益生菌和果寡糖与日粮组合效应对后备母猪生长性能、免疫功能和肠道微生物的影响-中国畜牧

1、益生菌、果寡糖及组合效应对后备母猪生长性能、免疫功能和肠道微生物的影响王 博1，田河山1收稿日期：资助项目：公益性行业（农业）科研专项经费项目（201003011）作者简介：王 博（1989-），女，辽宁沈阳人，硕士,主要从事动物营养与饲料科学研究。Email：wangbobo0310手机*通讯作者：田河山,Email：tianheshan，张福亮2，崔燕飞3，朱祥雨3（1.中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所，北京 100081；2.河南省卫辉市畜牧局，河南 453100；3. 河南雏鹰农牧股份有限公司，河南 453100）摘 要：本试验旨在研究益生菌、果寡糖

2、及其组合效应对后备母猪的生长性能、免疫功能和肠道微生物的影响。选用相同日龄的长白×大白后备母猪224头，随机分为4个组（对照组、益生菌组、果寡糖组、益生菌和果寡糖复合组），每组4个重复，每个重复14头。对照组饲喂基础饲粮，试验组在基础饲粮中分别添加0.2% 益生菌、0.1% 果寡糖、0.1% 益生菌和0.05% 果寡糖，试验期30 d。结果表明：1）各试验组的日增重均显著高于对照组（P0.05），料重比低于对照组，饲粮能量和蛋白质消化率高于对照组。2）益生菌组、益生菌和果寡糖复合组血清中三碘甲状腺原氨酸（T3）、四碘甲状腺原氨酸（T4）、生长激素（GH）的水平显著高于对照组（P0.0

3、5）。3）益生菌组、益生菌和果寡糖复合组的血清中免疫球蛋白A（IgA）、免疫球蛋白G（IgG）、免疫球蛋白M（IgM）的水平显著高于对照组（P0.05）。4）各试验组的大肠杆菌数量均显著低于对照组（P0.05）；各试验组相对于对照组双歧杆菌数量均有所提高（P0.05），但是乳酸杆菌的数量在3个试验组间没有显著差异。由此可见：益生菌和果寡糖都可以不同程度的提高后备母猪的生长性能、免疫机能，改善后备母猪的肠道微生物菌群，且益生菌和果寡糖的组合效应的作用效果更为显著。关键词：后备母猪；益生菌；果寡糖；生长性能；免疫机能；肠道微生物近几年来，动物福利问题在畜禽养殖中越来越引起人们的重视，但是抗生素作为

4、饲料添加剂的使用违背了这一理念，其巨大的经济利益后面隐藏着种种弊端。尽管使用抗生素对畜禽的生长有促进作用，美国允许使用，但欧洲一些国家对抗生素的使用已经实行严格的控制。研制开发绿色环保的饲料添加剂是亟需解决的问题1。益生菌、果寡糖就是其中的两种，二者以其组成成分来源于天然、无污染、无毒副作用的特点，成为抗生素的首选替代品，这一领域也成为新型饲料添加剂的研究热点。David等2对仔猪进行研究，发现饲粮中添加益生菌可以提高仔猪的日增重（ADG）；范国歌等3研究表明，寡糖组的粗蛋白、能量表观消化率皆显著地高于对照组（P0.05）；盛东峰等4人表明，果寡糖能使血液中三碘甲状腺原氨酸（T3）、四碘甲状腺

5、原氨酸（T4）等与生长有关的激素水平升高，从而提高动物的生产性能。目前，许多试验表明，益生菌和果寡糖单独作用对断奶仔猪和生长育肥猪的生长性能和免疫机能均有促进作用，但是后备母猪作为育种繁殖的重要阶段却鲜有研究，且未见有益生菌和果寡糖组合效应的研究报道。本试验主要研究益生菌、果寡糖分别添加及组合添加对后备母猪生长性能、免疫机能和肠道微生物数量的影响，用以指导畜牧生产。1 材料与方法1.1 试验设计选择日龄、体重相近且健康的长白×大白二元杂交后备母猪224头，随机分为4组（对照组、益生菌组、果寡糖组、益生菌和果寡糖复合组），每组4个重复，每个重复14头。对照组饲喂基础饲粮，益生菌组、果寡

