采用流质饲料饲喂幼仔猪

1、第八章 采用流质饲料饲喂幼仔猪P.H. Brooks, C.A Moran, J.D. Beal, V. Demeckova和 A. Campbell英国普利茅斯大学前言对于很多养猪生产者来说，断奶仔猪的饲养管理是他们所面临的一个极大的挑战。通常情况下，哺乳仔猪每天的增重可达300克，但断奶后，其增重率经常是以前的一半甚至更少，更有甚者出现增重停止或负增重。这不仅表示猪目前增重率低，而且也预示猪未来增重潜能的低下。如果断奶猪的增重情况不好，可能会造成整个生长周期内的低增重率。食物、饮水、饲养环境和人为因素等多方面原因造成了断奶仔猪的低增重率。有关某个因素对断奶仔猪增重的影响已有很多的报道，但有

2、关综合因素对仔猪增重所产生影响的研究很少。断奶是一个过程还是一个结果？对野生猪来说，断奶从完全的乳汁（200克干物质/千克）向干食过渡通常可长达几周。野生猪是机会主义采食者，它们首先吃的是草(Baber 和 Coblenz, 1987)。根据Spitz (1986)报道，野生猪食物的90%由植物性的物质组成，其中种子和果实约占50%，其他为陆生昆虫、软体动物和蠕虫。即使野生仔猪开始吃固体食物后，固体食物的干物质(DM)含量也仅为15%30%。对商品猪生产者来说，情况就完全不同了。在1435日龄（国家不同断奶日龄不同），饲养仔猪会突然性的被断奶。预测约含20%干物质的液体日粮到约含85%干物质的

3、混合日粮的过渡应是一个瞬间过程，且通常以干食形式存在。实际上，从乳汁到混合日粮再到固体日粮是一个缓慢适应的过程，以便为仔猪胃肠道酶系统的发育完善（Kidder 和 Manners, 1978; Gestin等1997）和微生态系统的转化与平衡提供足够时间，并使微生物菌群适应变化的饲料形式 (Buddington, 1998)。在自然条件下，断奶过程也是促进仔猪改变行为的一种暗示过程。仔猪在吃母乳的过程中不断认知饥和渴。母乳刺激也会对仔猪行为产生两方面的影响。母猪每隔4050分钟就会给仔猪喂乳，仔猪也会以有规律的时间间隔哺乳，这也适合于以窝为群体的仔猪哺乳情况(Brooks 和 Burke, 1

4、998)。当断奶作为一个缓慢的过程发生时，一方面来自母乳的营养吸收（来自母猪）没有被打断，另一方面仔猪也会通过经验建立起自己的饮食习惯，而且也会发展个体防御行为。商品猪饲养者给饲养仔猪补饲食物和水，目的就是要使饲养仔猪达到以上效果。然而，由于商品猪饲养者要对幼龄仔猪断奶，所以仔猪个体对补饲料的采食量会受到限制或发生变化。Metz 和 Gonyou（1990）报道，2周龄的断奶仔猪在断奶前2天的采食量仅为7g/d，而4周龄的断奶仔猪则却高达127g/d。即使是同一窝仔猪，其采食情况也有很大的不同。有的仔猪的采食量甚至可达到同一窝内是其他仔猪的10倍(Pajor等,1991)。当提供液体代乳料给哺

5、乳仔猪时，发现仔猪的采食量也会发生极大的变化(Azain等, 1996)。断奶日龄的不同影响饮水能力，饮水器类型也影响仔猪的饮水能力，如新生仔猪对从碗中饮水比从乳头状饮水器中饮水学的更快(Phillips 和Fraser, 1991)。仔猪突然断奶后，不得不学会怎样区分饥和渴，也需学会怎样解渴和解饿。如果断奶前的仔猪有很少饮食经验，这就会造成仔猪饮食的不连贯性，进而会严重影响仔猪未来的生长速度。断奶后仔猪饮水和采食量之间的关系对于断奶仔猪来说，其主动或被动的不饮食行为都会对仔猪产生严重的影响。Gill (1989)证实，断奶仔猪需要花1周多的时间才能恢复到断奶前的饮食水平。如果这时得不到足够的

