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文档简介
1、第三节 聚合酶链式反应Polymerase chain reactionPCR,Content of Table,定义 技术优点 原理 标准反应体系 反应五要素 热循环条件的选择 反应特点 常见问题与对策 污染 10 应用,1 定义,在引物指导下由酶催化的对特定克隆或基因组DNA序列进行的体外扩增反应。,Home,2 技术优点,特异、敏感、产率高、快速、简便、重复性好、易自动化等,Home,3 原理,Region to be copied,denaturatation,Primer annealing,Primer extension,Cycle 2,Cycle 3,PCR技术原理,类似于DN
2、A的天然复制过程,其特异性依赖于与靶序列两端互补的寡核苷酸引物。 模板DNA变性:加热至94左右,双链DNA解离成单链; 模板DNA与引物的退火(复性):55左右,引物与模板DNA单链的互补序列配对结合; 引物的延伸:在Taq DNA聚合酶作用下,以dNTP为原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保留复制原理,合成一条新的双链; 重复循环变性-退火-延伸三过程,使DNA扩增量呈指数上升。,PCR product,PCR反应曲线,Home,4 标准反应体系,10扩增缓冲液 10l 4种dNTP混合物 各200mol/L 引物 10100 pmol 模板DNA 0.12g Taq DNA聚合酶 2.5
3、 u (Mg2+) 1.5 mmol/L 加双或三蒸水至 100ul,Home,5 反应五要素,引物 (primer) 酶 (Taq DNA polymerase) dNTP (dATP,dGTP,dCTP,dTTP) 模板 (template) Mg2+ (magnesium),5.1 引物,引物是PCR特异性反应的关键 PCR 产物的特异性取决于引物与模板DNA互补的程度,引物设计的原则,引物长度:15-30个碱基,常为20个碱基左右 引物扩增跨度:以500 bp为宜,特定条件下可扩增长至10kb的片段 引物碱基:G+C含量以40-60%为宜, ATGC最好随机分布,避免引物内或引物间出现
4、二级结构 避免两引物间互补,特别是 3端 引物 3端的碱基要求严格配对 特别是最末及倒数第二个碱基 引物中可以加上合适的酶切位点 要作酶切时加 引物的特异性 引物应与核酸序列数据库的其它序列无明显同源性 两引物的Tm值接近,5.2 酶及其浓度,Taq DNA聚合酶 注:无3 5方向的校正活性 DNA复制1/109;PCR 出错率1/(2104) 一个典型的 PCR 反应约需酶量 2.5 U 浓度过高可引起非特异性扩增,浓度过低则合成产物量减少,5.3 dNTP 的质量与浓度,dNTP使用注意: 1)保存:使用时应配成高浓度,小量分装,-20冰冻保存。多次冻融会使dNTP降解; 2)使用量:在P
5、CR反应中,dNTP应为20-200umol/L。 3)成分配比:注意4种dNTP的浓度要相等;,5.4 模板(template),模板核酸的量与纯化程度,是PCR成败的关键环节之一。,5.5 Mg2+浓度,1)Mg2+对扩增特异性和产量有显著影响: Mg2+浓度过高,反应特异性降低;浓度过低会降低 Taq DNA聚合酶活性,使反应产物减少。 2)在一般的PCR反应中,各种dNTP浓度为200mol/L时,Mg2+浓度为1.52.0 mmol/L为宜;,Home,6 热循环条件的选择,PCR反应条件: 温度 时间 循环次数,6.1 温度与时间的设置, 设置变性-退火-延伸三个温度点: 标准反应
6、中采用三温度点法: 1)93-95变性; 2)40-60退火; 3)70-75延伸 对于较短靶基因(长度为100300bp时)可采用二温度点法, 一般采用94变性,65左右退火与延伸, 变性温度与时间:,变性温度低,解链不完全是导致PCR失败的最主要原因 一般9394 l min足以使模板DNA变性 若低于93则需延长时间 但温度不能过高,高温环境对酶的活性有影响。, 退火(复性)温度与时间:,退火温度是影响PCR特异性的较重要因素 退火温度与时间,取决于引物的长度、碱基组成及其浓度,还有模板的长度,复性温度,当引物长度为15-20个碱基时,在高离子强度中反应(如1M NaCl) Tm = 4
7、(G+C)2(A+T) 复性温度=Tm值 -(510),复性时间,一般3060 sec,足以使引物与模板间完全结合, 延伸温度与时间:,温度: 一般7075,常用温度为72。 时间: 根据待扩增片段长度而定,1Kb以内的DNA片段,延伸时间1min。,6.2 循环次数,决定PCR扩增程度 主要取决于模板DNA的浓度 选在2540次之间,Home,7 反应特点,7.1 特异性强,靶序列的特异性决定扩增产物的特异性。 在较高的温度下进行,引物结合的特异性大大增加。,7.2 灵敏度高,PCR 产物的生成量是以指数方式增加 从 100 万个细胞中检出一个靶细胞 在细菌学中最小检出率为3个细菌,7.3