6、糖组、益生菌和果寡糖复合组在基础饲粮的基础上分别添加0.2% 益生菌制剂、0.1% 果寡糖制剂、0.1% 益生菌和0.05% 果寡糖混合制剂（使用剂量参照产品说明中注明的最佳添加剂量，益生菌和果寡糖复合组使用果寡糖组和益生菌组的各二分之一复合添加）。参照NRC(1998)猪营养需要量标准配制基础饲粮，饲粮的组成及营养水平见表1。试验于2014年4月至5月在位于河南省卫辉市的河南雏鹰农牧股份有限公司的猪场进行。对照组和试验组在相同条件下饲养。每天06:00、11:00和17:00定时饲喂三次，每次饲喂前将食槽内余料清理干净，自由饮水，其他按饲养管理手册进行饲养管理。每天记录猪只健康状况。试验期3

7、0 d。 表1 基础饲粮配方及营养水平（风干基础） %项目 含量 玉米 33.50消化能 (MJ/kg)13.39小麦 45.00粗蛋白质 15.84豆粕 15.50粗脂肪3.77豆油 2.00粗纤维 2.484%预混料 4.00钙 0.75粗灰分 4.64食盐 0.50总磷 0.46合计 100.00赖氨酸 0.80注:每千克基础日粮中添加维生素A 6 000IU,维生素D3 2 000IU,维生素E 30 IU,维生素K 30 mg,维生素B1 2 mg,维生素B2 4 mg,维生素B6 1 mg,维生素B12 0.02 mg，泛酸20 mg,叶酸1 mg,烟酸25 mg,生物素0.2 m

8、g, 铁70 mg, 锌70 mg,锰4 mg，铜10 mg,碘0.14 mg，硒0.2mg。1.2 试验材料益生菌制剂由山东宝来利来生物工程股份有限公司提供，主要成分为枯草芽孢杆菌、乳酸菌、酵母菌等，活菌总数 5.0×108 cfu/g。果寡糖制剂由上海易实格信饲料科技有限公司提供，含量76%。1.3 样品采集试验第30天早晨，每个重复随机选择5头健康母猪进行前腔静脉采血，每头采血5 mL，3 000 r/min离心10 min制备血清，收集血清于EP管中，立即放入-20冰箱保存。样品用于免疫球蛋白A（IgA）、免疫球蛋白G（IgG）、免疫球蛋白M（IgM）和T3、T4、生长激素（

9、GH）水平的测定。试验第30天早晨，每个重复随机选择5头健康母猪进行粪便采集，每头采集新鲜无污染粪样粪样100 g，立即放入-20冰箱保存以备肠道微生物培养计数。从试验21 d至27 d，每个重复随机选择5头健康母猪进行粪便采集，每头采集粪样100 g。将粪样混匀，称重，取总粪重的1。全部粪样品加入10硫酸10 mL。混合均匀，65烘干，回潮，风干以备养分消化率测定。从试验21 d至27 d，每组沿栏舍中间布5点依次取样，采样于每天同一时间和同一地点进行，采样点距栏舍地面30 cm，采气量1 L，用于氨气浓度测定。1.4 检测指标及方法1.4.1 日增重及料重比 试验开始时对每只母猪进行称重，

10、记录耳号，试验结束时再次对对应耳号猪只称重，计算每组的平均日增重。料重比计算公式如下：料重比（F/G）=日采食量（ADFI）/平均日增重（ADG）。1.4.2 血清激素T3、T4、GH测定血清激素采用放射免疫分析法测定，所用试剂盒购自北京华英生物技术研究所，检测仪器为日本日立r-911全自动放免计数仪。1.4.3 血清免疫球蛋白IgA、IgG、IgM测定血清免疫球蛋白采用免疫比色法测定，所用试剂盒购自北京华英生物技术研究所，检测仪器为日本日立7160全自动生化仪。1.4.4 肠道微生物计数粪样稀释：超净台内取0.5 g粪样于装有4.5 mL已灭菌的生理盐水的试管中，用磁力振荡器震荡35 min

