铜绿假单胞菌感染和耐药机制

铜绿假单胞菌感染和耐药机制[摘要]铜绿假单胞菌是医院内感染的重要的致病菌之一，它可造成较高的发病率和病死率，铜绿假单胞菌容易出现耐药性，并且容易体现多个毒性因素，这一切使得现在临床上所用的治疗办法经常无效，本文针对这种状况，首先介绍铜绿假单胞菌在临床上引发的常见的感染和疾病，另首先介绍铜绿假单胞菌的耐药性机制，最后提出对克制铜绿假单胞菌耐药性的药品研究的展望。[核心词]铜绿假单胞菌耐药性毒性因素药品铜绿假单胞菌是革兰氏阴性杆菌，是条件致病菌，它对健康的机体几乎不会引发感染，但是对免疫受损的机体能够引发严重的感染，免疫受损的机体涉及囊性纤维化患者，癌症病人，艾滋病毒感染者，严重烧伤病人[1]。由于传统的抗生素治疗，使铜绿假单胞菌对许多抗生素产生了严重的耐药性，它能够产生多个灭活酶或修饰酶,如内酰胺酶等;菌体蛋白构造和功效变化逃避抗菌药品作用;膜屏障与主动排外;形成生物保护膜等[4]，来抵制抗生素的作用。这也是在临床上很棘手的问题，使铜绿假单胞菌不仅成为难以治疗的病原菌，也使其成为众多研究细菌致病性和耐药性的对象。首先来理解一下铜绿假单胞菌引发的常见的感染和疾病。1、铜绿假单胞菌引发的常见的感染和疾病在临床上发现呼吸科和烧伤科铜绿假单胞菌感染率和检出率较高。1.1铜绿假单胞菌有关性肺炎它涉及慢性阻塞性肺疾病(COPD)，医院获得性肺炎（CAP），呼吸机有关性肺炎(VAP)，气管镜有关性肺炎，囊性纤维变性（CF）等。慢性阻塞性肺疾病(COPD)慢性阻塞性肺疾病(COPD)是以感染为重要体现的疾病,由于其呼吸道防御功效下降,支气管去除能力削弱,故能引发多个细菌的感染,铜绿假单胞菌感染是COPD病人急性加重的重要因素。铜绿假单胞菌一开始就被认为是引发慢性阻塞性肺疾病(COPD)的重要的致病菌[10]，Laura的研究证明铜绿假单胞菌引发COPD病人的慢性感染[11]。医院获得性肺炎（CAP）铜绿假单胞菌在社区获得性肺炎中不常见，但在医院获得性肺炎（CAP）中较常见的病原菌之一[2]。CAP是COPD常见并发症和重要死亡因素之一,近年来国内有关COPD患者合并CAP方面的研究得到广泛关注。同时由于社会人口的老龄化、免疫损害宿主增加、病原菌变迁和抗菌药品耐药率上升等因素,其致病菌的构成和耐药特性在不同国家、不同地区之间存在着明显差别,并且随着时间的推移而不停变迁[6]。呼吸机有关性肺炎(VAP)机械通气已成为重症监护病房(ICU)救治呼吸衰竭患者的重要手段,随之而来的呼吸机有关性肺炎(VAP)日益受到人们的重视。铜绿假单胞菌已成为VAP的重要致病菌,其含有多药耐药性,治疗难度大,病死率高。由于铜绿假单胞菌在医院环境中广泛分布,常见于医务人员的手、病床、桌面、呼吸机管路、多个医用导管及医疗用品的表面等,使得机械通气患者成为铜绿假单胞菌感染的易动人群。该菌所致的感染大多发生在免疫功效低下且伴有严重基础疾病的患者,如高龄、COPD患者、脑外伤或脑血管意外患者,较大创伤对本身免疫力的削弱以及气管插管或气管切开、机械通气、留置导尿等侵入性操作,均使感染的机会大大增加[5]。1.2烧烫伤后感染烧烫伤患者严重感染已成为影响其健康、甚至造成死亡的重要因素之一，30年来感染始终占据死亡因素的首位[12]，烧伤后的感染是一种很重要的问题，由于一旦感染上医院获得性的多重耐药性细菌，将是一种很麻烦的事情。在烧伤感染细菌菌种多以革兰阴性杆菌为主,其中以铜绿假单胞菌的检出率最高。各地报道显示,该菌的检出率牢牢占据革兰阴性杆菌的首位[13-14],成为烧伤创面感染常见细菌之一。铜绿假单胞菌适应性很强，它对不少抗生素有天然耐药性，这使得它能够定植在烧伤部位并能够快速增殖，而这种局部的增殖能够造成全身的脓毒血症，而脓毒血症又可造成高的死亡率。[15]这些疾病在临床上一旦出现非常棘手，由于铜绿假单胞菌适应性很强，它对不少抗生素有天然耐药性和后天获得的多重高度耐药性，临床治疗十分困难,一旦感染,病死率很高。