6、饮水，仔猪就会出现严重脱水。如果猪的内环境失衡，猪的生理就会受到严重影响，甚至最后开始饮水时，迅速出现重脱水。所以，保证断奶猪的足够饮水是非常重要的。仔猪可能在对乳头状饮水器的认识存在困难，但也有很少的证据证明滴水装置就会提高猪的饮水量（Ogunbameru等, 1991)。通过用碗来提供饮水，可以提高猪的饮水量和采食量(English等, 1981)。对饮水用碗的管理是非常关键的，污垢会降低水的品质和饮水量(Brooks 和Carpenter, 1990)。仔猪断奶后，前5天内的饮水量与其生理需求量并不存在一个明显的线性关系(McLeese等, 1992)。Brooks等 (1984)证明，

7、在断奶后的极短时间内，仔猪只饮水不采食（图8.1）。这表明，仔猪在断奶早期不能很好的区分饲料和水，结果只能通过饮水来满足胃肠所需。当猪学会饮食后，在自由采食情况下，其饮水量与采食量之比会降低；但在限饲情况下的仔猪会额外饮水来造成饱感(Yang等, 1981, 1984)。饮水会影响断奶仔猪饲料的摄入与利用（表8.2）。控制乳头状饮水器中水的流速会显著地影响饮水和采食量，进而会影响猪的生产性能（Barber等, 1989)。（1）饮水量（1） 断奶天数图8.1 21日龄断奶仔猪的饮水量（L）（Brooks等，1984）。表8.1 211日龄断奶仔猪，在被饲喂了两种商品日粮后的饮水量（g）与采食量

8、（g）之比。周数日粮A日粮B14.3：14.0：123.2：13.5：132.9：13.6：142.8：13.7：1表8.2 水的流速对断奶仔猪的采食量和饮水量的影响(Barber等, 1989)。水的流速（cm3/min）175350450700SED日采食量(克)303c 323b 341a 347a 3.68日增重（克）210c 235b 250a 247a 5.57饲料转化率1.48 1.39 1.37 1.42 0.03日饮水量（升）0.78d 1.04c 1.32b 1.63a 0.01饮水所用时间（秒/天）268b176a175a 139a 14.4abcd表示 同一行内具有相同

9、上标的平均数，其差异性不显著（P0.05）。SED 平均数间差异性的标准误。断奶后保持仔猪持续采食的重要意义养猪者一般认为，断奶后仔猪不能获得生长所必需的营养物质只能暂时影响仔猪的增重率，然而，此时的采食量不足会对猪的生产性能造成更深刻、更长远的影响。Brooks 和 Brice (1999, 未发表)研究了断奶猪第一次采食或饮水的时间，结果（图8.2）得到了两个重要结论：第一，不同断奶仔猪第一次开始饮食的时间存在极大的差异；第二，虽然大部分仔猪在断奶后3分钟就开始第一次饮食，但有些猪却在同栏仔猪开始采食后很长时间（大约54小时）才开始饮食。这对实践管理和实验设计具有重要的意义。因此，养猪管理

10、者应当知道，只有栏内的部分仔猪开始饮食并不意味全部仔猪开始饮食。所以，管理者的策略要保证断奶后尽快为全群提供饲料和饮水。另外，试验结果通常只考虑猪群的平均增重率，因此猪群中部分猪的行为变化或整个猪群的生物学效应都会引起表观处理的不同。普利茅斯大学收集的大量研究数据表明：断奶后第1周的干物质采食量对28日龄的断奶仔猪的增重有明显的影响（P0.001）(Geary 和 Brooks, 1998)。这个分析结果也表明，断奶后第1周的干物质采食量按50克/天增长,则28日龄断奶仔猪的增重可达870克/天。从断奶到首次开食的时间间隔（小时）猪头数 图8.2 从仔猪出生后第24天断奶到第一次饮食的时间间隔

11、（Brooks和Brice，未发表）28日龄断奶仔猪在断奶后第1周的干物质采食量，受断奶时体重、断奶日龄、性别和日粮处理等因素的综合影响。我们的试验数据证实了商品猪农场的报告，有时重量小的断奶仔猪要比重量大的断奶仔猪生长速度快(Brooks, 1998)，但这种生长速度并不能有效弥补最初的重量差距。行为规律表明，这种增长速度与断奶后仔猪的第一次采食的时间有关。体重较小的仔猪相对于较大的仔猪更有可能在断奶前就已经开始采食，因此体重较小的仔猪断奶后更易接受固体饲料。较大仔猪在哺乳阶段经常有较好的哺乳机会，而没有吃固体饲料的经验，这些猪断奶后常需较长的时间才能建立采食固体饲料的模式。肠上皮是整个机体

