶解，调节pH，分装后 121 高压灭菌 15 min 20 min 。 A.1.3 莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）改良MRS培养基 A.1.3.1 莫匹罗星锂盐（ Li-Mupirocin）储备液制备：称取 50mg 莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）加入到50 mL 蒸馏水中，用0.22 m 微孔滤膜过滤除菌。 A.1.3.2 制法 将A.1.1 成分加入到 950 mL 蒸馏水中，加热溶解，调节pH，分装后于121 高压灭菌 15 min 20 min 。临用时加热熔化琼脂，在水浴中冷至48 ，用带有 0.22 m 微孔滤膜的注射器将莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）储备液加入到熔化琼脂中，使培养基中莫匹罗星锂盐（Li-Mupirocin）的浓度为50 g/mL。 A.2 MC培养基 A.2.1 成分 大豆蛋白胨 5.0 g牛肉粉 3.0 g酵母粉 3.0 g葡萄糖 20.0 g乳糖 20.0 g碳酸钙 10.0 g琼脂 15.0 g蒸馏水 1 000 mL1 中性红溶液 pH6.0 5.0 mLA.2.2 制法 将前面7 种成分加入蒸馏水中，加热溶解，调节 pH，加入中性红溶液。分装后 121 高压灭菌15 min20 min 。 A.3 乳酸杆菌糖发酵管 A.3.1 基础成分 牛肉膏 5.0 g蛋白胨 5.0 g酵母浸膏 5.0 g吐温80 0.5 mL琼脂 1.5 g1.6%溴甲酚紫酒精溶液 1.4 mL蒸馏水 1 000 mLA.3.2 制法 按0.5%加入所需糖类，并分装小试管,121 高压灭菌 15 min 20 min 。 A.4七叶苷发酵管 A.4.1 成分 蛋白胨 5.0 g磷酸氢二钾 1.0 g七叶苷 3.0 g柠檬酸铁 0.5 g1.6%溴甲酚紫酒精溶液 1.4 mL蒸馏水 100 mLA.4.2 制法 将上述成分加入蒸馏水中，加热溶解，121 高压灭菌 15 min20 min。 A.5革兰氏染色液 A.5.1 结晶紫染色液 A.5.1.1 成分 结晶紫 1.0 g95乙醇 20 mL1 草酸铵水溶液 80 mLA.5.1.2 制法 将结晶紫完全溶解于乙醇中，然后与草酸铵溶液混合。 A.5.2 革兰氏碘液 A.5.2.1 成分 碘 1.0 g碘化钾 2.0 g蒸馏水 300 mLA.5.2.2 制法 将碘与碘化钾先进行混合，加入蒸馏水少许，充分振摇，待完全溶解后，再加蒸馏水至300 mL。 A.5.3 沙黄复染液 A.5.3.1 成分 沙黄 0.25 g95乙醇 10 mL蒸馏水 90 mLA.5.3.2 制法 将沙黄溶解于乙醇中，然后用蒸馏水稀释。 A.5.4 染色法 A.5.4.1 将涂片在酒精灯火焰上固定，滴加结晶紫染色液，染 1 min，水洗。 A.5.4.2 滴加革兰氏碘液，作用 1 min，水洗。 A.5.4.3 滴加 95 乙醇脱色，约 15 s 30 s ，直至染色液被洗掉，不要过分脱色，水洗。 A.5.4.4 滴加复染液，复染1 min。水洗、待干、镜检。 大肠菌群的检验（一）、大肠菌群的生物学特性1.形态与染色：革兰氏染色阴性，无芽胞杆菌。2.发酵乳糖产酸产气 3.培养特性：在伊红美兰琼脂（）上的典型菌落:呈深紫黑色或中心深紫色，圆形，稍凸起，边缘整齐，表面光滑，常有金属光泽；在麦康凯琼脂上的典型菌落:呈桃红色或中心桃红、圆形，扁平，光滑湿润。