2.耐药机制铜绿假单胞菌耐药机制相称复杂,已知的重要有:(1)青霉素结合蛋白(PBPs)构造和功效的变化以及与抗菌药品亲和力的下降。(2)外膜通透性减少。(3)β-内酰胺酶的产生。(4)氨基糖苷类修饰酶的产生。(5)细胞外膜主动外排系统的体现。另外(6)铜绿假单胞菌生物膜的形成也使其对抗菌药品不敏感[6]。2.1细胞外膜主动外排系统铜绿假单胞菌外排泵是由相似的操纵子所编码的内膜转运体(如MexB、MexD、MexF、MexY、MexI和MexW)和MFP以及由相似的操纵子或染色体其它区域的基因所编码的OM蛋白共同形成的一种贯穿内外膜的通道，该通道能够直接将靶物质从细胞质泵至细胞外环境。铜绿假单胞菌外排系统涉及MexAB-OprM型和MexCD-OprJ型，主造成菌株获得性的对多个药品耐药的因素是MexAB-OprM的过分体现。主动外排系统MexAB-OprM的高体现对美罗培南的耐药起重要作用，其高体现与调控基因mexR变异有关，MexAB-OprM高体现的分子机制可能与泵调节基因MexR的突变以及其它突变型有关[17]，MexAB-OprM主动外排系统体现水平的增高与PA多药耐药的形成亲密有关[18-19]。2.2β-内酰胺酶的产生,铜绿假单胞菌产生三种β-内酰胺酶，涉及超广谱β-内酰胺酶（ESBL),诱导酶（AmpC酶）,金属β-内酰胺酶。其中金属β-内酰胺酶能够水解亚胺培南,造成其耐药,而亚胺培南被认为是治疗铜绿假单胞菌等感染的重要武器，现在发现的获得性金属β-内酰胺酶涉及:IMP、VIM、GIM、SPM4种,其中以IMP和VIM常见,IMP-7(GenBankAF318077)其产生菌对美洛培南和亚胺培南高度耐药[24]。产ESBLs不易被无视,国外报道铜绿假单胞菌产超广谱β-内酰胺酶（ESBLs）的检出类型已达150余种,其中,以OXA型增加最快,OXA-50在铜绿假单胞菌的体现可减少氨苄西林、替卡西林、拉氧头孢和美洛培南的敏感性[20]。国内徐卫等报道在铜绿假单胞菌中,ESBLs的检出率已高达38-23%[21-23]。有文献报道，铜绿假单胞菌染色体固有携带ampC基因，但基因的体现受诱导剂(抗生素)调节，促使AmpC酶的产生，一旦去除抗生素，大多数状况下产酶水平水逐步恢复到基线水平[28]。但当ampC基因自发突变可致稳定的去阻遏体现而产生持续性的高水平酶[29]。2.3外膜通透性减少OprD2蛋白形成的特异性孔道,能够促使碳青霉烯类抗菌药品进入铜绿假单胞菌细胞内部,oprD2基因的缺少或者不体现会造成碳青霉烯类抗菌药品（除美罗培南外）对铜绿假单胞菌不起作用[25]。衣美英等[16]测定该院SICU分离的49株PA，其成果显示:对碳青霉烯耐药重要是由外膜蛋白OprD体现减少或缺失引发，与IMP、VIM金属酶无关。邹德胜等[26]通过对26株耐亚胺培南铜绿假单胞菌进行oprD2基因的PCR扩增,显示其中有20株为膜孔蛋白oprD2基因缺失。这一成果阐明oprD2基因的缺失应当是亚胺培南对铜绿假单胞菌不起作用的重要因素[27]。2.3氨基糖苷类修饰酶与16SrRNA甲基化酶的产生酶修饰是氨基糖苷类抗生素最常见的耐药机制，经酶修饰的抗生素与细菌16SrRNA上的A位点的结合力下降，从而造成药品抗菌活性的丧失[31]。根据其修饰功效的不同可分为3类，即氨基糖苷磷酸转移酶(aminoglycosidephosphotransferases，APH)、氨基糖苷乙酰转移酶(Aminoglycosideacetyltransferases，AAC)和氨基糖苷类核苷转移酶(aminoglycosidenucleotidyltransferases，ANT)[32]。铜绿假单胞菌含有编码这3类修饰酶的基因[33]。