实验三光合作用的希尔反应_第1页
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文档简介

实验三光合作用的希尔反应第1页,课件共10页,创作于2023年2月离体叶绿体加到具有适当氢受体(A)溶液中,光照后放出氧气。

2H2O+2A2AH2+O2

实验中用的氧化剂A是2,6-二氯靛酚(2,6-D),是一种蓝色染料,接受电子和H+后被还原成无色。在光下,叶绿体将2,6-D还原,从蓝色到无色。通过测定其光密度的变化,可以得出叶绿体的还原能力。光叶绿体【实验原理】第2页,课件共10页,创作于2023年2月Cl2OHClClNHOHClNOHO+2H2O2+O2光叶绿体氧化型二氯靛氛(蓝色)还原型二氯靛氛(无色)第3页,课件共10页,创作于2023年2月

DCMU(二氯苯基二甲基脲,dichlorophenyldimethylures,商品名为敌草隆,diuron)等除草剂是作用于光合作用光系统II中质体醌QB结合部位。它们竞争性地替换与DI蛋白结合着的质体醌QB,导致电子传递受阻,抑制Hill反应的发生。非环式光合磷酸化与假环式光合磷酸化均可被DCMU所抑制,而环式光合磷酸化则不被DCMU抑制。第4页,课件共10页,创作于2023年2月菠菜叶片【实验材料】第5页,课件共10页,创作于2023年2月实验器材:⑴研钵;⑵移液管;⑶离心机;⑷722型分光光度汁;⑸500瓦灯泡实验试剂:(1)提取液(0.02MTris-HCl缓冲液,含有0.4M蔗糖,0.03MKCl,pH7.5);(2)DCMu(用0.02MTris-HCI缓冲液配制成5µMDCMU溶液);(3)2,6-D,即2,6-二氯靛酚(用0.02MTris-HCI缓冲液配制成0.003%2,6-D溶液);(4)80%丙酮;(5)0.4M蔗糖等【实验器材与试剂】第6页,课件共10页,创作于2023年2月叶绿体的提取①将4g新鲜叶片去叶脉后剪碎,放于预冷的研钵,加入4mL预冷的提取液,研磨成匀浆,再加4mL预冷的提取液混匀,将所有的匀浆液用4层纱布过滤,弃去杂质。②收集过滤液于离心管中,4℃1000rpm离心3min,收集上清液于一新的离心管,弃去沉淀。③4℃3000rpm离心5min,弃去上清液,将沉淀悬浮于冷的4mL提取液,即为叶绿体提取液。叶绿素含量的测定

取0.1ml叶绿体悬浮液于7ml离心管,用4.9ml80%丙酮稀释到5ml,混匀后,在652nm下测定吸光度,来计算叶绿素含量。

C(mg/mL)=OD652×1/34.5×稀释倍数用预先冷冻的提取液稀释叶绿体悬浮液,总体积8mL,使叶绿体悬浮液浓度约相当于叶绿素浓度为0.04mg/mL。【实验步骤】第7页,课件共10页,创作于2023年2月Hill反应

取9支试管,包好黑纸并编号1-9,按下表所列试剂分别加入9支试管中。

提取缓冲液做参比,600nm读取1号管光密度,分别取0.5mL和1mL叶绿体悬浮液放入2号和3号试管中,立即于600nm读取光密度,再按表中要求加入叶绿体悬浮液于其它试管中,然后把黑纸剥掉,将4号、6号和8号管放在距光源20cm处,把5号、7号和9号管放在距光源60cm处(注意:试管放在盛有水的烧杯中),10分钟后,立即用黑纸把试管包好放冰浴中,然后于600nm分别读取光密度。试管号提取液/mL叶绿体/mLDCMu/mL2.6-D/mL14.0----1.024.50.5----34.01.0----4和53.50.5--1.06和73.01.0--1.08和9--1.03.01.0第8页,课件共10页,创作于2023年2月【注意事项】叶绿体提取:

在冰浴低温条件下操作,上清液和沉淀的保留与否。希尔反应:

每管反应的总体积相同,且做好标记;在反应时,所加溶液为提取液稀释的叶绿体悬浮液,与测定叶绿体含量时用丙酮稀释不同;光照条件下取放试管时,千万注意不能将水溅到灯泡上(冷水溅到热的灯泡上会引起灯泡爆炸)。

第9页,课件共10页,创作于202

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