11、至混合均匀，得到10-1倍稀释液，再取0.5 mL待测菌液加入装有4.5 mL已灭菌生理盐水的试管中，振荡混匀，得到10-2倍稀释液，重复以上操作将菌液分别稀释至10-3，10-4，10-5，10-6，10-7倍稀释菌液。接种及培养：大肠杆菌（E.coli）计数时取粪样稀释液中10-210-4倍稀释液0.1 mL接种于麦康凯培养基平皿上，每等级稀释液两个重复，37有氧培养24 h后进行菌落计数；乳酸菌（Lactobacillus）计数时取粪样稀释液中10-410-6倍稀释液0.1 mL接种于MRS培养基平皿上，每个稀释浓度做两个重复，37厌氧培养24 h后进行菌落计数；双歧杆菌（Bifidob

12、acterium）计数时取粪样稀释液中10-410-6倍稀释液0.1 mL接种于TPY培养基平皿上，每个稀释浓度做两个重复，37厌氧培养24 h后进行菌落计数。1.4.5 养分消化率饲粮及粪便中的酸不溶灰分（AIA）含量根据Van Keulen和Yong McCanthy等的方法测定4molL-HCI不溶灰分。AIA法养分消化率计算公式：某养分消化率() = 100l00×(A1/A2×F2/F1)。式中，A1为饲料中AIA的含量()；A2为粪中AIA的含量()；F1为饲料营养物质含量()；F2为粪中营养物质含量()。1.4.6 氨气含量测定氨气根据GB/T 14669-9

13、3纳氏试剂比色法进行浓度分析，分析仪器为Spectrumlab 22PC分光光度计。每次通过吸收液吸收采集气体500 mL，在420 nm的波长下进行比色，并通过现场配置的标准溶液曲线计算出氨气的实际浓度。1.5 数据统计分析数据先用Excel进行初步处理，再用SPSS 22.0中的单因子方差分析（one-way ANOVA, LSD），以P0.05作为差异显著性判断标准，试验结果用“平均值±标准差”表示。2 结果2.1 益生菌和果寡糖对后备母猪生长性能的影响益生菌和果寡糖对后备母猪生长性能的影响见表2。益生菌组、果寡糖组、益生菌和果寡糖复合组分别与对照组相比较平均日增重都有所提高，

14、差异显著（P0.05），其中益生菌和果寡糖复合组提高最为显著，比对照组提高了21.2%，益生菌组和果寡糖组分别比对照组提高了17.0%和8.51%。但各试验组之间未见显著差异(P0.05)。料重比值，益生菌和果寡糖复合组显著低于其它试验组（P0.05）。 表2 益生菌和果寡糖对后备母猪生长性能的影响 kg组别始重末重日增重日采食量料重比1对照组27.57±4.7042.60±4.960.47±0.03b1.25±0.32b2.65±0.13c2益生菌组27.03±3.1144.77±3.750.55±0.03a1.

15、36±0.41a2.47±0.20b3果寡糖组28.87±4.0946.70±4.390.51±0.02a1.35±0.52a2.64±0.16c4益生菌和果寡糖复合组29.03±3.2947.30±2.830.57±0.02a1.36±0.36a2.39±0.23a同列数据后所标字母相异表示差异显著（P0.05），所标字母有一相同表示差异不显著（P0.05）。Different letters in the same column means significant dif

16、ference between the treatments（P0.05）, the same letter in the same row means not significant difference between the treatments（P0.05）.2.2 益生菌和果寡糖对后备母猪血清中激素的影响益生菌和果寡糖对后备母猪血清中激素的影响见表3。益生菌组、益生菌和果寡糖复合组血清中的T3、T4、GH的水平均显著高于对照组（P0.05），T3水平分别提高了29.4%和37.3%；T4水平分别提高了47.6%和52.6%；GH水平分别提高了16.3%和19.5%。添加果寡糖的试验组

17、T3有显著提高了13.7%（P0.05），但对T4和GH影响不显著(P0.05)。 表3 益生菌和果寡糖对血清中激素水平的影响 ng/mL 组别T3T4GH1对照组0.51±0.04c14.10±1.88b4.11±0.43b2益生菌组0.66±0.07a20.81±1.82a4.78±0.39ac3果寡糖组0.58±0.05b15.87±1.95b4.37±0.49bc4益生菌和果寡糖复合组0.70±0.07a21.51±1.35a4.91±0.26a同列数据后所标字母相异

