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毕赤酵母常用培养基与载体一、毕赤酵母表达常用载体: 典型的巴斯德毕赤酵母表达载体载体包含醇氧化酶1(AOX1)基因的启动子和转录终止子(5AOX1和3AOX1),它们被多克隆位点(MCS)分开,外源基因可以在此插入。此载体还包含组氨醇脱氢酶基因(HIS4)选择标记及3AOX1区。当整合型载体转化受体时,它的5AOX1和3AOX1能与染色体上的同源基因重组,从而使整个载体连同外源基因插入到受体染色体上,外源基因在5AOX1启动子控制下表达。毕赤酵母本身不分泌内源蛋白,而外源蛋白的分泌需要具有引导分泌的信号序列。而由89个氨基酸组成的酿酒酵母的分泌信号交配因子(-factor)引导序列已经成功地引导了几种外源蛋白的分泌。分泌表达载体主要有:pPIC9,pPIC9K,pHIL-S1,pPICZ A,pYAM75P等。胞内表达载体主要有:pHIL-D2,pA0815,pPIC3K,pPICZ,pHWO10,pGAPZ, pGAPZa(Invitrogen),pPIC3.5K等。工程菌株Y11430,MG1003,GS115 (AOX1),KM71,SMD1168。毕赤酵母宿主菌常用的有GS115和KM71两种,都具有HIS4营养缺陷标记。其中,GS115茵株具有AOX1基因,是Mut,即甲醇利用正常型;而KM71菌株的AOX1位点彼ARG4基因插入,表型为Muts,即甲醇利用缓慢型,两种菌株都适用于一般的酵母转化方法。多拷贝表达菌株的获得方式: 与自主复制的质粒型表达载体不同,整合型表达载体的拷贝数可以有很大的变化。含多拷贝外源基因的表达菌株合成蛋白的量也较多。体内整合可通过高遗传霉素抗性,筛选可能的多拷贝插入;而体外整合可通过连接产生外源基因的串联插入。多拷贝表达菌株的获得方式有两种:一种是利用SDS-PAGE电泳、免疫杂交或菌落点杂交方法在大量的转化子中进行自然筛选。得到产量高的表达菌株。另一种在转化前将多个表达盒拷贝插入到单个载体中,而后再通过交换整合到受体染色体上。表达蛋白纯化方法: 酵母系统表达的蛋白一般都具有活性,所以都采用较温和的纯化方式来纯化目的蛋白,分泌型表达的蛋白有利于纯化,可用硫酸铵沉淀,然后用离子交换,凝胶过滤层析,疏水层析等方法进一步纯化。具体的方法和操作应按所处理的目的蛋白的性质选择。二毕赤酵母表达的培养基配制和用途2.1 LB(LuriaBertani)培养基: Trypton l Yeast Extract 0.5 NaCl l PH 7.0制作平板时加入 2琼脂粉。121高压灭菌 20min。可于室温保存。用于培养pPICZA原核宿主菌TOP10F时可加入Zeocin 25ug / ml。2.2 LLB(Low Salt LB)培养基: Trypton l Yeast Extract 0.5 NaCl 0.5 PH 7.0制作平板时加入 2琼脂粉。121高压灭菌 20min。可于室温保存数月。用于培养pPICZA原核宿主菌TOP10F时,加入Zeocin 25ug / ml,可以4条件下保存12周.2.3 YPD (又称YEPD)Yeast Extract Peptone Dextrose Medium,(Yeast Extract Peptone Dextrose Medium,酵母浸出粉/胰蛋白胨/右旋葡萄糖培养基) Trypton 2%dextrose (glucose) 2%+agar 2%+Zeocin 100 g/ml液体YPD培养基可常温保存,是毕赤酵母的最基本培养基,琼脂YPD平板在4可保存几个月。加入Zeocin 100ug / ml,成为YPDZ培养基,可以4条件下保存12周。2.4 BMGY培养基Yeast extract 1%Peptone 2%磷酸钾缓冲液(pH6.0)100mmol/LYNB 1.34%Biotin (410 -5 )%Glycerol 1%毕赤酵母诱导表达前培养基,YNB和Biotin过滤除菌。培养24小时后,一般静置过夜,待酵母沉淀后倒掉BMGY培养基,改换BMMY培养基,进入诱导表达阶段。2.5 BMMY培养基Yeast extract 1%Peptone 2%磷酸钾缓冲液(pH6.0)100mmol/LYNB 1.34%Biotin (410 -5 )%methanol 3%毕赤酵母诱导表达培养基,YNB和Biotion过滤除菌。摇瓶培养时每24小时之后加入3%的甲醇诱导,一般诱导72小时。