12、中生长速度最快的组织，因此需要从肠道直接吸收大部分的营养物质，来满足肠上皮组织的生长的需要，这也是人们容易忽略的一方面。Pluske等(1996,1997)研究表明，营养物质的持续性供应是断奶仔猪肠绒毛结构保持健康的重要保证。先前的研究表明，吃流食仔猪的绒毛高度大于吃干食的仔猪（图8.3）(Deprez等, 1987)，这可能与摄入食物的物理形态有关。然而，Pluske等（1996）进行的研究证明，绒毛高度的变化和营养摄入量有关，而与食物形态无关 (图 8.4)。研究还证明，断奶后的前5天，仔猪采食流食的量只是维持量时，仔猪的小肠绒毛高度会降低。然而，当饲喂给猪的流食量是维持量的3倍时，仔猪的

13、小肠绒毛高度大于断奶前。近期的大量数据(Ward和Moran,未发表)再次表明，干物质的摄入量与绒毛高度成正相关性(图8.5)。 有证据表明，瞬间饥饿会造成老鼠绒毛萎缩(Steiner等, 1968; Rudo等, 1976)，进而减少营养物质的吸收，造成更多的营养物质不能被消化而流入后肠段。后肠营养物质的增多导致肠微生物的异常增长，进而引发肠道疾病。为此，在生产实际中必须保证仔猪断奶后，其采食和饮水的持续性。十二指肠天绒毛高度（um）干食流食 回 肠 天干 食流 食绒毛高度（um）图8.3 流食或干食对断奶仔猪绒毛高度的影响（Deprez等, 1987）。绒毛高度（um）牛奶（ad lib）

14、牛奶（2.5M）牛奶（M）干的开食料断奶图8.4 饲料形态和饲料品质对断奶5天的仔猪绒毛高度的影响。M=维持，2.5M=2.5维持（Pluske等, 1996)。干物质摄入总量（g）平均绒毛高度（um）图8.5 干物质摄入总量（断奶后5-13天）与断奶后14天仔猪的绒毛高度之间的关系。流食的应用鉴于以上的论述，可认为断奶后为仔猪提供流食能够提高断奶猪的生产性能。流食之所以被认为具有这种潜在的优势，原因如下： 流食可提供像乳汁一样的干物质浓度，而这种饮食结构又趋近于野生猪的饮食。因此，流食可以增进仔猪饮食并保证营养物质的持续性供应。 流食可满足仔猪对营养和水分的双重需求。流食可解决仔猪断奶后不得

15、不学会区分饮水和采食所引发的一些问题。为了有效供应流食，还应注意以下一些问题: 流食供应要有一个有效的管理方式，避免浪费。 这种饮食模式不应也不需要额外增加太多劳动量。 流食适口性要好。 一定要保证饲料中微生物的含量和数量。以乳汁为基础的流食已经成功地应用于人工饲养仔猪和低日龄断奶的仔猪(Braude 和Newport，1977; Lecce等, 1979; Armstrong 和Clawson, 1980; English等, 1981; Efird等, 1982; Ratcliffe等, 1986; Taverner等, 1987; Maswaure 和Mandisodza,1995; D

16、unshea等, 2000)。然而，乳产品型流食常和产肠毒素菌引发的急性腹泻相关(Lecce, 1986; Dunshea等, 2000)。流食系统易被污染，因此需要增加劳动量去保持饲料槽的清洁和饲料的填充，这些一般会限制流食在实际生产中的应用。到目前为止，研究人员正尽力寻找一个综合的工程方法去防止饲料变质并保持适口性。例如，研制开发的一种用于断奶仔猪的流食自动饲喂系统(Partridge等，1992），可明显地提高仔猪断奶后前3周的食物摄入量和日增重量（表8.3），但对提高产出价值意义不大。随着可让仔猪随意采食的计算机控制的流食饲喂系统的发展，人们再次产生了用流食饲喂断奶仔猪的兴趣。这种系统

17、通过悬挂在饲料槽内的液感探针来探测饲料的供应水平，计算机按预先设定的时间间隔，对系统进行检测。如果探针是干的，气门就会被打开，饲料流进饲料槽直至达到预设的水平，这时探针再次反回信息，关闭气门。发酵在流食饲喂系统的意义大部分自动流食饲喂系统都存在着一个主要问题，即如果不采取有效措施抑制微生物的活动，就会发生不可控制性的发酵。Smith (1976)表明，谷物饲料中存在天然的乳酸菌（LAB），这种细菌会在流食饲喂系统中繁殖，降低流食的PH（酸度提高）。在Smith的研究中，饲喂流食时，将水添加到饲料中（PH约为5.8），这种混合饲料浸泡24小时后，乳酸菌就开始大量繁殖，饲料酸度提高。表8.3 应用