8、简便、快速,在DNA扩增仪中进行变性-退火-延伸反应,一般13 小时完成。,7.4 对模板的纯度要求低,可直接用临床标本如血液、体腔液、洗嗽液、毛发、细胞、活组织等粗制的DNA或RNA扩增检测。,Home,8 常见问题与对策,PCR常见问题之一,无扩增产物,模板:含有抑制物,含量低 Buffer对样品不合适 引物设计不当或者发生降解 退火温度太高,延伸时间太短,现象:正对照有条带,而样品则无,原因,PCR常见问题之二,非特异性扩增,现象: 1)PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致; 2)或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。,1) 引物特异性差, 2) 模板或引物浓度过高 3) 酶量过
9、多 4) Mg2+浓度偏高 5) 退火温度偏低 6) 循环次数过多,原因,非特异性扩增,PCR常见问题之三,拖尾,现象:产物在凝胶上呈Smear状态,M 1 2,1) 模板不纯或降解 2) Buffer不合适 3) 退火温度偏低 4) 酶量过多 5) dNTP、Mg2+浓度偏高 6) 循环次数过多,原因,拖尾,PCR常见问题之四,假阳性(筛选转基因、检测基因表达情况),原因:靶序列或扩增产物的交叉污染,现象:空白对照出现目的扩增产物,1) 操作时防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外; 2) 除不能耐高温的物质外,所有试剂器材均高压消毒。离心管及枪头等一次性使用。 3) 各种试剂先进行分装,低
10、温贮存。,对策,假阳性,Home,9 PCR污染,9.1 污染原因,(1) 模板间交叉污染 (2) PCR试剂污染 (3) 实验室中克隆质粒的污染,9.2 防止污染的方法,(1) 合理分隔实验室 (2) 移液枪不能接触PCR相关试剂 (3) 手套、吸头、小离心管一次性使用 (4) 设阳性和阴性对照,重复实验,Home,10 PCR技术的应用,(1) 基因组中特异片段克隆 (2) 不对称PCR (3) 反向PCR (4) 基因的体外诱变 (5) RT-PCR (6) 基因组的比较研究,Home,基因组中特异片段的扩增,5,3,3,5,5,3,5,3,3,5,3,5,5,3,5,3,5,3,3,5
11、,5,3,5,3,引物序列特征,引物设计, ,5,3,3,5,5,3,3,5,3,5,3,5,5,5,5,3,3,5,5,5,基因组中特异片段的扩增,3,3,3,3,模板变性,引物退火,引物延伸,循环变性、退火、延伸,5,3,3,5,5,3,3,5,3,3,5,3,5,3,5,5,5,5,5,5,3,3,不对称PCR,双引物退火,双引物扩增,单引物扩增,产生大量的单链DNA片段,5,3,3,5,5,3,3,5,5,3,3,5,反向PCR正确流程,环化,引物设计,5,3,3,5,5,第一个循环模板变性、引物退火和延伸,多次循环:模板变性、引物退火和延伸,得大量PCR产物,5,3,3,5,5,3,
12、3,5,5,3,3,5,反向PCR错误流程一,环化,引物设计,PCR扩增,5,3,3,5,5,3,3,5,5,3,5,3,反向PCR错误流程二,引物设计,PCR扩增,5,3,3,5,5,3,3,5,5,3,3,5,反向PCR错误流程三,引物设计,PCR扩增,A,T,A,T,A,T,G,C,5,3,3,5,5,3,5,3,3,5,3,5,5,3,3,5,基因的体外突变,管1,管2,引物设计,管1引物设计,管2引物设计,A,T,G,C,5,3,3,5,5,3,3,5,A,T,G,C,5,3,3,5,5,3,3,5,5,3,5,3,5,3,5,3,C,G,G,C,基因的体外突变,管1,管2,管1 PCR扩增,管1产物,管2产物,管3 = 管1+管2 退火,管2 PCR扩增,5,3,5,3,5,5,C,C,5,3,3,5,G,基因的体外突变,管3,管3,管3,管3,管3,5,3,5,3,G,G,5,3,3,5,5,C,5,G,5,3,3,5,5,C,5,G,C,设计的双引物退火,引物延伸,切口连接,产物的PCR大量扩增,A,T,5,3,3,5,C,5,3,3,5,G,原始基因,定点突变基因,AA,5,3,AA,5,3,TT,5,AA,5,3,TT,5,3,mRNA,mRNA,mRNA,c
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