（二）、大肠菌群检验方法及操作方法国家标准：三步法：乳糖胆盐发酵试验分离培养证实试验(乳糖发酵试验、革兰氏染色) （三）餐具大肠菌群快速检验(纸片法)使 用 方 法 ：1. 采样610份。碗、盘、杯等每份贴纸片两张，用无菌生理盐水湿润纸片后，立即贴于食具内侧表面，30秒后取下，置于原塑料袋内。筷子以5只为一份样品，用吸管吸取生理盐水湿润纸片后，立即将筷子进口端（约5cm）抹拭两张，放入原塑料袋内。2.将已采样的纸样置于37C培养15小时.纸片在黄色背景上出现红色斑点为阳性，纸片在紫兰色背景上呈现红色斑点，但周围没有黄晕均为大肠菌群阴性。同一份样品两张纸片均是阴性为合格。沙门氏菌的检验1、地位：是肠杆菌科、埃希氏菌族、沙门氏菌属中的细菌2、定义 是肠杆菌科中形态和培养特征，生化反应及抗原结构相似，被O1噬菌体裂解的一群革兰氏阴性杆菌。国家标准GB 4789.4-2003 食品卫生微生物学检验沙门氏菌检验（一）、形态与染色：革兰氏染色阴性，无荚膜，无芽胞，多数有鞭毛，有动力，短小杆菌。（二）、培养特性1、需氧或兼性厌氧，最适温度37，PH7.27.4。2、对营养要求不高，在普通培养基生长良好，37 ，24h，能形成菌落中等大小，直径23mm，圆形或卵形，表面光滑湿润，无色半透明，边缘整齐的菌落3、在液体培养基中，呈均匀混浊性生长，无菌膜。依据 GB 4789.42010食品卫生微生物学检验 沙门氏菌检验食品安全国家标准 食品微生物学检验 沙门氏菌检验1 范围本标准规定了食品中沙门氏菌（Salmonella）的检验方法。本标准适用于食品中沙门氏菌的检验。2 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：2.1 冰箱：2 5 。2.2 恒温培养箱：36 1 ，42 1 。2.3 均质器。2.4 振荡器。2.5 电子天平：感量0.1 g。2.6 无菌锥形瓶:容量500 mL，250 mL。2.7 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。2.8 无菌培养皿：直径90 mm。2.9 无菌试管：3 mm50 mm、10 mm75 mm。2.10 无菌毛细管。2.11 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。2.12 全自动微生物生化鉴定系统。3 培养基和试剂3.1 缓冲蛋白胨水（BPW）： 见附录A 中A.1。3.2 四硫磺酸钠煌绿（TTB）增菌液：见附录A 中A.2。3.3 亚硒酸盐胱氨酸（SC）增菌液：见附录A 中A.3。3.4 亚硫酸铋（BS）琼脂：见附录A 中A.4。3.5 HE 琼脂：见附录A 中A.5。3.6 木糖赖氨酸脱氧胆盐（XLD）琼脂：见附录A 中A.6。3.7 沙门氏菌属显色培养基。3.8 三糖铁（TSI）琼脂：见附录A 中A.7。3.9 蛋白胨水、靛基质试剂：见附录A 中A.8。3.10 尿素琼脂（pH 7.2）：见附录A 中A.9。3.11 氰化钾 （KCN） 培养基：见附录A 中A.10。3.12 赖氨酸脱羧酶试验培养基：见附录A 中A.11。3.13 糖发酵管：见附录A 中A.12。3.14 邻硝基酚-D 半乳糖苷（ONPG）培养基：见附录A 中A.13。3.15 半固体琼脂：见附录A 中A.14。3.16 丙二酸钠培养基：见附录A 中A.15。3.17 沙门氏菌O 和H 诊断血清。3.18 生化鉴定试剂盒。4 检验程序沙门氏菌检验程序见下图。5 操作步骤5.1 前增菌称取25 g（mL）样品放入盛有225 mL BPW 的无菌均质杯中，以8 000 r/min10 000 r/min 均质1 min2 min，或置于盛有225 mL BPW 的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min2 min。