18、传统的干草或自动流食饲喂系统（这种设备能以11的比例或全天的6，8，12或24倍加水制成各种质量的复合干料）饲喂断奶仔猪时的日采食量和生长率(Partridge等, 1992)。周数日采食量（克）日增重（克）干料槽反式湿料槽 标准误（SED）干食槽反式湿料槽标准误（SED）114917614.013314715.5232735723.633035514.4345351836.338043417.2全期31035116.828131212.1SED,平均数间的不同标准误。P0.05；P0.01；P0.001。因为一般对管道式流食饲喂系统中的饲料不进行灭菌处理，常常会有微生物的活动，因此，这个饲喂

19、系统就成为一个微生物发酵罐。Danish调查揭示，管道式流食饲喂系统中的乳酸菌需要35天才能增殖并达到稳定状态(Hansen和Mortensen, 1989)。调查也发现，如果对管道式流食饲喂系统进行灭菌，则会杀死乳酸菌，降低系统中的酸度。恰恰相反，大肠杆菌能在灭过菌的系统中繁殖15天直至乳酸菌重新定植和PH值再次降低。大肠杆菌常导致仔猪发生腹泻。当系统酸度再次升高时，这个问题就可解决。 应当注意的是，随着流食饲喂设备的不断发展和饲喂经验的增多，已经取得了一些预想不到的进展，让猪随意采食流食呈现增长趋势。流食饲喂设备制造商开始考虑市场需求而改进设备。在一定的时间间隔内，流食饲喂系统将小数量的饲

20、料混合后，投放到保持一定量饲料的小食槽中。如果构成饲料的组分酸度极高或者为了抑制大肠杆菌和酵母菌的生长而精心酸化的组分(pH 2.5)，通常应该抑制食槽中饲料的发酵，以便保持饲料的可口性（应注意到，在这种情况下最终猪采食饲料的pH值仍然大约为4）。然而当饲料pH4.5时，就会引起饲料发酵和大肠杆菌、沙门氏菌等肠道致病菌的繁殖。 近来常用的一个方法是采用乳酸菌来控制饲料发酵、保持饲料的可口性，而且该方法还能抑制饲料内肠道致病菌的繁殖。从理论上讲，发酵流食（FLF）在生产和应用上简单易行。人类用自然方法保存食品已有几个世纪；而在20世纪人类开始用自然方法制备反刍动物青贮饲料。将饲料和23倍于饲料重

21、量的水混合并浸泡，天然饲料本身存在的生物也可导致发酵（图8.6）。开始时，这种混合饲料pH值大约为67，这时大肠杆菌会快速繁殖。随后乳酸菌开始生长并产生酸性物质（主要是乳酸），混合物pH开始下降。当pH 250 g克/千克)的饲料，断奶仔猪的生产性能可进一步改善；仔猪断奶4周后，再降低饲料的干物质含量（大约200 克/千克），也可进一步改善仔猪的生产性能。表8.5 饲喂颗粒料（DPF）或发酵液体料（FLF）时，猪的干物质采食量(Russell等, 1996)。断奶周数试验1试验2颗粒料发酵液体料标准误（SED）颗粒料发酵液体料标准误（SED）11304161119927192354741194

22、18560163636106816686819124889120358779549合计4438071154565410SED，平均数间差异的标准误。P0.05；P0.01；P0.001。表8.6 饲喂颗粒性料(DPF)或发酵流食(FLF)时，猪的生长率(克/天) (Russell等, 1996)。断奶周数试验1试验2颗粒料发酵流食标准误（SED）颗粒料发酵流食标准误（SED）11621232314017821226442637340425183529635385116022146746304459461022合计3434282139745414P0.01；P0.001。SED，平均数间差异的标

23、准误。Jensen 和Mikkelsen (1998)报道，在饲料发酵过程中，干物质和能量损失量大约为3%（表8.8）。对干食干物质进行粗略分析或应用能量预测方程对能值进行预测时，对所得数据一定要谨慎处理。对于流食来说，在进行概略养分分析之前的干燥过程中，某些寡糖和糖类物质可转化为脂肪酸和乙醇而挥发掉，但短链脂肪酸作为能源可被猪有效利用(Mosenthin, 1998)，其提供的能量占猪所需总能的20-30% (Kennelly 和 Aherne, 1980; Yen等, 1991)。为克服这一问题，荷兰人(CVB, 1998)建立了能量预测方程，此方程可阐释流食中挥发性脂肪酸的作用。另外，发

