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文档简介
1、比动物和植物多得多的后代,能够直接、快速地进行遗传性状分离的 分析。因此,真菌可以作为研究基础生物学过程中的一个重要工具, 真菌基因的多样性以及真菌分于生物学的发展,为生物技术产业提供 了一个广阔的天地。植物的生长环境直接影响内生真菌的生物多样性,植物物 种的年代越久远,其生物内生真菌的多样性越丰富:抗病原性能越强 的植物,其所含的内生真菌具有抗菌活性的可能行就越大;其所含的 内生真菌有可能产生与植物相同或相似的抗菌无知或产生抗菌活性 物质可能参与了药用植物的抗菌过程,本实验通过植物病原真菌和 G+、G细菌的抑制实验发现茎,根,花,种子或果实内生真菌的代 谢产物具有不同程度的抑菌能力,并且对G
2、+、G-有普片遍的抑菌作 用。研究和开发内生真菌的寻找新的抗菌活性物质具有广泛的应用前 景。三.材料与方法:3.1.1材料:在校园内采集银杏、喜树、桂花树样品包括叶、茎、 根、花、种于或果实。3丄2.药品与试剂:葡萄糖、蛋白淼、KH2P04 3H2()、MgSO4 - 7H2O, 马铃薯、琼脂。孟加拉红,青霉素,链霉素,甲基蓝,蛋白瞅 酵母 膏,蔗糖,磷酸盐,葡萄糖,琼脂条,无菌水等。消毒剂:75%的乙 醇,().1%升汞(HgCl2),次氯酸钠溶液(含活性氯10%), 30%双氧水。 双蒸水、琼脂糖,Tris饱和酚、疏基乙醇(p- Mcrcaptoethanol),石英砂, Tris饱和酚,
3、氯仿,异戊醇,无水乙醇,硼酸,冰醋酸,氯化钠,盐 酸,氢氧化钠,EDTA, CTABo3.1.3.培养基:3.1.3.1马铃薯、葡萄糖琼脂培养基马铃薯汁1000ml,葡萄糖20g,琼脂20g(注:取去皮马铃薯20()克,切成小块,加水10()()毫升煮 沸3()分钟,滤去马铃薯块,将滤液补足至1()0()毫升,加葡 萄糖2()克,琼脂15克,溶化后分装,15磅灭菌3()分钟3.1.3.2察氏琼脂培养基蔗糖 30g, NaNO3 3g, MgSO4.7H2O 0.5g, KC10.5g,氏SO4.7H2O O.Olg, K2HPO4 lg,琼脂 13g,蒸憎水 1000ml,自然 pH3.1.3
4、.3沙氏培养墓蛋白淼lg,葡萄糖或麦芽糖4g,琼脂1.5克,水100 mlo 制法:1将上述物质称好,放入水中煮沸溶解(不必调PH 即有5左右)分中号试管(约4毫升)包扎,髙压115C20分钟。趁 热斜好,凝固备用。3.1.3.4马丁氏培养基葡萄糖 10g,蛋白5g, IH2PO4lg, MgSO4-7H2O 0.5g,1%孟加拉红3.3mL,琼脂2()g,水lOOOmL, pH值自然。抗生素用法与用量:培养基灭菌之后分装前按链霉素 4()U/tnL,青霉素30U/mL用量加入,冷却到45C左右未凝固时加入 抗生素,混匀倒平板。四方法:4.1.1采样方法:在校园内找到银杏、喜树、桂花树并用刀采
5、集叶、茎、 根、皮、种子。4.1.2样品前处理:分别取根、茎、叶、果实,用洗涤剂在自来水下洗净。老树皮用75%酒精进行表面消毒后,用霰于取出,于 酒精灯上烧灼15秒至表面焦糊,切成1 X lcn?大小置于PDA固体培 养基上。对于根、茎、叶、果实按下列程序进行表面消毒:75%的酒精漂(浸)洗2-3min无菌水冲洗4-6次-().1%升汞不同的 消毒时间(见表2-2,共设置7个梯度)一无菌水冲洗4-6次-用灭 菌滤纸吸干多余水分一无菌刀片将材料切成小块将根、茎的表皮、韧 皮部、木质部大致分开,并切成0.5X().5cn?大小。将果实的外种皮去掉,消毒之后将内种皮去掉。灭菌时,沥干的植物材料转放到
6、烧杯中,记好时间, 倒入消毒溶液,不时用玻璃棒轻轻搅动,以促进材料各部分与消毒溶 液充分接触,驱除气泡,使消毒彻底。在快到时间之前1-2分钟,开 始把消毒液倾入一备好的大烧杯内,要注意勿使材料倒出,倾净后立 即倒入无菌水,轻搅漂洗。灭菌时间是从倒入消毒液开始,至倒入无 菌水时为止。灭菌液要充分浸没材料。宁可多用些灭菌液,切勿勉强 在一个体积偏小的容器中使用很多材料灭菌。4.1.3内生菌的分离方法:将上述组织块置于分离培养基上(每一平皿培养 5块组织块)于27C恒温培养,同时将上述消毒过程中最后一次冲洗 组织块后的无菌水滴在培养基上平行培养,用以检测消毒是否彻底。 观察菌丝生长情况及污染情况。4