若样品为液态，不需要均质，振荡混匀。如需测定pH 值，用1 mol/mL 无菌NaOH 或HCl 调pH 至6.80.2。无菌操作将样品转至500 mL 锥形瓶中，如使用均质袋，可直接进行培养，于36 1 培养8 h18h。如为冷冻产品,应在45 以下不超过15 min,或2 5 不超过18 h 解冻。5.2 增菌轻轻摇动培养过的样品混合物，移取1 mL，转种于10 mL TTB 内，于42 1 培养18 h24h。同时，另取1 mL，转种于10 mL SC 内，于36 1 培养18 h24 h。5.3 分离分别用接种环取增菌液1 环，划线接种于一个BS 琼脂平板和一个XLD 琼脂平板（或HE 琼脂平板或沙门氏菌属显色培养基平板）。于36 1 分别培养18 h24 h （XLD 琼脂平板、HE 琼脂平板、沙门氏菌属显色培养基平板） 或40 h48 h （BS 琼脂平板），观察各个平板上生长的菌落,各个平板上的菌落特征见表1。选择性琼脂平板沙门氏菌BS琼脂菌落为黑色有金属光泽、棕褐色或灰色，菌落周围培养基可呈黑色或棕色，有些菌株形成灰绿色的菌落，周围培养基不变HE琼脂蓝绿色或蓝色，多数菌落中心黑色或几乎全黑色，有些菌株为黄色，中心黑色或几乎全黑色XLD琼脂菌落呈粉红色，带或不带黑色中心，有些菌株可呈现大的带光泽的黑色中心，或呈现全部黑色的菌落，有些菌株为黄色菌落，带或不带黑色中心沙门氏菌属显色培养基按照显色培养基的说明进行判定表1 沙门氏菌属在不同选择性琼脂平板上的菌落特征5.4 生化试验5.4.1 自选择性琼脂平板上分别挑取2 个以上典型或可疑菌落，接种三糖铁琼脂，先在斜面划线，再于底层穿刺；接种针不要灭菌,直接接种赖氨酸脱羧酶试验培养基和营养琼脂平板，于36 1 培养18 h24 h，必要时可延长至48 h。在三糖铁琼脂和赖氨酸脱羧酶试验培养基内，沙门氏菌属的反应结果见表2。三塘铁琼脂赖氨酸脱羧酶试验培养基初步判断斜面底层产气硫化氢KA（）（）可疑沙门氏菌属KA（）（）可疑沙门氏菌属AA（）（）可疑沙门氏菌属AA/非沙门氏菌KK/非沙门氏菌注：K：产碱；A：产酸；：阳性；：阴性；（）：多数阳性，少数阴性；/：阳性或阴性表2 沙门氏菌属在三塘铁琼脂和赖氨酸脱羧酶试验培养基内的反应结果5.4.2 接种三糖铁琼脂和赖氨酸脱羧酶试验培养基的同时,可直接接种蛋白胨水 （供做靛基质试验）、尿素琼脂 （pH7.2）、氰化钾 （KCN） 培养基，也可在初步判断结果后从营养琼脂平板上挑取可疑菌落接种。于36 1 培养18 h24 h，必要时可延长至48 h，按表3 判定结果。将已挑菌落的平板储存于2 5 或室温至少保留24 h，以备必要时复查。反应序号硫化氢（H2S）靛基质pH 7.2尿素氰化钾（KCN）赖氨酸脱羧酶A1A2A3/注：阳性；：阴性；/：阳性或阴性表3 沙门氏菌属生化反应初步鉴别表5.4.2.1 反应序号A1：典型反应判定为沙门氏菌属。如尿素、KCN 和赖氨酸脱羧酶3 项中有1项异常，按表4 可判定为沙门氏菌。 如有2 项异常为非沙门氏菌。pH 7.2尿素氰化钾（KCN）赖氨酸脱羧酶判定结果甲型副伤寒沙门氏菌（要求血清学鉴定结果沙门氏菌或（要求符合本群生化特性沙门氏菌个别变体（要求血清学鉴定结果）注：阳性；：阴性表4 沙门氏菌属生化反应初步鉴别表5.4.2.2 反应序号A2：补做甘露醇和山梨醇试验，沙门氏菌靛基质阳性变体两项试验结果均为阳性，但需要结合血清学鉴定结果进行判定。5.4.2.3 反应序号A3：补做ONPG。