24、酵流食能改善猪的肠道结构（以后讨论），提高其吸收功能。因此，尽管发酵是一个耗能过程，但发酵所带来的益处可以抵消那部分损失的能量。 表8.7 猪对不同浓度发酵流食饲料的采食量(Geary等, 1996)。断奶周数发酵流食饲料的干物质浓度(克/千克 )标准误（SED）2552241791491204a178b109ab161a192397a367380320a24360053959957826470064877474636合计47543346645122ab表示同一行内的具有不同上标的平均数间存在显著性差异P0.05。SED，平均数间差异的标准误。表8.8 发酵温度对流食饲料化学成分的影响(Jen

25、sen 和 Mikkelsen, 1998)。处理干物质（%）能量(兆焦/千克 ) 淀粉(克/千克)总氮(克/千克 )未发酵24.1a4.77a97.59.81523.4b4.62b97.69.42023.4b4.65b65.99.32523.2b4.58b96.59.43023.4b4.63b97.59.8损失（%）3.13.1ab同一行具有不同上标的平均数间存在显著不同（P0.05）。发酵控制发酵流食在实际应用中存在的一个主要问题就是如何控制发酵程度。Jensen 和Mikkelsen (1998)证明，控制发酵温度和降低饲料pH是非常重要的。利用盛50%残渣的坛子，每隔8小时往坛中添加一

26、次饲料，他们发现坛子温度保持25时，只需发酵50小时就能达到一个稳态；当坛子保持15时，大约需要100小时才能达到稳定。普利茅斯大学的研究表明，发酵温度也影响乳酸增殖和pH下降速度（图8.7）。添加到发酵系统中水的温度也非常重要。如果直接将来自管道的水（约5）注入发酵系统，水将会对系统产身冷-刺激，从而造成三个负面影响：（）影响乳酸菌的生长繁殖（）酵母菌大量繁殖（）促使肠道致病菌分泌“冷休克”蛋白 ，这些蛋白可以保护肠道致病菌，延长其在饲料中的存活时间。 普利茅斯大学的早期研究就利用饲料中天然的乳酸菌进行发酵，得到了令人满意的结果。但自然发酵的不可控制性是需要注意的问题，农场养猪者更应该注意这

27、个问题，因为养猪者对发酵的控制水平不可能达到试验设备控制下的水平，因此近来的研究更多地集中在探索如何添加特异性乳酸菌来控制发酵。Geary等（1999)研究发现，利用乳酸酸化或乳酸小球菌发酵都能使饲料的pH降到4.2。不同处理对仔猪生产性能的影响均没有明显的不同，但效果要比试验前不进行乳酸发酵控制的饲料要好（表8.9）。 通过直接添加乳酸进行酸化比发酵更能有效地抑制大肠杆菌的繁殖。然而，值得我们注意是，既使是乳酸酸化过的饲料，乳酸菌仍然能在里面大量繁殖。在整个时期，用乳酸酸化处理的饲料和用乳酸球菌发酵处理的饲料中，都有大量的乳酸菌存在（图8.8）。 时间（h）乳酸浓度（mmol-1） 乳酸20

28、 乳酸30pH20 pH30图8.7 饲料发酵温度对乳酸生成和pH下降速度的影响(J.D. Beal,未发表)。表8.9 用乳酸酸化或乳酸球菌发酵控制的流食对仔猪生产性能的影响(Geary等, 1998)。处理间差异不显著。 参数处理标准误（SED）添加乳酸控制乳酸球菌控制干物质采食量(克/天) 53656371日增重(克) 47449625干物质饲料转化率 9总饮水量(毫升/头天) 20782283252来自饮水器的平均饮水量(毫升/头天) 511638133平均排泄物量(毫升/头天) 11181359185SED，平均数间差异性标准误。为了有效控制发酵，用作接种的菌种

29、必须保证能竞争得过饲料中自身存在的其他菌种，或在接种前除去饲料中自身存在的杂菌，以消除竞争。以上数据表明，用酸化方法除去饲料中自身存在的菌种可行性较小：因为仔猪不喜欢吃pH太低的饲料。到目前为止，我们还没有发现任何一种既经济可行又能保持流食适口性的无菌物质用于发酵。然而，完全清除饲料中的所有细菌也是没有必要的。Demeckova等(2000)证明，在接种乳酸菌之前，二氧化氯可被用来有效地除去流食中的大肠杆菌（表8.10）。在对仔猪的生产性能研究中发现，仔猪更喜欢吃用二氧化氯进行灭菌处理过的新鲜、发酵的流食。以上表明，饲料自身存在的微生物在其生长过程中会产生破坏饲料口味的物质。但当仔猪在没有选择