18、表示差异显著（P0.05），所标字母有一相同表示差异不显著（P0.05）。Different letters in the same colomn means significant difference between the treatments（P0.05）, the same letter in the same row means not significant difference between the treatments（P0.05）.2.3 益生菌和果寡糖对后备母猪血清中免疫球蛋白的影响益生菌和果寡糖对后备母猪肠道血清免疫球蛋白的影响见表4。益生菌组、益生菌和果寡糖复合组血

19、清中的IgG、IgA、IgM的水平均显著高于对照组（P0.05），IgG水平分别提高了2.5%和6.3%；IgA水平分别提高了9.5%和18.1%；IgM水平分别提高了2.1%和6.2%。但添加果寡糖的试验组与对照组相比IgG、IgA、IgM均没有显著提高( P0.05)。表4 益生菌和果寡糖对血清中免疫球蛋白水平的影响 mg/mL 组别IgGIgAIgM1对照组8.06±0.09bc1.05±0.05c 3.37±0.07c2益生菌组8.33±0.43ac1.15±0.05b 3.44±0.06b 3果寡糖组8.27±0.

20、19a1.07±0.03c 3.43±0.08c4益生菌和果寡糖复合组8.57±0.37a 1.24±0.06a3.58±0.03a 同列数据后所标字母相异表示差异显著（P0.05），所标字母有一相同表示差异不显著（P0.05）。Different letters in the same colomn means significant difference between the treatments（P0.05）, the same letter in the same row means not significant differenc

21、e between the treatments（P0.05）.2.4 益生菌和果寡糖对后备母猪粪中微生物的影响益生菌和果寡糖对后备母猪肠道微生物的影响见表5。与对照组相比较，各试验组的大肠杆菌数量均显著低于对照组（P0.05），试验组之间差异不显著(P0.05)；益生菌组、益生菌和果寡糖复合组的乳酸杆菌数量显著高于对照组（P0.05），但果寡糖的作用效果不显著；各试验组相对于对照组双歧杆菌数量均有所提高（P0.05），其中益生菌和果寡糖复合组的乳酸杆菌数要显著高于对照组和果寡糖组（P0.05）。 表5 益生菌和果寡糖对后备母猪粪样微生物的影响 ×105 CFU/ g 组别大肠杆菌乳

22、酸杆菌双歧杆菌1对照组2.00±0.52a 6.92±0.76c 5.93±0.68c2益生菌组0.10±0.13b 10.15±0.76a 7.93±0.89b3果寡糖组0.30±0.49b 7.77±0.91c 7.19±0.74b4益生菌和果寡糖复合组0.16±0.33b 8.73±0.62b 13.65±0.74a同行数据后所标字母相异表示差异显著（P0.05），所标字母有一相同表示差异不显著（P0.05）。Different letters in the same

23、colomn means significant difference between the treatments（P0.05）, the same letter in the same row means not significant difference between the treatments（P0.05）.2.5 益生菌和果寡糖对后备母猪消化功能的影响由表6可知，与对照组相比较，益生菌组和果寡糖组的能量消化率有显著提高（P0.05），益生菌和果寡糖复合组虽然提高了3.06%，但差异不显著（P0.05）；益生菌组、果寡糖组、益生菌和果寡糖复合组间的能量消化率差异不显著（P0.05

24、）。益生菌组和果寡糖组的蛋白质消化率显著高于对照组（P0.05），但益生菌和果寡糖复合组与对照组的蛋白质消化率差异不显著( P0.05)。表6 益生菌和果寡糖对后备母猪饲粮营养物质消化率的影响 % 组别能量蛋白质1对照组87.89±2.00bc82.31±2.98bc2益生菌组92.65±1.52a89.26±1.98ad3果寡糖组92.23±0.67a90.53±1.32a4益生菌和果寡糖复合组90.58±2.52ac 85.99±2.80bd同列数据后所标字母相异表示差异显著（P0.05），所标字母有一相同表示

25、差异不显著（P0.05）。Different letters in the same colomn means significant difference between the treatments（P0.05）, the same letter in the same row means not significant difference between the treatments（P0.05）.2.6 益生菌和果寡糖对后备母猪圈舍中氨气浓度的影响益生菌和果寡糖对后备母猪圈舍中氨气浓度的影响见表7。与对照组相比较，三个试验组的氨气浓度均有显著降低（P0.05），其中益生菌和果寡糖复合