ONPG 阴性为沙门氏菌，同时赖氨酸脱羧酶阳性,甲型副伤寒沙门氏菌为赖氨酸脱羧酶阴性。5.4.2.4 必要时按表5 进行沙门氏菌生化群的鉴别。项目卫矛醇山梨醇水杨苷ONPG丙二酸盐KCN注：阳性；：阴性表5 沙门氏菌属各生化群的鉴别5.4.3 如选择生化鉴定试剂盒或全自动微生物生化鉴定系统，可根据5.4.1 的初步判断结果，从营养琼脂平板上挑取可疑菌落，用生理盐水制备成浊度适当的菌悬液，使用生化鉴定试剂盒或全自动微生物生化鉴定系统进行鉴定。5.5 血清学鉴定5.5.1 抗原的准备一般采用1.21.5琼脂培养物作为玻片凝集试验用的抗原。O 血清不凝集时，将菌株接种在琼脂量较高的 （如23） 培养基上再检查；如果是由于Vi 抗原的存在而阻止了O 凝集反应时，可挑取菌苔于1 mL 生理盐水中做成浓菌液，于酒精灯火焰上煮沸后再检查。H 抗原发育不良时，将菌株接种在0.550.65半固体琼脂平板的中央，俟菌落蔓延生长时，在其边缘部分取菌检查；或将菌株通过装有0.30.4半固体琼脂的小玻管1 次2次，自远端取菌培养后再检查。5.5.2 多价菌体抗原（O）鉴定在玻片上划出2 个约1 cm2 cm 的区域，挑取1 环待测菌，各放1/2 环于玻片上的每一区域上部，在其中一个区域下部加1 滴多价菌体（O）抗血清，在另一区域下部加入1 滴生理盐水，作为对照。再用无菌的接种环或针分别将两个区域内的菌落研成乳状液。将玻片倾斜摇动混合1 min，并对着黑暗背景进行观察，任何程度的凝集现象皆为阳性反应。5.5.3 多价鞭毛抗原（H）鉴定同5.5.2。5.5.4 血清学分型（选做项目）5.5.4.1 O抗原的鉴定用AF 多价O 血清做玻片凝集试验，同时用生理盐水做对照。在生理盐水中自凝者为粗糙形菌株，不能分型。被AF 多价O 血清凝集者，依次用O4；O3、O10；O7；O8；O9；O2 和O11 因子血清做凝集试验。根据试验结果，判定O 群。被O3、O10 血清凝集的菌株，再用O10、O15、O34、O19 单因子血清做凝集试验，判定E1、E2、E3、E4 各亚群，每一个O 抗原成分的最后确定均应根据O 单因子血清的检查结果，没有O 单因子血清的要用两个O 复合因子血清进行核对。不被AF 多价O 血清凝集者，先用9 种多价O 血清检查，如有其中一种血清凝集，则用这种血清所包括的O 群血清逐一检查，以确定O 群。每种多价O 血清所包括的O 因子如下：O 多价1 A，B，C，D，E，F，群 （并包括6,14 群）O 多价2 13，16，17，18，21 群O 多价3 28，30，35，38，39 群O 多价4 40，41，42，43 群O 多价5 44，45，47，48 群O 多价6 50，51，52，53 群O 多价7 55，56，57，58 群O 多价8 59，60，61，62 群O 多价9 63，65，66，67 群5.5.4.2 H 抗原的鉴定属于AF 各O 群的常见菌型，依次用表6 所述H 因子血清检查第1 相和第2 相的H 抗原。O群第1相第2相Aa无Bg，f，s无Bi，b，d2C1k，v，r，c5，Z15C2b，d，r2，5D（不产气的）d无D（产气的）g，m，p，q无E1b，v6，w，xE4g，s，t无E4i表6 AF群常见菌型H抗原表不常见的菌型，先用8 种多价H 血清检查，如有其中一种或两种血清凝集，则再用这一种或两种血清所包括的各种H 因子血清逐一检查，以第1 相和第2 项的H 抗原。