30、的前提下，采食发酵前灭菌和不灭菌的流食量没有明显的不同 (Moran, 2000)。发酵天数乳酸小球菌发酵天数乳酸杆菌 大肠菌 酵母菌 乳酸菌图8.8 用乳酸酸化或乳酸球菌发酵处理的饲料，其pH为4时对微生物的影响(Geary等, 1999)。表8.10 不同浓度的二氧化氯和时间对流食中大肠杆菌的影响(Demeckova等, 2000)。时间（h）二氧化氯浓度（ppm）时间的主要影响010020030040050003.2a3.2a12.7a12.02.02.0 2.81 34.33.312.512.02.02.0 3.01,2 64.93.712.412.02.02.0 3.32 248.2

31、6.34.02.02.02.05.1CLO2的主要影响2.02.02.0a.b.c. 相同字母内表示差异不显著（p0.05）1.2.3 相同数字内表示差异不显著（p0.05）断奶仔猪对干物质的采食偏好尽管断奶仔猪偏好干物质含量较低的饲料，而且可以从中获得足够的干物质，但这并不意味着此时是最佳选择。Brooks 和 Wattam的还未发表的研究表明，当分别给断奶仔猪饲喂颗粒性干食、发酵流食(每千克饲料含180 克干物质)或同时饲喂这两种饲料（表8.11）时，在断奶后的前4周，吃发酵流食的仔猪日增重高于吃颗粒性干食和同时吃这两种饲料的仔猪组，但差别并不非常显著。试验进行4周后，同

32、时吃发酵流食和颗粒性干食组的仔猪干物质摄入量仅是发酵流食组的7%，颗粒性干食组保持不变，干物质量占总量的87%（Brooks 和 Wattam,未发表)。因此，这或许表明，如果给猪自由选择采食种类的的机会，处于这个年龄阶段的仔猪一般选择干物质含量更接近于颗粒性干食的饲料，但这时仔猪干物质摄入量和增重率仍达不到饲喂流食的水平。应该注意的是，在这项研究中，所用的是干物质含量非常低的发酵流食 (180g/kg)，同干物质含量比较高的饲料相比，干物质较低的发酵流食会明显降低断奶仔猪的干物质摄入量，这一点在早先的研究中已经得到过证明，这也可能是影响仔猪最初采食趋向的主要原因。表8.11 吃发酵流食（FL

33、F）、颗粒性干食(DPF)或发酵流食和颗粒性干食断奶仔猪的生产性能（Brooks 和 Wattam,未发表)。日粮处理发酵流食颗粒性干食发酵流食和颗粒性干食SEM干物质采食量(克/天)39934243023.6日增重(克)3102622879.37干物质饲料转化率1.281.31.490.06总饮水量(毫升/头天)1820ab889a946b1.58来自饮水器的平均饮水量(毫升/头天)108772981157.9ab，具有不同上标的平均数差异显著P 0.01.SEM 平均数的标准误。日粮提供形式与仔猪行为在试验中也对猪的行为进行了研究(Brooks 和Murray，未发表）。在试验进行的最后1

34、周，猪对3种饲料处理所表现出的行为明显不同。猪对流食所表现出的行为比对其他两种饲料更趋向于安静和更少的异常行为（如饥饿叫食和吮肚脐）（表8.12）。对猪的个体行为与生产性能之间的关系进行的研究表明，饥饿叫食持续时间与增重速度之间呈明显的负相关。饥饿叫食时间少1.5%的猪，其日增重（组1）明显高于其他组（组2）（表8.13）。吃发酵流食的猪多在饥饿叫食持续时间较短的群体中，这可在某种程度上解释为什么吃发酵流食的断奶猪会有更好的增重率；同时也表明，流食可明显提高断奶猪的生活福利。因此，我们进一步的研究应该努力弄清楚同流食相关的哪些因素会引起猪行为上的变化。Brooks 和van Zuylen (1

35、998)认为，在管理吃发酵流食的断奶仔猪时，还应考虑影响仔猪增重率的其他两个重要方面：（）断奶前的饮食方式（发酵流食或颗粒性干食）的影响（）断奶时的重量：5.57.5 kg (低) 和 7.59.5 kg (高)。虽然断奶之后，这两方面对仔猪的增重率没有明显的影响，但断奶吃发酵流食的低体重的仔猪趋向于有更高的增重率（表8.14）。在以周为单位所测得的增重率数据表明，在仔猪断奶后的第1周，低体重断奶组和高体重断奶组的增重率有明显的不同（表8.15），低体重断奶猪的增重率是同一栏内高体重断奶猪的2倍还要多。但在断奶后3周内，低体重断奶的仔猪即使有较高的增重率，仍不能达到高体重断奶仔猪的重量。 值得

