中药化学苷类课件

第5节苷的提取、分离及检识苷的提取：溶剂法苷的分离：大孔树脂法色谱法苷的检识：化学检识色谱检识

第5节苷的提取、分离及检识苷的提取：溶剂法11.苷的提取溶剂法：用极性由小到大的溶剂依次提取。常用溶剂有沸水、甲(乙)醇、正丁醇、乙酸乙酯等。！注意：苷的水解（酸、酶、碱的影响）。原生苷的提取：破坏或抑制酶的活性。药材迅速干燥拌料无机盐如碳酸钙用沸水、高浓度醇提取次生苷或苷元的提取：利用酶活性。发酵后或水解后，用亲脂性有机溶剂提取。1.苷的提取溶剂法：用极性由小到大的溶剂依次提取。常用溶剂有2中药化学苷类课件32.苷的分离纯化溶剂处理法：利用溶解度差异分离。提取液浓缩后，用合适的溶剂处理，根据苷类与杂质的溶解度不同分离。如乙醚、丙酮沉淀皂苷等。铅盐沉淀法：利用醋酸铅在水或稀醇中能沉淀某类成分的性质，进行除杂或提纯。中性醋酸铅能沉淀具邻二酚OH、-COOH的酸性苷；碱式醋酸铅能沉淀酚性成分。色谱法：利用混合物中各组分与固定相和流动相的相互之间的作用不同，使各组分以不同程度分布在固定相和流动相中，当流动相流过固定相时，各组分以不同的速度移动，达到分离。分离效果好，是一种实验室常规分离方法。2.苷的分离纯化溶剂处理法：利用溶解度差异分离。提取液浓缩后4

按流动相分：液相色谱（liquidchromatography）气相色谱（gaschromatography）按操作方式分：薄层色谱纸色谱柱色谱按分离机理分：吸附色谱分配色谱离子交换色谱按极性分：正相色谱反相色谱色谱法（Chromatography）分类：按流动相分：液相色谱（liquidchromatogra52.苷的分离纯化大孔树脂吸附色谱原理：大孔树脂是一类具有多孔结构、不溶于水的固体高分子物质，可以通过物理吸附（范德华力）从水溶液中有选择的吸附成分，达到分离目的。特点：选择性、机械强度高、再生处理方便、吸附速度快等。应用广泛，如苷与糖类的分离等。分类：非极性、中极性、极性和强极性四类。选择的树脂极性与被分离物质极性既不能相似（吸附过强），也不能差太大（无法分离）。常用的有DA-101、DA-201、AB-8型等。操作：样品用水溶解，上样后依次用水、含水醇、浓醇洗脱。收集洗脱液，回收溶剂，浓缩干燥，即得。聚酰胺色谱凝胶色谱苷的分离（有效部位）：2.苷的分离纯化大孔树脂吸附色谱苷的分离（有效部位）：62.苷的分离纯化硅胶、氧化铝吸附色谱：适用于极性低的苷类或苷元的分离。利用被分离组分与吸附剂之间的相互作用（可逆的范德华力）差异进行分离。在洗脱过程中，柱内不断地发生解吸、吸附，再解吸、再吸附的过程。即被吸附的物质被溶剂解吸而随溶剂向下移动，又遇到新的吸附剂颗粒被再吸附，后面流下的溶剂又再解吸而使其下移动。经过一段时间以后，该物质会向下移动一定距离。此距离的长短与吸附剂对该物质的吸附力以及溶剂对该物质的解吸(溶解)能力有关。不同的物质由于吸附力和解吸力不同，移动速度也不同。吸附力弱而解吸力强的物质，移动速度就较快。分配色谱：以硅胶、纤维素等为支持剂，水饱和的溶剂为流动相进行分离，适用于极性较大的苷类成分。常用反相色谱，即以键合硅胶为固定相，含水的溶剂系统为流动相分离。苷的纯化（有效成分）：2.苷的分离纯化硅胶、氧化铝吸附色谱：适用于极性低的苷类或苷7中药化学苷类课件8中药化学苷类课件9中药化学苷类课件103.苷的检识化学检识Molish反应（α-萘酚浓硫酸）：糖、苷（＋）紫色环。糖被氧化成糠醛，糖醛与酚胺缩合生成有色化合物。Fehling或Tollen反应：还原糖（＋）。苷、非还原糖(-)。比较水解前后结果，判断是糖还是苷。