8 种多价H 血清所包括的H因子如下：H 多价1 a，b，c，d，iH 多价2 eh，enx，enz15，fg，gms，gpu，gp，gq，mt，gz51H 多价3 k，r，y，z，z10，lv，lw，lz13，lz28，lz40H 多价4 1,2；1,5；1,6；1,7；z6H 多价5 z4z23，_z4z24，z4z32，z29，z35，z36，z38H 多价6 z39，z41，z42，z44H 多价7 z52，z53，z54，z55H 多价8 z56，z57，z60，z61，z62每一个H 抗原成分的最后确定均应根据H 单因子血清的检查结果，没有H 单因子血清的要用两个H 复合因子血清进行核对。检出第1 相H 抗原而未检出第2 相H 抗原的或检出第2 相H 抗原而未检出第1 相H 抗原的,可在琼脂斜面上移种12 代后再检查。如仍只检出一个相的H 抗原，要用位相变异的方法检查其另一个相。单相菌不必做位相变异检查。位相变异试验方法如下：小玻管法： 将半固体管（每管约1 mL2 mL） 在酒精灯上溶化并冷至50 ，取已知相的H因子血清0.05 mL0.1 mL，加入于溶化的半固体内，混匀后，用毛细吸管吸取分装于供位相变异试验的小玻管内，俟凝固后，用接种针挑取待检菌，接种于一端。将小玻管平放在平皿内，并在其旁放一团湿棉花，以防琼脂中水分蒸发而干缩，每天检查结果，待另一相细菌解离后，可以从另一端挑取细菌进行检查。培养基内血清的浓度应有适当的比例，过高时细菌不能生长，过低时同一相细菌的动力不能抑制。一般按原血清1：2001：800 的量加入。小倒管法：将两端开口的小玻管 （下端开口要留一个缺口，不要平齐） 放在半固体管内,小玻管的上端应高出于培养基的表面，灭菌后备用。临用时在酒精灯上加热溶化，冷至50 ，挑取因子血清1 环，加入小套管中的半固体内，略加搅动，使其混匀，俟凝固后，将待检菌株接种于小套管中的半固体表层内，每天检查结果，待另一相细菌解离后，可从套管外的半固体表面取菌检查，或转种1软琼脂斜面，于37 培养后再做凝集试验。简易平板法：将0.350.4半固体琼脂平板烘干表面水分，挑取因子血清1 环，滴在半固体平板表面，放置片刻，待血清吸收到琼脂内，在血清部位的中央点种待检菌株，培养后，在形成蔓延生长的菌苔边缘取菌检查。5.5.4.3 Vi 抗原的鉴定用Vi 因子血清检查。已知具有Vi 抗原的菌型有：伤寒沙门氏菌，丙型副伤寒沙门氏菌,都柏林沙门氏菌。5.5.4.4 菌型的判定根据血清学分型鉴定的结果，按照附录A 或有关沙门氏菌属抗原表判定菌型。6 结果与报告综合以上生化试验和血清学鉴定的结果，报告25 g（mL）样品中检出或未检出沙门氏菌。附录A（规范性附录）培养基和试剂A.1 缓冲蛋白胨水（BPW）A.1.1 成分蛋白胨 10.0 g氯化钠 5.0 g磷酸氢二钠（含12 个结晶水） 9.0 g磷酸二氢钾 1.5 g蒸馏水 1 000 mLpH 7.20.2A.1.2 制法将各成分加入蒸馏水中，搅混均匀，静置约10 min，煮沸溶解，调节pH，高压灭菌121 ，15min。A.2 四硫磺酸钠煌绿（TTB）增菌液A.2.1 基础液蛋白胨 10.0 g牛肉膏 5.0 g氯化钠 3.0 g碳酸钙 45.0 g蒸馏水 1 000 mLpH 7.00.2除碳酸钙外，将各成分加入蒸馏水中，煮沸溶解，再加入碳酸钙，调节pH，高压灭菌121 ，20 min。A.2.2 硫代硫酸钠溶液硫代硫酸钠（含5 个结晶水） 50.0 g蒸馏水 加至100 mL高压灭菌121 ，20 min。A.2.3 碘溶液碘 片 20.0 g碘化钾 25.0 g蒸馏水 加至100 mL将碘化钾充分溶解于少量的蒸馏水中，再投入碘片，振摇玻瓶至碘片全部溶解为止，然后加蒸馏水至规定的总量，贮存于棕色瓶内，塞紧瓶盖备用。A.2.4 0.5煌绿水溶液煌绿 0.5 g蒸馏水 100 mL溶解后，存放暗处，不少于1d，使其自然灭菌。A.2.5 牛胆盐溶液牛胆盐 10.0 g蒸馏水