16SrRNA甲基化酶是近年来发现的一种新的由质粒介导的耐药机制，与临床上常见的氨基糖苷类修饰酶不同，氨基糖苷类修饰酶含有底物特异性，因此，细菌同时对多个氨基糖苷类抗生素产生持续耐药比较少见，而甲基化酶修饰的是全部氨基糖苷类共同的作用位点，一旦修饰发生，现在使用的一切氨基糖苷类抗生素都将失去作用，并且耐药菌的MIC往往高达512～1024mg/L。这种新的耐药机制的出现，打破了以往的认识，微生物学家们惊呼“前所未有的”危险的氨基糖苷类耐药菌株很快将在全球播散，必须引发临床高度关注。年，日本学者Yokoyama等对1株分离自1997年的铜绿假单胞菌的研究中，发现其对阿贝卡星（卡那霉素的衍生物）高度耐药，介导铜绿假单胞菌对阿贝卡星高度耐药的是这种新的氨基糖苷类耐药机制——16SrRNA甲基化酶，(RmtA)，并且该酶的编码基因和超广谱β-内酰胺酶CTX-M-3编码基因位于同一接合性质粒上[30]。2.4铜绿假单胞菌生物膜的形成生物被膜是细菌为适应自然环境而形成的，系指细菌吸附于生物材料或机体腔道表面，分泌多糖基质、纤维蛋白、脂蛋白等，将其本身包绕其中形成的膜样物[36]。铜绿假单胞菌为临床产生细菌生物被膜有关感染最常见的致病菌,铜绿假单胞菌在体内粘膜、多个插管、病房物表等上形成的生物膜,这与铜绿假单胞菌引发的感染,特别是肺部感染,很难被去除,经常造成感染的重复发作有很大的关系。铜绿假单胞菌在湿润环境下,浮游细菌可吸附于固体的表面,形成微菌落,并合成分泌大量胞外多糖基质,进而微菌落分化为由胞外多糖包裹的成熟生物膜[34]。粘液型铜绿假单胞菌，其重要成分藻酸盐是形成生物被膜的重要基础，藻酸盐使细菌牢固粘附于肺上皮表面形成生物被膜，首先可抵抗单核—巨噬细胞的吞噬作用，另首先可抵制抗菌药品的杀灭作用[37]。而非粘液型的铜绿假单胞菌在渗入压高、氯化钠较多、磷酸盐少的条件下，容易转化为粘液型[38]。铜绿假单胞菌生物被膜的形成是难治性肺部感染的重要因素，死后肺组织的电镜分析亦显示铜绿假单胞菌在患者的肺部形成微菌落[39]。3.药品研究3.1克制铜绿假单胞菌主动外排铜绿假单胞菌广泛耐药的重要因素是主动外排系统，而解决其广泛耐药的重要方法是克制主动外排．但是许多在体外活性良好的外排泵克制剂由于安全性、特异性、机制明确性等诸多问题并未能像β-内酰胺酶克制剂在临床广泛应用．但我们相信通过对多个克制外排办法的研究，特别是对基因靶向干预治疗研究的不停进一步和发展，能够在很快的将来较好地解决多药外排介导的抗菌药品耐药问题，并获得较为抱负的效果。3.2干扰QS系统QS(quorumsensing)是含有进化优势的BF信息传导机制,代表了细菌为控制能感应本身密度的特殊基因而专用的一种信息交流系统,干扰和破坏QS是从基因分子水平防治生物膜的研究热点。研究发现铜绿假单胞菌生物被膜QS的克制物能够克制生物被膜的形成。Kim等[35]通过模拟呋喃酮的构造,合成一系列的5-氧-2,5二氢呋喃-3-烃基类似物,这些合成物克制QS的程度从20%～90%不等,进而克制生物被膜的形成。实验前模型中预测的QS受体LasR与克制物之间的结合能和通过实验得到的数据高度一致,为解释干扰QS的机制提供了科学根据。C8-CPA(N-Octanoylcyclopentylamide)是铜绿假单胞菌PAO1信号感应系统的克制物。通过合成一系列C8-CPA的构造类似物来研究对PAO1的克制能力。研究发现:克制能力的强弱与克制物的长度和环状构造亲密有关。在合成的类似物中,C10-CPA(N-Decanoylcyclopentylamide)克制了毒力因子如弹性酶、绿脓菌素和鼠李糖脂的产物,是PAO1生物被膜的最强克制物[8]。3.3从中药中筛选铜绿假单胞菌生物膜的克制物孔晋亮等[40]通过实验证明了黄芩水煎液对铜绿假单胞菌黏附力及生物膜形成都有克制作用,作用效果与红霉素原则粉剂相称。陈一强[41]等的研究成果表明金银花能破坏铜绿假单胞菌的早期和成熟生物膜,对头孢他啶去除生物膜内铜绿假单胞菌有增效作用。