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文档简介
ICS07.080GB/T33526—2017转基因植物产品数字PCR检测方法中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局IGB/T33526—2017本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。本标准由全国生化检测标准化技术委员会(SAC/TC387)提出并归口。1GB/T33526—2017转基因植物产品数字PCR检测方法本标准规定了转基因成分检测的数字PCR方法。PCR检测。本标准所能达到的检测低限为0.1%(质量分数)。2规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法GB/T19495.1转基因产品检测通用要求和定义GB/T19495.3转基因产品检测核酸提取纯化方法GB/T19495.7转基因产品检测抽样和制样方法3.1转录自18srDNA,是细胞核糖体的组分之一。3.2CaMV35s启动子基因CaMV35spro来自花椰菜花叶病毒(Cauliflowermosaicvirus,CaMV)的35s启动子。3.3来自胭脂碱合成酶基因NOS的终止子。4原理数字PCR其技术原理是通过将原始PCR反应体系进行分割,进而对所有小的反应体系进行扩增现阶段数字PCR的实现形式包括芯片式数字PCR与微滴式数字PCR两种。其中芯片式数字这种分割方式的实验成本相对较高;微滴式数字PCR平台通过产生微小油包水体系实现反应体系的分2GB/T33526—2017本标准针对通用筛选元件CaMV35s启动子和NOS终止子设计选取特异性引物和探针进行数字18s-F:5'-CCTGAGAAACGGCTACCAT-3'18s-R:5'-CGTGTCAGGATTGGGTAAT-3′18s-P:5'-VIC-TGCGCGCCTGCTGCCTTCCT-BHQ1-3′p35s-F:5'-ATTGATGTGATATCTCCACTGACGT-3′p35s-R:5'-CCTCTCCAAATGAAATGAACTTCCT-3'p35s-P:5'-VIC-CCCACTATCCTTCGCAAGACCCTTCCT-BHQ1-3′TNOS-F:5'-ATCGTTCAAACATTTGGCA-3'TNOS-R:5'-ATTGCGGGACTCTAATCATA-3'TNOS-P:5'-VIC-CATCGCAAGACCGGCAACAGG-BHQ1-3'6.3数字PCR扩增仪。3GB/T33526—20176.9不同量程移液器以及配套吸头如下:按照GB/T19495.1和GB/T19495.7的规定执行。按照GB/T19495.1和GB/T19495.3的规定执行。7.4DNA模板制备按照GB/T19495.1和GB/T19495.3的规定执行。7.5.1试样数字PCR反应每个试样内标准基因数字PCR反应设置3个平行。并按照表1的组分和终浓度配置数字PCR反应体系。反应体系配置完成后,进行反应体系的分割,其中芯片法数字PCR通过微流控芯片实现本步骤,微滴法数字PCR通过形成油包水结构实现体系的分割。该步骤按照不同数字PCR平台的说明书进行操作。数字PCR反应的有效分割体系数不得低于理论分割体系数的60%。试剂终浓度体系2×反应Mix"20μmol/LzSSIIb-F/p35s-F/TNOS-F20μmol/LzSSIIb-R/p35s-R/TNOS-R20μmol/LzSSIIb-P/p35s-P/TNOS-P50ng/μLDNA模板12.5ng/μL水总体系推荐市面上现售的数字PCR平台进行实验,并针对市面上现售的不同数字PCR平台,依据说明书调整反应体系的组分和最终体积,并保证表中所列组分的终浓度不变。4GB/T33526—2017体系分割完成后,进行数字PCR反应。荧光分析步骤采用VIC单荧光通道,反应程序如表2表2数字PCR反应程序步骤温度持续时间循环数热激活50℃1变性退火延伸60℃注:不同PCR反应平台可以根据说明书对热启动步骤程序进行修改,但是不能对扩增程序进行修改。每个试样外源基因数字PCR反应设置3个平行。外源基因扩增所用反应体系与反应程序与7.5.1.1相同,扩增所使用的引物探针为5.4与5.5所述引物探针。7.5.2对照数字PCR反应根据数字PCR结果中扩增曲线的基线或者体系中阴性分割体系的终点荧光值设定荧光的阈值限。阈值限需要对阴性和阳性扩增结果进行明显的区分。阴性对照组只有内标准基因的扩增,空白对照组没有任何扩增现象,这表明数字PCR反应体系正8.3.1内标准基因得到了明显的扩增,并且外源p-35s或NOS基因的任何一个出现明显的扩增现象,阳性扩增体系内扩增曲线形状良好或者其终点荧光信号值超过荧光阈值,这表明试样中检测出了p-35s8.3.2内标准基因得到了明显的扩增,且其扩增曲线形状良好并超过阈值限,而p-35s或T-NO
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