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文档简介

1、急性早幼粒细胞白血病患者微小残留病检测和临床意义 作者:任海全,唐天华,毕可红,张玉昆,赵良玉,郭桂月,刘秀兰,姜枫勤,刘传芳,彭军,田志刚 摘要 目的 检测完全缓解后急性早幼粒细胞白血病患者微小残留病(MRD),同时分析其对预后判断的指导价值。方法 建立逆转录PCR(RT/PCR)用以检测APL患者PML/RAR。结果 RT-PCR方法敏感而可重复。治疗前APL患者的RT-PCR阳性率为92.8%(39/42),而维甲酸或化疗诱导完全缓解后MRD阳性率为56.7%(21/37)。另外,MRD阳性与缓解后APL患者的复发有关,并可以作为缓解后预测APL患者复发的指标。同时有助于指导临床上采取巩

2、固治疗而防止复发。结论 RT-PCR能够检测APL患者的MRD和作为预测复发的指标。 关键词 急性早幼粒细胞白血病;微小残留病;RT/PCR 白血病患者完全缓解(CR)后的微小残留病(MRD)已被证实与复发有关1。MRD的检测也成为指导缓解后进一步化疗的重要指标2。在目前血液病的应用实践中,MRD检测的最好例子是骨髓移植后RT-PCR法检测慢性粒细胞白血病(CML)的BCR-ABL融合基因3。 急性早幼粒细胞性白血病(APL)以特异的染色体t(15;17)(q22;q21)易位为特征4。最近,许多实验室发现t(15;17)易位后,通过15染色体上的PML基因和17染色体上的RAR基因并列而导致

3、融合基因PML/RAR形成5。根据PML断裂点的位置不同,可以产生2个主要的PML/RAR异构体。断裂点位于PML内含子3或4(bcr3),则PML外显子3(P3)和RAR外显子3(r3)之间形成短(S)型融合mRNA产物,而断裂点位于PML内含子6(bcr1)或下游,PML内含子6(P6)和RAR外显子(r3)形成长(L)型融合体6,7。RT-PCR法的建立正是依赖于断裂点的位置而设计适当寡核苷酸引物,继而扩增PML/RARmRNA异构体8。另外,RT-PCR的高度敏感性使得MRD的检测成为可能,并可在APL患者临床缓解期时早期预测白血病的复发。 1 资料与方法 1.1 病例选择 本研究中的

4、42例患者均为19932000年发病,男26例,女16例,年龄1272岁,根据FAB标准9诊断为APL。全部病例均经全反式维甲酸(ATRA)治疗3060mg/(m2d)诱导缓解。巩固化疗方案为标准的HOAP或DA方案。巩固治疗后处于缓解期的患者采用全国维甲酸协作治疗组建议的ATRA与化疗联合治疗方案维持治疗10。骨髓单个核细胞用Ficoll分离并保存于液氮中。 1.2 RNA提取 10ml淋巴细胞分离液加于试管中,然后2ml骨髓细胞缓慢加入试管中,离心4000r/min 20min。取单个核细胞移入另一试管中,再用异硫氢酸胍-酚-氯仿一步法抽提RNAs11。提取时注意避免样品间的交叉污染。 1

5、.3 筑巢式RT-PCR检测 APL的PML/RAR检测方法:8个寡核苷酸引物用于逆转录、扩增,检测其长或短型异构体。 逆转录引物:A 5-TGGATGCTGCGGCGGAAGAAGCCCTTGCAG-3 PML/RAR引物:B 5-GTCATAGGAAGTGAGGTCTTC-3C5-CCGATGGCTTCGACGAGTTC-3 D5-CTCACAGGCGCTGACCCCAT-3E5-AACAGCAACCACGTGGCCAG-3F5-TTCAAGGTGCGCCTGCAGGA-3 G5-AGCCTGAGGACTTGTCCTGA-3H5-GCTGCTCTGGGTCTCAAT-3 正常RAR转录引物

6、:I5-GCCTCCCTACGCCTTCTTCTTCT-3 J5-AAAGCAAGGCTTGTAGATGC-3 K5-GACCACTCTCCAGCACCA-3L5-GCTGGGCACTATCTCTTCAGAACT-3 RT-PCR方法与步骤按照早期报道的方法进行12。 1.4 PCR产物分析 取10l第2轮PCR产物在1.5%琼脂糖凝胶电泳,溴化乙锭1g/ml染色,照相。并移至尼龙膜上,用5末端寡核苷酸探针(H)杂交,放射自显影30min,拍片。 1.5 统计学方法 采用t检验。 2 结果 2.1 PCR产物的结果及其敏感度 PML/RAR的L、S异构型(见图1)。RT-PCR的敏感度为2.5

7、10-6。 图1 PML/RAR类型 2.2 RT-PCR阳性百分率 用全反式维甲酸治疗前APL患者PML/RAR的检测,34例为L型阳性,5例为S型阳性。L型、S型或2型的总阳性百分率分别为80.9%(34/42)、11.9%(5/42)和92.8%(39/42)。APL患者CR后的MRD阳性率是56.7%(21/37)。见表1。 表1 APL患者RTPCR检测阳性率的变化 注:*2 cases with APL not getting CR 2.3 APL患者MRD的变化 缓解不同时期的APL患者MRD的变化(见图2)。结果显示:CR后MRD百分率降低,57年MRD百分率比缓解后低(P0.

