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分光光度法测定DNA的浓度和纯度【目的要求】:了解:分光光度法测定DNA浓度和纯度的原理; 掌握:分光光度法测定DNA浓度和纯度的技术方法;熟悉:分光光度法测定DNA浓度和纯度的实验操作步骤和注意事项。【实验原理】:前面提取得到的DNA的浓度和纯度都是未知的,在后续的DNA酶切、连接及转化等实验中需要一定的浓度和纯度要求,因此要测定DNA的浓度和纯度。测定DNA的方法通常有:紫外分光光度法;琼脂糖凝胶电泳法(也叫荧光光度法)(1)紫外分光光度法:组成DNA的碱基均具有一定的吸收紫外线特性,最大吸收值在波长为250270nm之间,腺嘌呤的最大紫外线吸收值在260.5nm,胞嘧啶:267nm,鸟嘌呤:276nm,胸腺嘧啶:264.5nm,尿嘧啶:259nm。这些碱基与戊糖、磷酸形成核苷酸后其最大吸收峰不会改变,但核酸的最大吸收波长是260nm,吸收低谷在230nm。这个物理特性为测定核酸溶液浓度提供了基础。在波长260nm紫外线下,10OD值的光密度相当于双链DNA浓度为50g/ml;单链DNA或RNA为40g/ml;单链寡聚核苷酸为20g/ml。可以此来计算核酸样品的浓度。分光光度法不但能够确定核酸的浓度,还可以通过测定在260nm和280nm的紫外线吸收值的比值(A260/A280)估计核酸的纯度。DNA的比值为1.8,RNA的比值为2.0。若DNA比值高于1.8,说明制剂中RNA尚未除尽。RNA、DNA溶液中含有酚和蛋白质将导致比值降低。270nm存在高吸收表明有酚的干扰。当然也会出现既含蛋白质又含RNA的DNA溶液比值为1.8的情况,所以有必要结合凝胶电泳等方法鉴定有无RNA,或用测定蛋白质的方法检测是否存在蛋白质。紫外分光光度法只用于测定浓度大于0.25g/ml的核酸溶液。(2)琼脂糖凝胶电泳法(荧光光度法):对于很稀的核酸溶液,可以用琼脂糖凝胶电泳法。溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,它插入到DNA分子中形成荧光结合物,使发射的荧光增强几十倍,而荧光的强度正比于DNA的含量,将已知浓度的标准样品作为电泳对照,就可以估计出待测样品的浓度。用量只需要5-10ng DNA即可,肉眼观察可检测0.05g-0.1g的DNA。该方法只是估计水平,另外还应考虑DNA或RNA样品中分子大小与标准对照中核酸分子的长度。【仪器与试剂】:主要仪器:紫外分光光度计、石英杯、离心管、微量移液器;主要试剂:实验1提取的质粒样品、纯水。【重要实验步骤和教学设计】:吸取5L DNA样品或4L RNA样品,加水至1ml混匀后,转入分光光度计的石英比色杯中。如果样品很少,可以用0.5ml的比色杯,上述核酸样品与水的用量缩小一半。先用1ml水对分光光度计校正为零点。在260nm和280nm分别读出光密度,DNA样品的浓度我OD260 核酸稀释倍数 50/1000;RNA样品的浓度OD260 核酸稀释倍数 40/1000;浓度单位为g/L。按步骤1的稀释方式,DNA或RNA的浓度(g/L)均为OD260的10倍;如OD260为0.1,则样品的浓度就为1g/L DNA或RNA。这样稀释倍数非常便于计算。若为DNA样品,OD260/OD280比值大于1.8,说明仍存在RNA,可以考虑用RNA酶处理样品;小于1.6,说明样品中存在蛋白质或酚,应再用酚/氯仿抽提,用乙醚抽提后,以乙醇沉淀纯化DNA。RNA样品OD260/OD280比值小于2,也应该考虑再用酚/氯仿抽提。【实验注意事项】:使用石英杯时要注意拿取方法,不要直接拿透光的那两个侧面;测量前要调零,测量不同样品时要冲洗石英

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