与红霉素对照,对于早期生物膜,两者的破坏效果及增效作用相仿;而对于成熟BF则金银花的破坏效果及增效作用比红霉素更为明显。总而言之，我们能够从中药中去寻找治疗铜绿假单胞菌引发的感染的，有效成分，由于中药在治疗某些呼吸系统的疾病和烧伤病人的感染中，有它独到的疗效，能够去研究它对铜绿假单胞菌主动外排系统的基因靶向干预、干扰QS系统和对生物膜的克制等方面，能够搞清中药治疗铜绿假单胞菌引发的感染性疾病的作用机理，也可在其中找到有效成分来治疗铜绿假单胞菌引发的感染性疾病。参考文献：[1]KENDRAP.RUMBAUGH,JOHNA.GRISWOLD,andBARBARAH.IGLEWSKI.1999.ContributionofQuorumSensingtotheVirulenceofPseudomonasaeruginosainBurnWoundInfections.INFECTIONANDIMMUNITY,Nov.1999,p.5854-5862.[2]FujitaniS,SunHY,YuVL,PneumoniaduetoPseudomonasaeruginosa:partI:epidemiology,clinicaldiagnosis,andsource.Chest.Apr;139(4):909-19.[3]THOMASB.MAY,DEANSHINABARGER,ROMILLAMAHARAJ.AlginateSynthesisbyPseudomonasaeruginosa:aKeyPathogenicFactorinChronicPulmonaryInfectionsofCysticFibrosisPatients.CLINICALMICROBIOLOGYREVIEWS,Apr.1991,p.191-206.[4]严莲珍,仲华,刘祖德.呼吸道感染患者铜绿假单胞菌耐药性分析[J].中华医院感染学杂志,,21(3):583-584.[5]王昌明,王晨,何宗广.铜绿假单胞菌致呼吸机有关性肺炎的临床分析[J].中华医院感染学杂志,21(2):376-378.[6]黄大明.慢性阻塞性肺疾病并发社区获得性肺炎病原菌分布及耐药性分析[J]中华医院感染学杂志,2(13):1968-1970.[7]胡家安,高蓓莉,邓伟吾,等.医院内获得性支气管肺感染病原菌及耐药率调查[J].上海第二医科大学学报,1998,18(1):87.[8]VisengarwalaF,IyerNG,HamillRJ,etal.Ventilatorassociatedpneumonia[J].IntJAntimicrobAgents,1998,10(3):191.[9]陈钦,郭海英,周新,等.呼吸机有关肺炎病原菌的调查研究.中华医院感染学杂志,,10(2):102～103.[10]MurphyTF,BrauerAL,EschbergerK,etal.Pseudomonasaeruginosainchronicobstructivepulmonarydisease.AmJRespirCritCareMed;177:853-60.[11]LauraMartínez-Solano1,MaríaD，Macia,AliciaFajardo，etal.ChronicPseudomonasaeruginosaInfectioninChronicObstructivePulmonaryDisease.ClinInfectDis.Dec15;47(12):1526-33.[12]肖光夏.医院内感染的两个问题[J].中华烧伤杂志,,20(1):4-5.[13]戴志,凌杨,旭崔岚.烧伤病区抗菌药品的应用状况及细菌耐药性分析[J].中国药师,,11(10):1233.[14]张志民,夏成德,薛继东.烧伤病房细菌学调查及耐药性分析[J].中国当代药品应用,,16(3):109.