RCHO+2Ag(NH3)2+OH－→RCOONH4+2Ag↓+3NH3+H2ORCHO+2Cu(OH)2+NaOH→RCOONa+Cu2O↓+3H2O3.苷的检识化学检识11第6节苷的结构研究纯度鉴定分子式的测定苷的水解苷元的结构鉴定糖的结构鉴定第6节苷的结构研究纯度鉴定12糖的结构鉴定糖的种类糖的数目糖链的结构位置：苷元-糖、糖-糖顺序：糖-糖构型：苷键糖的结构鉴定糖的种类131.糖的种类的确定色谱法—测定水解液中的单糖，与对照品比较。PC：最常用。TLC：点样量较少≤5μg。可用无机盐（强碱弱酸）的水溶液制板，增加样品承载量，改善分离效果。如0.3mol/LNa2HPO4、0.03mol/LH3BO3等。HPLC：直接进样，但灵敏度不及GC。GC：灵敏度高，但需水解、制备衍生物。NMR法—直接测定苷，与标准品的糖数据比较。1HNMR、13CNMR二维NMR1.糖的种类的确定色谱法—测定水解液中的单糖，与对照品比较。14常见单糖纸色谱hRfBAW：正丁醇－醋酸－水（4:1:5,上层）BEW：正丁醇－乙醇－水（4:1:2）BBPW：正丁醇－苯－吡啶－水（5:1:3:3）PhOH：水饱和苯酚

常见单糖纸色谱hRfBAW：正丁醇－醋酸－水（4:1:5,152.糖的数目的确定MS法测定苷和苷元分子量，根据差值或碎片质荷比差值计算。色谱法—测定水解液中的单糖TLC-Scan、HPLC-定量，以单糖对照品为标准。NMR法1HNMR：根据糖端基质子信号数目确定；或全乙酰化、全甲基化数目推测。13CNMR：根据糖端基碳信号数目（90-112ppm）确定；或苷和苷元碳信号差值推断。二维NMR

2.糖的数目的确定MS法163.糖的连接位置—苷元与糖13CNMR苷化位移（glycosylationshift,GS）：苷元与糖结合成苷后，苷元的成苷碳原子（α-C）与相邻的碳原子（β-C）信号会发生位移，其他碳信号不变；糖端基碳原子与游离单糖信号相比也发生了位移。苷元：醇苷，α-C低场位移4-10ppm

β-C高场位移1-4.6ppm酚苷，α-C高场位移β-C低场位移糖：端基C低场位移4-7ppm相邻C高场位移1-4ppm

二维NMR

3.糖的连接位置—苷元与糖13CNMR1713CNMR

法：苷的碳谱数据与单糖的碳谱数据比较，根据苷化位移规律可确定单糖的连接位置。若内侧糖的某碳原子向低场移动（4-7ppm），而相邻两个碳原子又略向高场移动（1-4ppm），确定内侧糖的碳原子是连接糖的位置。4.糖的连接位置—糖与糖13CNMR法：苷的碳谱数据与单糖的碳谱数据比较，根据苷化186.苷键构型的确定酶水解法麦芽糖酶水解α-苷键苦杏仁苷酶水解β-苷键NMR6.苷键构型的确定酶水解法191HNMR：糖成苷后，端基质子常位于较低场。H-2’为a键的糖，如葡萄糖，形成α-苷或β-苷时，偶合常数J不同，由此可判断苷键构型。H-2’为e键的糖，如鼠李糖，形成不同构型苷的J值相近，无法判断。ａ-L-鼠李糖苷J1’2=Jae=2-3Hzβ-L-鼠李糖苷J1’2=Jae=2-3Hz1HNMR：糖成苷后，端基质子常位于较低场。ａ-L-鼠李糖苷2013CNMR：糖成苷后端基碳原子δ向低场位移，而其他碳变化不大。2D-NMR（NOE）α-D-葡萄糖苷，H1~H2

β-D-葡萄糖苷，H1~H3、H1~H513CNMR：糖成苷后端基碳原子δ向低场位移，而其他碳变化不21复习思考题：1.名词解释苷原生苷次生苷乙酰解反应酶解反应Smith降解Molish反应α与β构型全甲基化甲醇解苷化位移端基碳氧苷

2.比较以下各化合物水解难易，并说明理由。A>