7、丄4纯化方法:培养3-4天后及时采用尖端菌丝挑取法,挑取形 态不同的菌丝或菌落移种到新鲜PDA培养基上。纯化3-4次以保证 所得菌落为纯培养。4.2形态鉴定方法:4.2.1培养方法:4.2.1.1培养荃:査氏培养基、沙氏培养基和PDA培养基。4.2.1.2将4C保存菌种活化2次;4.2.1.3将活化菌种分别点种PDA、沙氏、察氏平板,每重复4.2.1.425C恒温培养箱培养7天;421.5然后迸行菌落特征描述,取一个平行进行制片(胶带于 粘片法),观察个体形态;4.2.1.6另两个平行继续培养至14天,取出;421.7重复步骤4,作为最终描述结果;4.2.1.8根据真菌分类鉴定手册和相关资料分
8、析确该菌的归属。422制片方法:胶带粘贴法:选用在显微镜油镜下观察细致不粗糙且粘性好的 胶带。取一小段胶带从菌落表面的中心向边缘粘,75%乙醇固定,乳 酸石炭酸棉蓝染色液染色,将粘有菌丝的一面向上,盖上盖玻片,于 显微镜下观察产砲结构等特征。4.2.3鉴定标准:观察的要点:4.2.4菌落宏观形态:大小:以菌落的直径(mm)表示。颜色:包括菌落表面和背面的颜色,及色素是否渗入培养基。菌落表面的纹饰:如皱纹、辐射沟纹、同心环、整个菌落致密或 疏松等。菌落的质地:毡状、毯状、绒毛状、棉絮状、粉粒状、革质状、 有无成束状或绳状的气生菌丝。菌落的高度:扁平、凸起或隆起,及菌落中心部分状况等。菌落边缘:全
9、缘、锯齿状、树枝状等。渗出物:菌落表面有无液滴及液滴的颜色等。4.2.5个体形态:菌丝的特征:表面性状(粗糙或光滑),宽度等分生砲于梗:分支情况-简单或复杂,轮生或单生等;长短;基部粗糙或光滑等。产孑包结构的形态特征:形状,大小,着生状况(位置,单生、互 生或成轮生体)分生砲于的形态:形状,大小,表面状况,聚集方式(直链、斜链或聚集成头)4.3分子生物学鉴定:4.3.1培养方法:培养基成分与不加琼脂的PDA固体培养基成分相同。将液体培养基以lOOmL每瓶分装至250mL三角瓶中,用8层纱布封口蒸汽灭菌20mino将菌丝致密的真菌接种到液体培养基中,于恒温振荡培养箱中27C、120rpm培养5-
10、7天。用两层灭菌纱布过滤菌丝球,用无菌蒸憾水冲洗菌丝球5 次,避免培养基中的糖类和蛋白对DNA提取的影响。40C下烘干菌丝,但是不 要过于干燥,然后进行DNA的提取。4.3.2基因组DNA的提取DNA 提取采用 CT AB 法。CT AB (cetyltricthylammonium bromide,十六烷基三乙墓漠化钱)是一种去污剂,可溶解细胞膜, 它能与核酸形成复合物,在高盐溶液中是可溶的,当降低溶液盐浓度 到一定程度时,从溶液中沉淀,通过离心可将CTAB与核酸的复合物 同蛋白质、多糖类物质分开,然后将CTAB与核酸的复合物沉淀溶解 于髙盐溶液,再加乙醇使核酸沉淀,CTAB能溶解于乙醇。C
11、TAE法 的好处是能很好地去掉糖类杂质,提取前期可得到髙含量的DNA。43.2.1用CTAB法提取材料DNA的具体步骤如下:将CTAB buffer在65C水浴锅中预热,研钵用液氮预冷;4.322取O.lg左右菌丝体,在液氮中迅速研磨成粉末后,迅速加入 5mL预热的提取液及1()卩邛-疏基乙醇,混合均匀后把混合液转入 1.5mL离心管中7()()uL/管;4.323于65C水浴保温0.5-1 h,时间不能超过1.5h。保温期间要轻轻 振摇几次;4.324冷却至室温后,加入等体积(7()()pL)的饱和酚:氯仿:异戊醇(25: 24: 1),充分混匀后静置10mino4.325离心(12000r