[15]BarneaY,CarmeliY,GurE,etal.EfficacyofantibodiesagainsttheN-terminalofPseudomonasaeruginosaflagellinfortreatinginfectionsinamurineburnwoundmodel.PlastReconstrSurg.Jun;117(7):2284-91.[16]衣美英，王鹏远，黄汉菊，等．外排泵高体现和外膜蛋白缺失在铜绿假单胞菌对碳青霉烯耐药中的作用［J］．中华医学杂志，，86(7):457-461．[17]李良，张焕萍，王秋婷．铜绿假单胞菌主动外排系统MexAB-OprM与碳青霉烯类药品耐药的关系研究［J］．中国卫生检查杂志，，20(2):243-245．[18]吕火祥，孙明洪，刘建栋，等．协同法过筛检测金属β2内酰胺酶的研究［J］．中华检查医学杂志，，25(4):232-235．[19]YongD，LeeK，YumJH，etal．Imipenem-EDTADiskMethodforDifferentiationofMetallo-beta-Lactamase-ProducingClinicalIsolatesofPseudomonasspp．andAcinetobacterspp［J］．JClinMicrobiol，，40(10):3798-3801．[20]GirlichD,NaasT,NordmannP.BiochemicalcharacterizationofthenaturallyoccurringoxacillinaseOXA-50ofPseudomonasaeruginosa.AntimicrobAgentsChemother,,48(6):2043-2048.[21]PelegAY,FranklinC,WaltersLJ,etal.OXA58andMP4carbapenemhydrolyzingbetalactamasesinanAcinetobacterjuniibloodcultureisolatefromAustralia[J].AntimicrobAgentsChemother,,50(1):399.[22]白海霞,郑伟.耐亚胺培南铜绿假单胞菌耐药性分析[J].中国实验诊疗学,,12(11):1463.[23]徐卫,金嵘,石娜,等.医院感染铜绿假单胞菌产超广谱β-内酰胺酶基因型研究[J].检查医学,,24(1):10.[24]赵廷坤周岐新凌保东.铜绿假单胞菌产β-内酰胺酶研究进展.国际流行病学传染病学杂志，33（3）：211-214.[25]LivermoreDM.OfPseudomonas,porins,pumpsandcarbapenems[J].JAntimicrobChemother,,47(3):247-250.[26]邹德胜,吴志明.208株铜绿假单胞菌的耐药性分析及oprD2基因的检测.中华医院感染学杂志,21(4):229-230.[27]赵书平,姜梅杰,郝巧光.耐亚胺培南铜绿假单胞菌有关耐药基因的研究[J].浙江检查医学,,6(2):42-44.[28]GatesML,SandersCC,GoeringRV,etal.EvidenceformultipleformsoftypeIchromosomalβ-lactamaseinPseudomonasaeruginosa[J].Antimicrob.AgentsChemother,1986,30(2):453-457.[29]BaggeN,CiofuO,HentzerM,etal.Constitutivehighexpressionofchromosomalβ-lactamaseinPseudomonasaeruginosacausedbyanewinsertionsequence(IS1669)locatedinampD[J].AntimicrobAgentsChemother,,46(11):3406-3