26、组猪舍中的氨气浓度降低最为显著（P0.05）。表7 益生菌和果寡糖对后备母猪圈舍中氨气浓度的影响 mg/m3 组别氨气浓度1对照组25.5±1.02a2益生菌组19.8±1.52b3果寡糖组18.7±0.67b4益生菌和果寡糖复合组15.3±0.52c同列数据后所标字母相异表示差异显著（P0.05），所标字母有一相同表示差异不显著（P0.05）。Different letters in the same colomn means significant difference between the treatments（P0.05）, the same

27、letter in the same row means not significant difference between the treatments（P0.05）. 3 讨论3.1 益生菌和果寡糖对后备母猪生长性能的影响本试验结果表明添加益生菌和果寡糖的各试验组的日增重要显著高于对照组(P0.05)，说明益生菌和果寡糖可以提高后备母猪的生长性能，这与大多数报道相一致。已有许多试验表明，益生菌和寡糖的联用可以提高猪的生长性能。黄俊文等5研究表明，纳豆菌与甘露寡糖合用的仔猪的日增重显著高于对照组和二者单独添加的日增重(P0.05)。还有报道表明，益生菌和异麦芽低聚糖联用也能显著提高生长育肥

28、猪的日增重(P0.05)，但各试验组间差异不显著6。但是也有试验表明，益生菌与寡糖的联用对生长性能的影响并不显著。例如，刘辉等7对生长猪进行的试验表明，各组的初重、末重和平均日增重之间差异均不显著(P0.05)。伍淳操等8研究则表明，乳酸菌和甘露寡糖的联合使用对改善仔猪生长性能并无协同作用。Estrada等9研究表明，长双歧杆菌和低聚果糖的联合饲喂效果并未优于益生菌单独使用。造成以上试验结果差异的原因有很多，主要原因可能是由于试验所用益生菌和寡糖的种类不同、配伍条件不同、动物的生长阶段不同、饲养条件不同等。3.2 益生菌和果寡糖对后备母猪免疫机能的影响IgA、IgG、IgM指标可以反映动物体的

29、体液免疫机能。本试验结论表明，3个试验组的血清中IgA、IgG、IgM水平均高于对照组，其中益生菌、益生菌和果寡糖复合对IgA、IgG、IgM水平的影响较为显著(P0.05)，果寡糖对三者影响不显著(P0.05)。这表明益生菌和果寡糖可以提高母猪的免疫机能，二者复合作用时效果更好些。其他研究也有相似结论，吴伟等10对断奶仔猪进行研究表明，在14、21、28 d时对照组IgA水平均显著低于芽孢杆菌和低聚果糖复合组(P0.05)，21、28 d时对照组IgG水平显著低于芽孢杆菌和低聚果糖复合组(P0.05)。但是Shim等11研究却发现，将益生菌和低聚果糖配伍组成合生素，并其对哺乳仔猪血液淋巴细胞

30、和中性粒细胞的影响，结果表明二者联用对仔猪血液免疫指标的影响没有协同作用，组间差异不显著。Chen 等12也报道试验组和对照组血液中免疫球蛋白指标无显著差异。寡糖能够刺激机体免疫应答，而且作为外源抗原（如某些毒素、病毒和真菌细胞）的佐剂，与其表面结合，通过提高免疫器官指数、增强非特异性免疫作用、改善细胞免疫、促进体液免疫、提高免疫抗体效价来加强动物体细胞免疫和体液免疫反应13。关于此方面研究结果的差异还需进行进一步的验证和探讨。3.3 益生菌和果寡糖对后备母猪肠道微生物的影响饲料中单独添加益生菌时，动物消化道中原生菌的优势作用使添加菌很难在消化道定居下来并大量繁殖，而寡糖恰好弥补了益生菌的这些