36、注意的是，不管在我们自己试验猪场还是在商业化猪场，当饲喂方式从流食转变为干食时，都没有不良影响出现。表8.16列出了4种不同处理组中的发酵流食和颗粒性干食的干物质比例（Brooks和van Zuylen, 1998)。发酵流食对饲料和肠道微生物的影响 发酵会提高饲料的酸度，而酸度的提高又会显著影响饲料和仔猪肠道中的微生物群系。荷兰(vanWinsen等, 1997)的研究发现，用植物乳酸菌（Lactobacillus plantarum）发酵猪饲料时， 乳酸菌被接种2小时后，沙门氏菌（Salmonella typhimurium）生长受到抑制（图8.9），而接种6小时后，发酵流食中就检测不到沙

37、门氏菌。与此相反，在没经发酵的饲料中，沙门氏菌仍然能够存活而且能在贮存10小时内大量繁殖。普利茅斯实验室研究表明，当将乳酸菌DT104:30和球菌（Pediococcus pentosaceus）一起接种到流食中时，球菌就会快速地占据主导地位，而沙门氏菌则会降低至检测不到的水平（图8.10）。饲料温度保持在30比保持在20更能有效地清除沙门氏菌。发酵流食对致病性的大肠杆菌（Escherichia coli）也具有明显的清除作用(Beal等, 2000) (图8.17)。 断奶仔猪胃酸的产生量一般不足，而胃酸又是抵抗细菌入侵的第一道防线(Smith 和Jones, 1963; Cranwell等

38、, 1976)。为此，可以通过向饲料中添加乳酸(Thomlinson 和Lawrence, 1981)、饲喂发酵乳(Ratcliffe等, 1986; Dunshea等, 2000)或饮水来降低胃pH和大肠杆菌的数量(Cole等, 1968)，从而达到控制胃酸度的效果。同样，饲喂发酵流食也可提高胃的酸度。Mikkelson 和 Jensen (1997)发现发酵流食能明显地提高胃内的乳酸含量（表8.18）,而在其他肠道部位也会发生明显的变化。表8.12 吃发酵流食（FLF）、颗粒性干食(DPF)或同时吃发酵流食和颗粒性干食的断奶仔猪花在不同行为上的时间比例（Brooks 和Murray,未发表

39、）。行为饲料处理发酵流食颗粒性干食发酵流食和颗粒性干食a睡眠/休息0.870.840.82吃料0.030.060.06其他0.090.070.09a同时提供发酵流食和颗粒性干食。表8.13 多于或少于1.5%时间的饥饿叫食对猪增重率的影响（Brooks 和Murray,未发表）。 饥饿叫食时间低于观察时间的1.5%饥饿叫食时间超过观察时间的1.5%叫食时间比0.002 0.035睡眠和休息时间比0.87 0.082日增重（克）309 265 饲喂发酵流食的猪的头数14 4 饲喂颗粒性干食的猪的头数9 9 饲喂发酵流食和颗粒性干食猪的头数7 11 总数30 24a同时饲喂发酵流食和颗粒性干食。P

40、0.05;P0.001。表8.14断奶后体重高或者低吃发酵流食仔猪的生产性能和哺乳期吃发酵流食或颗粒性干食仔猪的生产性能(Brooks等, 1998)。处理SED低a高b发酵流食颗粒性干食干物质采食量(克/天 )42740242240682日增重(克 )37235337335131干物质饲料转化率41.140.1来自饮水器的饮水量（毫升/天 )624658659623212a低重量组断奶重在5.57.5 千克之间。b高重量组断奶重在7.59.5 千克之间。SED,平均数间差异性标准误。表8.15断奶后体重高或者低吃发酵流食仔猪的增重率(克/天 ) 和哺乳期吃发酵流食或颗粒

41、性干食仔猪的增重率(克/天 ) (Brooks等, 1998)。处理 SED低高发酵流食颗粒性干食第1周204a97a15614437第2周33341137836641第3周57755258554437合计42740242240682a，具有不同上标的平均数差异显著P 0.05。SED,平均数间差异性标准误。表8.16 断奶后第3周仔猪对发酵流食或颗粒性干食的干物质采食量比较(Brooks等, 1998)。断奶重补饲料SED低高发酵流食颗粒性干食颗粒性干食(克/天)16616816716721发酵流食(克/天)468484475477102流食所占比例0.740.740.740.74a用发酵流