8、05)。另外,长期CR的7例中有5例生存超过7年,并且持续MRD阴性。 图2 CR时间与MRD变化关系 2.4 复发与MRD之间的关系 见表2。结果显示,在2年和3年内,MRD阴性的APL患者复发百分率低于MRD阳性APL患者的复发百分率(P0.05)。缓解2年和3年内,MRD阴性患者第一次复发的平均时间(月)低于MRD阳性患者(P0.05)。随访3或5年,MRD阴性患者的无病生存率均明显高于MRD阳性患者(P0.05),而5年时两组的存活率差异有显著性(P0.05)。 3 讨论 已经证实ATRA可以有效地诱导APL患者取得完全缓解10,13。根据本研究结果和其他报道材料,患者伴有t(15;1

9、7)或PML/RARRT-PCR阳性的APL患者约95%以上对于足够疗程的ATRA有效。然而,单独应用ATRA作为缓解后的治疗,大多数患者在6个月内复发14。说明尽管ATRA在临床上可以有效地诱导APL患者完全缓解,但在大多数患者中它不能充分消除白血病细胞克隆。因为APL患者复发的原因之一是由于MRD的存在,因此CR后应该采用化疗与ATRA治疗相结合,以消除MRD和预防复发。 尽管化疗或ATRA能诱导APL患者的临床缓解,但少量的恶性细胞仍在体内存留或成为MRD状态。MRD是白血病复发的最重要的原因。但它很难通过外周血的常规形态学检测到,而只能通过特异和敏感的PCR或RT-PCR方法检测到。在

10、目前的研究中,RT-PCR检测APL中的MRD是有应用价值的。因为其敏感度是2.510-6,它足以检测MRD。此与其他报道结果相似15。用建立的RT-PCR方法进行PML/RAR融合基因检测,即用于检测APL缓解后的MRD。结果显示,初诊时L型异构体、S型异构体或总异构体阳性百分率分别是80.9%(34/42),11.9%(5/42)和92.8%(39/42)。而APL患者CR后MRD阳性率为56.7%(21/37)。MRD百分率低于其他报道15。可能与敏感度大小或选择的不同病例有关。 2年和3年内,APL患者MRD阴性的复发率低于MRD阳性者(P0.05),而MRD阳性患者缓解后第一次复发的

11、平均时间(月)低于其阴性者(P0.05)。因此,提示MRD阳性患者易复发16,MRD检测可作为预测复发的指标。另外,MRD百分率随着CR后的时间延长而减低。如5年和7年MRD百分率明显低于初次CR后的相应MRD百分率(P0.05)。但在3和5年时,2组间的无病生存率差异有显著性,MRD阳性者低于其阴性者(P0.05)。至于存活百分率方面,3年时2组之间无明显差别,5年时差异明显。因此,此结果进一步说明RT-PCR检测MRD能预告APL复发。与陈竺等15的报道结果一致。但是,后者比我们观察的时间短。 总之,在APL缓解期经ATRA或巩固治疗后MRD阳性者有可能复发。据此我们建议APL患者CR后最

12、好应用RT-PCR连续检测MRD,当缓解期MRD阳性时,及时给予治疗(巩固化疗,ATRA或亚砷酸治疗)。 参考文献 1 Baruchel A,Schaison G. Detection of minimal residual disease in leukemias. Nouv Rev Fr Hematol,1990,32:21. 2 Hoelzer D,Thiel E,Loffer H,et al. Prognostic factors in a multicenter study for treatment of acute lymphoblastic leukemia in adults

13、. Blood,1988,71:123. 3 Nigrin RS,Blume KG. The use of polymerase chain reaction for the detection of minimal residual malignant disease.Blood,1991,78:255. 4 Castaigne S,Chomienne C,Daniel MT,et al. Alltrans retinoic acid as a differentiation therapy for acute promyelocytic leukemia. I Clinical resul

14、ts. Blood,1990,76:1704. 5 Chen SJ,Chen Z,Chen A,et al. Occurrence of distinct PMLRAR fusion gene isoforms in patients with acute promyelocytic leukemia detected by reverse trascriptase/polymerase chain reaction.Oncogene,1992,7:1223. 6 Pandlfi PP,Alcalay M,Fagioli M,et al. Genomic variability and alt

15、ernative splicing generate multiple PML/ RAR transcripts that encode aberrant PML proteins and PML/ RAR isoforms in acute promyelocytic leukemia. EMBO J,1992,11:1397. 7 Geng JP,Tong JH,Dong S,et al. Localization of the chromosome 15 breakpoints and expression of multiple PML/ RAR transcripts in acut

16、e promyelocytic leukemia. A study of 28 Chinese patients. Leukemia,1993,7:20. 8 Lococo F,Diverio D,Pandolfi PP,et al. Molecular evaluation of residual disease as a prodictor of relapse in acute promyelocytic leukemia. Lancet,1992,340:1437. 9 Bennett JM,Catovsky D,Daniel MT,et al. Proposals for the c

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