31、不足，它们不能被消化道和病原菌利用，但却能被益生菌利用，作为益生菌的增殖因子，可使益生菌大量繁殖，增强益生菌的竞争力；相反，益生菌分泌的消化酶可以使寡聚糖进一步消化为单糖，被益生菌或机体直接利用。本试验结果表明，添加益生菌和果寡糖可以使粪中的大肠杆菌数量显著降低(P0.05)，其中益生菌的作用效果最为显著，但是与果寡糖复合后并未显示出协同效应；加入益生菌和果寡糖后，粪中乳酸杆菌的数量均高于对照组，其中益生菌、益生菌和果寡糖复合作用效果显著(P0.05)，果寡糖作用效果不显著(P0.05)；加入益生菌和果寡糖后，粪中双歧杆菌数量显著提高(P0.05)，可见益生菌和果寡糖复合作用效果最为显著，表现

32、出了协同效应。陈代文等14研究表明，单独添加益生菌、寡糖可以提高断奶仔猪粪便中乳酸杆菌和双歧杆菌的数量, 降低大肠杆菌的数量(P0.05)，益生菌、寡糖联用虽然较对照组提高了乳酸杆菌和双歧杆菌的数量, 降低了大肠杆菌的数量，但不如单独添加效果显著。Gloria等15报道，在试验期间，添加益生菌的试验组与对照组相比较，肠道菌群有显著不同（P0.05)。Herich等16研究结果表明，干酪乳杆菌与低聚果糖联合使用，相比单独添加乳酸菌可以显著降增加断奶仔猪粪中总厌氧菌和乳酸杆菌的数量。因此，益生菌和寡糖这种相互作用模式可以增强微生物到达后肠的成活数，促进外源有益微生物在肠内的定植和生长，改善肠道菌群

33、，提高猪的生长性能和免疫机能。3.4 益生菌和果寡糖对后备母猪养分消化率和血清中激素的影响Collington等17报道仔猪饲喂微生物添加剂可提高小肠内-蔗糖酶、乳糖酶、三肽酶的活性；这是由于有益菌能够分泌淀粉酶、蛋白酶、脂肪酶和纤维素酶等各种消化酶，促进了仔猪对营养物质的消化和吸收 18。本试验结果表明，对照组相比较，益生菌组和果寡糖组的能量和蛋白质得消化率有显著提高（P0.05），但益生菌和果寡糖复合组提高不显著。这与之前的研究结论相吻合。Hotton等19报道，益生菌在消化道中可代谢产生多种消化酶，促进动物对营养物质的消化吸收。饲粮中添加益生菌和果寡糖可以提高血清中T3、T4、GH的水平

34、，这与之前的研究结果相似。张常明等20曾报道，乳酸菌可以提高血清中T4的水平(P0.05)，但对T3作用不显著。O 'Quinn等21研究表明，饲粮中添加半乳甘露寡糖能显著提高乳中GH的浓度(P0.05)。目前尚未有关于益生菌与寡糖联用对T3、T4、GH激素水平影响的报道。这些结论可以解释益生菌和寡糖提高猪生长性能的作用机理，即益生菌和寡糖通过促进母猪甲状腺激素和生长激素的分泌，从而提高母猪的生长性能22。4 小结添加益生菌和果寡糖可以提高后备母猪的生长性能，包括日增重、营养物质消化率、体内生长激素；益生菌可以提高后备母猪的免疫功能，且在果寡糖的协同作用下效果更为显著；益生菌和果寡糖的

35、组合效应可以提高肠道内双歧杆菌和乳酸杆菌的数量；益生菌和果寡糖可以降低后备母猪圈舍中氨气的浓度。参考文献：1 MUIRHEAD, S. EU ban of antibiotics draws sharp criticism J. Feedstuffs, 1998, 70(52): 1.2 DAVID T, WILFRIED V. Response of performance characteristics and fecal consistency to long-lasting dietary supplementation with the probiotic strain Bacill

36、us cereus var. toyoi to sows and piglets J. Archives of Animal Nutrition, 2005, 59(6): 405-4173 范国歌, 尹清强, 孙俊伟, 等. 益生菌、寡糖和黄连素对仔猪生产性能的影响J. 中国兽医学报, 2012, 32, (3): 483-4874 盛东峰, 王志跃. 果寡糖在动物营养中的研究与应用J. 动物营养学报, 2005, 17(1): 7-125 黄俊文, 林映才, 冯定远, 等. 益生菌、甘露寡糖对早期断奶仔猪生长、免疫和抗氧化机能的影响J. 动物营养学报, 2005, 17(4): 16-20