12、pm, lOmin,室温),去沉淀,将上清液转入干净离 心管中。4.326根据杂质的去除情况重复步骤4、5数次,直至无杂质;4.327加入等体积氯仿:异戊醇(24: 1)抽提一次以去除饱和酚,离心 (12()00rpm, lOmin,室温);4.328将上清液逐滴加入两倍体积的-2()C预冷无水乙醇,以沉淀出DNAo室温放置10-20min,可以过夜;4.329挑取或离心去上清液(1000() rpm, 5min)的方法取出DNA;用75%乙醇洗涤两次; 37C保混箱中干燥后溶于适長的TE缓冲液中4C宙用。4.4所用引物1TS5: GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGGITS4: TCC
13、TCCGCTTATTGATATGC4.4.1PCR反应条件: 4.4.1.1体系:PCR反应体系为5()yL体系,包括:1/1010XPCR buffer:dNTPs (dATP、dTTIdCTP、dGTP):各 200yM,0.2piM,1 2.5U,约lOOngoPrimcrl()2pAI,Primcr2T叫酶:dna模板:4.4.2条件:扩增条件预变性95C5min变性95ClmAi复性51 Clmip延伸72Clmin延伸补齐72 ClOmin3035个循环4.4.3测序方法:送测序公司。4.4.4序例分析:五.结果及分析:纟吉果:试验分离到两种真菌5.1八爪金盘分离到菌种査氏正反照5
14、.1.1菌落宏观形态:大小:菌落的直径3.2 (mm)o颜色:包括菌落表面棕黑色背面灰色,色素渗入培养基。菌落表面的纹饰:如皱纹、整个菌落致密。菌落的质地:毡状菌落的高度:凸起或隆起。菌落边缘:锯齿状。渗出物:菌落表面无液滴。5.1.2个体形态:菌丝的特征:表面粗糙。分生砲于梗:分支复杂,轮生。5.1.3分于生物学鉴定通过PCR扩增和序列分析,送公司检测得到的序列为:TGAAGTTAAAAAGCGTAACAAGGTCTCCGTAGGTGAACCTGCGGAGGGATCATTACAAGTGACCCCGGTCTAACCACCGGGATGTTCATAACCCTTTGTTGTCCGACTCTGTTGC
15、CTCCGGGGCGACCCTGCCTTCGGGCGGGGGCTCCGGGTGGACACTTCAAACTCTTGCGTAACTTTGCAGTCTGAGTAAACTTAATTAATAAATTAAAACTTTTAACAACGGATCTCTTGGTrCTGGCAT cgatgaagaacgcagcgaaatgcgataagtaatgtgaattgcagaatt cagtgaatcatcgaatctttgaacgcacattgcgccccctggtattccg gggggcatgcctgttcgagcgtcatttcaccactcaagcctcgcttggt attgggcatcgcggtccgccg
16、cgtgcctcaaatcgaccggctgggtct tctgtcccctaagcgttgtggaaactattcgctaaagggtgttcggga ggctacgccgtaaaacaaccccatttctaaggttgacctcggatcaggt agggatacccgctgaacttaagcatatcaaaatcggaggaa通过blast序列分析得到的结果为:Distribution of 100 Blast Hits on the Query SequenceSequences producing significant alignments:DewnptionMax Total
17、Quay E Max score scow cotr 归uo dartL-.1r-1 ”. r -”I-:-1 :,$ 1厂:.:;-飞IUXIracCUCocwutn !RniiK$im*久”-:RX、ir-m:;广in us rRTUCNnRiCArti) SSrRHA nmn 2RR rHUA nmo iturlan ninh R? nrgomw FT4A :am 的 rterr:msltanscnMilsDdOSf 1 HTSI) ndntFmlhdnsa1u10%r:ad fur;uM droa Al22 1 A?fiTUQsnc pjifliil sccuc* irternzi t