2.6 YPDS + Zeocin 培养基(Yeast Extract Peptone Dextrose Medium):yeast extract 1%peptone 2%dextrose (glucose) 2%sorbitol 1 M+agar 2%+ Zeocin 100 g/ml不管是液体YPDS培养基,还是YPDS + Zeocin 培养基,都必须存放4条件下,有效期12周。2.7 MGY Minimal Glycerol Medium (最小甘油培养基)(34%YNB;1%甘油;4*10-5%生物素)。将800ml灭菌水、100ml的10*YNB母液、2ml的500*B母液和100ml的10*GY母液混匀即可,4保存,保存期为2个月。2.8 MGYHMinimal Glycerol Medium + Histidine (最小甘油培养基 + 0.004%组氨酸)在1000ml的MGY培养基中加入10ml的100*H母液混匀,4保存,保存期为2个月。2.9 RDRegeneration Dextrose Medium (葡萄糖再生培养基)(含有:1mol/L的山梨醇;2%葡萄糖;1.34%YNB;4*10-5%生物素;0.005%氨基酸)1. 将186g的山梨醇定容至700ml,高压灭菌;2. 冷却后于45水浴;3. 将100ml的10*D、100ml的10*YNB;2ml的500*B;10ml的100*AA等母液和88ml无菌水混匀,预热至45后,与步骤2的山梨醇溶液混合。4保存。2.10 RDHRegeneration Dextrose Medium + Histidine (葡萄糖再生培养基 + 0.004%组氨酸)在RD培养基配制的第三步中,在加入10ml的100*H母液,同时无菌水的体积减少至78ml即可,其余配制方法与RD相同。4保存。2.11 RD及RDH平板的制备1. 将186g的山梨醇和1520g琼脂粉定容至700ml,高压灭菌;冷却后于60水浴;2. 参照RD/RDH液体培养基配制的步骤4,将100ml的10*D、100ml的10*YNB;2ml的500*B;10ml的100*AA等母液、(10ml的100*H母液)和88(78)ml无菌水混匀,预热至45后,与步骤1的山梨醇/琼脂液混匀;3. 迅速制备平板。4可保存数月。2.12 RD及RDH 的TOP 琼脂的制备(常用于酵母菌的包被)1.将186g的山梨醇和7.510g琼脂粉定容至700ml,高压灭菌;冷却后于60水浴;2.参照RD/RDH液体培养基配制的步骤4,将100ml的10*D、100ml的10*YNB;2ml的500*B;10ml的100*AA等母液、(10ml的100*H母液)和88(78)ml无菌水混匀,预热至45后,与步骤1的山梨醇/琼脂液混匀;3.将该TOP琼脂置于45水浴冷却、保温,备用。2.13 MD与MDHMinimal Dextrose Medium +(Histidine) 最小葡萄糖培养基 +( 0.004 %组氨酸)(含有:1.34%YNB;4*10-5% 生物素;2%葡萄糖)1. 100ml的10*YNB;2ml的500*B和100ml10*D母液,用800ml的无菌水定容至1000ml即可;2. 如配制MDH,可在上述的MD中加入10ml的100*H即可;3. 如配制平板,可无菌水的灭菌前,加入1520g的琼脂。4可保存数月。2.14 SOC培养基: Trypton l Yeast Extract 0.5 NaCl 0.05 Glucose (1mol / L) 2%121高压灭菌 20min,冷却后,4保存。母液的配置注:10*YNB (含有硫酸铵、无氨基酸的13.4%酵母基础氮源培养基) 4保存。34g酵母基础氮源培养基(无硫酸铵)+100g硫酸铵,溶于1000ml水中,过滤除菌。500*B (0.02%生物素 Biotin) 4保存 保存期为1年。20mg的生物素溶于100ml水中,过滤除菌。100*H (0.4%Histidine 组氨酸) 4保存 保存期为1年。400mg的L-组氨酸溶于100ml水中,(加热至50以促进溶解),过滤除菌。10*D (20%Dextrose 葡萄糖) 保存期为1年。200g葡萄糖溶于1000ml水中,灭菌15min或过滤除菌。 10*M (5%Methanol 甲醇) 保存期为2个月。将5ml的甲醇与95ml水混匀,过滤除菌。10*GY (10%Glycerol 甘油) 保存期为1年以上。将100ml甘油和900ml水混匀后,高压灭菌或过滤除菌。100*AA (0.5% of each

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