42、食饲喂断奶猪2周，然后第3周选择性饲喂发酵流食和颗粒性干食。SED，平均数间差异性标准误。时间（小时）细菌ml-1发酵液体料中的沙门氏菌液体料中的沙门氏菌图8.9液体饲料和发酵液体饲料中沙门氏菌的生长（Van Winsen等，1997）表8.17 发酵流食中大肠杆菌的六种菌株，在48小时、72小时或96小时的指数递减(Beal等, 2000)。时间大肠杆菌菌株SEDK88(99)K88(100)K88(101)O157:H7K99(185)K99(230)48h25.2a 26.1a22.3b12.1622.0b22.2b0.9672h23.7a23.6a24.2a9.316.5b14.6b0

43、.9696h22.9a17.4a24.3a10.315.8b14.0b0.96a,b具有不同上标的平均数差异显著P 0.05。SED,平均数间差异性标准误。表8.18 饲喂未发酵过的流食（对照）或发酵流食的猪，在其胃肠道中的短链脂肪酸的含量（Mikkelson和Jensen, 1997）。 醋酸 乳酸未发酵流食发酵流食未发酵流食发酵流食胃16.616.537.381.7胃-回肠26.3胃-回肠24.5胃-回肠311.79.838.032.7胃-回肠412.813.347.640.2盲肠73.893.02.32.9结肠161.0结

44、肠255.6结肠30.0P 0.05;P 0.01;P 0.001。时间（小时）液体饲料20存放DT104:30球菌（P.pentosaceus）pH液体饲料30存放时间（小时）DT104:30；球菌（P.pentosaceus）；pH图8.10 从0时刻开始，在20或30时，同时向饲料中接种沙门氏菌DT104:30 和 球菌的生长情况(J.D Beal，未发表)。表8.19断奶14天后，饲料处理对仔猪肠内容物的pH的影响(Moran 和 Ward, 未发表)。 饲料处理哺乳颗粒性干食流食发酵流食胃2.4b3.9ab4.8a3.9ab回肠末端5.9bc

45、6.3abc6.4abc6.1abc盲肠6.1ab5.8b6.0ab6.0ab结肠6.6a5.9b6.0ab6.2ababc具有不同上标的平均数差异显著P 0.05。 近来研究(Moran 和 Ward,未发表)表明，饲料形式可影响仔猪消化道的pH ，同时也发现哺乳猪的消化道pH最低。因为饲料组分的稀释作用和取样分析时的难度都会引起pH的变化(Kidder 和Manners, 1978; Bolduan等, 1988)，所以我们要仔细地控制pH的变化。 虽然发酵流食不能显著影响到整个消化道中的乳酸菌数量，但会急剧降低小肠后段、盲肠和结肠内的大肠杆菌数 (Jensen 和Mikkelsen,19

46、98)。断奶后吃流食的仔猪，其后肠段的的乳酸菌与大肠杆菌比例同哺乳猪非常的相似（图8.11）。但仔猪断奶后，如果吃干食，乳酸菌与大肠杆菌的比例为负数，如果吃发酵流食，则刚好相反。结论 在断奶后立即饲喂流食饲料会明显提高仔猪的采食量，并有助于保证为仔猪供给营养的持续性。然而，在保证仔猪自由采食流食饲料的卫生质量控制方面还存在相当多的问题。如果不采取措施抑制流食中肠道致病菌的繁殖，就会导致仔猪发生腹泻，但发酵流食就不存在这个问题。如果能控制好发酵过程，发酵流食就会对肠道结构和肠道微生物产生积极的影响，并且也能很好地被仔猪接受。目前，我们所面临的挑战就是要不断的改进饲喂设备和总结经验，以便在商业化猪

47、场中发挥流食饲喂的作用。干 料 哺 乳 液体料 发酵液体料乳酸菌与大肠杆菌比 回肠末端 盲肠 结肠图8.11 在不同饲料处理下，所测后肠段的乳酸菌与大肠杆菌的比率（对数转化数）(Moran, 2001)。（赵敏译，杨红建校）参考文献 Armstrong, W.D. and Clawson, A.J. (1980) Nutrition and management of early weaned pigs: effect of increased nutrient concentrations and (or) supplemental liquid feeding.Journal of Ani

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