18、rjrtzcnzccpjccr 1 5 ntoonul RM4 t;cn ar2 niscnal k.1033ritr 1n5om?l RHA 3fflil 倉3“赠丄劇:uc dfflarTHTr211 n-.eA-rsi Rh; c:n& ramaiTane/r-rt crar 1 -rtc no:r,:rRM、r -. -j mrj nn*; E;jr:,:r7m : ;: - rrr: - wew: 103L a, “ 1 UrKUVC:”;r c ; :2 人:,:; :z|KCr : o;ri:srer: :rr ;:;?,;.1 ;(r;:;r ?: r;:.ir :-sm ;m
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20、Hw%5珈mU7 画51Uncultured fungus clone L046937-122-075-C01-unis 18S ribosomal RNA gene, partial sequenee; internal transcribed spacer 1, 5.8S ribosomal RNA gene, and Internal transcribed spacer 2, complete sequenee; and 28S ribosomal RNA gene, partial sequenceGenBank JF289117 1FASTA Graphics Po 於凶LOCUS
21、DEFINITICKJF2S9117 Uncultured gener partial riboscMl RNA602 bp DMA linear ENV 02-MOV-2011 L046937222-?5-372 18S zibosoMl RNA internal transcrib-d spacer 1, 583 internal transcribed spacer 2. conipleeACCESSION VERSION KEYKORDS SOURCEscqnicncc; and JFZ89117 JF289117.1unculcuxelfungus clone sequence; g
22、ene, and 285 ribcsomal 2IA gene/ r-arrial seqcncuGI:35472O374CR 9Ai:I5IFrohlich-Howox31c*r J , Bur raws r S.M. r Xier 2 , EnglmgrG. r Soloroan, P. A. z FraserrH. P, Ma3*ol-BraeerorO.L, Artaxar P. r BcgercwzD,ConradzRAndreoe/K.O./ Despresrv.R. nd PoschlrU.TITLEJOURNAL REFZREKCEAUIHCRSTITLE3iogecarapn
23、y m me air: rungal diversity over land and oceans Biogeosci Discuss er 7071-7096 (2011)2 (bases 1 co 602)Frohlich-Howoisky, J,OespresR and PoachlU Direct SubdssiznfunaiisJOURNAL Sxibmitted |01-FB-2011) Biogeachemist:ry/ Max Planok Institute forChemistryr Coh-Jcachin-EEchez-NmQ 27, Mainz 55123r GermanyFEATURESsourceLocacion/Qualiriers1602/oraanisn;=,uncultured fungus11/nci_C7pe=Mgencmio dna”/iaola*icn 3ourcc-wQir filter enple/dh_xref=ntaxon:175245n/clone=nL046937-122-075-C01-unisn/environiLencal_sampienisc R
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