37、6 冯远山, 刘谢荣, 马增军, 等. 寡糖和益生菌对生长肥育猪生产性能的影响J. 中国畜牧兽医, 2012, 39(4): 99-1017 刘辉, 季海峰, 张董燕, 等. 饲粮添加短乳杆菌对生长猪生长性能和血清生化指标的影响J. 动物营养学报, 2013, 25(1): 182-1898 伍淳操, 王建华. 乳酸菌和甘露寡糖对断奶仔猪生长及血清生化指标的影响J. 江苏农业学报, 201l, 27(1): 94-999 ESTRADA A, Drew M D, VAN K A. Effect of the dietary supplementation of fructooligosaech

38、arides anti-Bifidobacterium longum to early-weaned pigs on performance and fecal bacterial populationsJ. Animal Science, 2001, (81): 141-14810 吴伟, 王一凡, 李晓翠, 等. 低聚果糖、芽孢杆菌制剂对断奶仔猪生长性能及免疫功能的影响J. 中国畜牧兽医, 2013, 39(6): 109-11211 SHIM S B, VERSTEGEN M W A, KIM I H. Effects of feeding antibiotic-free creep f

39、eed supplemented with oligofructose, probiotics or synbiotics to suckling piglets increases the preweaning weight gain and composition of intestinal microbiota J. Archives of Animal Nutrition, 2005, 59(6): 419-42712 CHEN, Y. J, MIN B.J, CHO J.H, et al. Effects of dietary Bacillus-based probiotic on

40、growth performance, nutrient digestibility, blood characteristics and fecal noxious gas content in finishing pigs. Asian-australas J. Animal Science, 2006, 19: 587-592.13 PETTIGREW. J.E. Bio-Mos effects on pig performance: a reviewJ. Pig Industry, 2008, 1114 陈代文, 张克英, 王万祥, 等. 酸化剂、益生菌和寡糖对断奶仔猪粪中微生物菌群和

41、免疫功能的影响及其互作效应研究J. 动物营养学报, 2006, 18(3): 172-17815 GLORIA R R, CALOS G. Effects of probiotic administration in swineJ. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2010, 109(6): 545-54916 HEFICH R, REVAJOVA,LEVKUT M, et al. The effeet of lactobacillus paracasei and Raflilose P95 upon the non-specific imm

42、une response of pigletsJ. Food Agricualture Immunol, 2002, 14: 171-17917 COLLINGTON. International Dairy Federation C. Brussels, Belgium: 1990, Vol.:36418 曹廷富. 微生态制剂对生长猪生产指标和粪中微生物影响的研究D. 湖南:湖南农业大学, 201119 BOLDUAN G, JUNG H, et al. Recent advances in the nutrition of weaner piglets J. Pig News Inform

43、ation, 1988, (9): 381-38520 张常明, 李路胜, 王修启, 等. 乳酸菌对断奶仔猪生产性能及免疫力的影响J. 华南农业大学学报, 2006, 27(3): 81-8421 OQUINN P R, FUNDER BUNKE D W, TIBBETTS G W. Effect of dietary supplementation of mannan oligosaccharide on sow and litter performance in a commercial production systemJ. Journal of Animal Science, 2001

44、, 79(1): 21222 王彬, 黄瑞林, 印遇龙, 等. 半乳甘露寡糖取代金霉素对育肥猪血清生化指标和激素水平的影响J. 华北农学报, 2006, 2l(1): 76-79Effects of Diets supplemented with Probiotic and Fructooligosaccharide on Growth Performance, Immunity and Intestinal Flora of Replacement GiltsWANG Bo1, TIAN Heshan*Corresponding author, professor, E-mail: tian

45、heshan , ZHANG Fuliang2, CUI Yanfei3, ZHU Xiangyu3(1.Institude of quality standard and testing technology for agricultural products,Chinese Academy of Agricultural Science, Beijing 100081,China；2.Weihui Animal Husbandry Bureau, Weihui 453100, China; 3. Chuying Agriculture and Livestock Co., Ltd, Weihui 453100, China)Abstract: This experiment was conducted to investigate the effects of diets supplemented with probiotics and fructooligosaccharide (FOS) and their combination effect on the growth performance, immunity and intestinal flora of replacement gilts. 224 replacement gilts