术后发热患者诊疗规范

术后发热患者诊疗规范

手术后发热是手术后常见症状，多因术后肺不张、切口

感染、器官及深部感染、输血反应、导管有关的感染、尿路

感染及与血栓性发热等引起。

一、体格检杳

切口部位、手术部位；

全身系统性查体：浅表淋巴结、心肺腹。

二、辅助检查

1.一般检查：血常规、尿常规、便常规；

2.感染相关指标检查：降钙素原、C反应蛋白检查；

3.病原学检查：血、尿、痰、切口分泌物、引流液、各

种导相关培养+药敏试验；

4.感染部位定位检查：

根据患者病情，完善影像学检查，寻找感染部位：

(1)疑有肺部感染，完善胸部X线(CT)检查。

(2)疑有腹部及盆腔器官感染者，做B超或腹部CT检

查。

(3)疑有软组织感染：局部超声检查；

(4)疑有中枢神经系统感染，请神经内科会诊，明确

是否需腰穿脑脊液及神经系统影像学检查；

外周血培养、导管血培养、留置导管尖端培养，明确是

否存在血流感染，或导管相关血流感染。

根据上述检查检验结果，结合发热与手术间隔的时间、

发热程度，患者的症状体征，作出诊断。

治疗：

1.病因治疗，根据患者发热病因，进行相应的治疗。

2.对症治疗。

3.监测患者生命体征及出入量的情况，警惕脓毒性休克。

如发生脓毒性休克，根据救治原则进行积极治疗。

附件：1.血液细菌培养、真菌培养

2.下呼吸道标本（痰、支气管肺泡灌洗液、支气

管灌洗液、保护性毛刷、肺穿刺等）

附件1：

血液细菌培养、真菌培养

一、临床采集指征

患者出现下列临床症状和（或）实验室检查结果中的一

种及以上时可作为采集血培养的重要指征：体温〉38。（2或

＜36℃；寒战；外周血白细胞计数增多（计数＞10.0X109/L,

特别有“核左移”时）或减少（计数＜4.0X109/L）；呼吸

频率＞20次/分或动脉血二氧化碳分压（PaC02）＜32mmHg；

心率＞90次/分；皮肤黏膜出血；昏迷；多器官功能障碍；

血压降低；炎症反应指标或病原体抗原如C反应蛋白

（C-reactiveprotein,CRP）、降钙素原（Procalcitonin,

PCT）、1,3-B-D-葡聚糖（G试验）等升高；严重的局部感染

（如脑膜炎、心内膜炎、肺炎、肾盂肾炎、腹部术后感染等）。

二、采集时机

1.寒战或发热初起，抗菌药物应用之前采集最佳。

2,对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前，抗菌

药物浓度最低时采集。

3.血培养抽取宜同时或短时间内于不同穿刺点进行采

集（感染性心内膜炎时除外），若怀疑持续性菌血症（如感

染性心内膜炎等），则应间隔抽血。

4•急性感染性心内膜炎：宜于抗微生物药物治疗前，在

30分钟内不同部位采集2~3套血培养，如24小时内培养阴

性，宜加做2套血培养。亚急性感染性心内膜炎:宜每隔0.5〜

1小时采集1套血培养，从3个不同部位共采集3套血培养，

如24小时内培养阴性，宜加做2套血培养。

三、采集容器

血培养仪配套血培养瓶。

四、建议的抽血量

1.新生儿和儿童：1kg以上的儿童均要采集双套血培养,

具体要求见下表：

«1儿童血培养采血量和采集套数

采血量用于献的占总血量的

体市:（侬总血量（ml）

第一套血培养（ml）第二套1储养（ml）总■量（ml）百分数（%）

450-991~2（需氧）建议不做1-21.0-4.0

1<~2100~2001~2（需氧）1~2（需氧）272.（M.0

2<~12.7>2001~3（需氧）♦3情H）2M1.0-3.0

12,736.3>8005~10（需气+厌气）5~KX需氧+厌氧）10~2013-2.5

>36.3>22002Mo（需氧+厌氧）2Mo（需氧+厌氧）40-601.8~2.7

2.成人：成人每次需采集2~3套血培养，每套从不同

部位，以去除表面的脏物和油脂，并使其自然晾干，时间大

约在30s以上；②使用遥-2%碘酊作用30s,或1%碘伏作用

60s,从穿刺点向外画圈消毒，消毒区域直径达3cm以上；

③75%乙醇擦拭碘酊或碘伏消毒过的区域进行脱碘。

注：对碘过敏的患者，在第一步基础上再用75%乙醇消

毒60s,待酒精挥发干燥后采血。

一步法：0.5%葡萄糖酸洗必泰作用30s或70%异丙醇消

毒后自然干燥

(2)儿童采血：2个月以内(含2个月)患儿：70%异

丙醇消毒后自然干燥；或75%乙醇棉签/球消毒30s后，再

用第二个75%乙醇棉签/球擦拭，等待完全干燥。

2个月以上的患儿：采用一步法或三步法消毒。

一步法：0.5%葡萄糖氯己定作用30s；或70%异丙醇

消毒后自然干燥。

三步法：(1)75%乙醇擦拭静脉穿刺部位，待干30s以

上；(2)1限2%碘酊或10%碘伏擦拭静脉穿刺部位，碘酊作用

30s或碘伏作用90^120s；(3)75%乙醇脱碘60s,待挥

发干燥后采血。

2.培养瓶的消毒：弃去血培养瓶顶塑料帽，用75%乙醇

或70%异丙醇消毒橡胶塞，等待自然晾干，作用时间为60so

3.将采集的血液注入血培养瓶中，然后轻轻颠倒混匀以

防止血液凝固。

4.在血培养瓶上贴上患者信息标签，应包括患者姓名、

检验号、采集部位等。

5.当抽血量2推荐的培养血量时，应先接种厌氧瓶再接

种需氧瓶；当抽血量〈推荐的培养血量时，应优先接种需氧

瓶，剩下的血液再接种厌氧瓶。

八、标本运送及保存

血培养瓶应该在2h内送到实验室。运送过程中，应保

证血培养瓶不被破损。装有标本的血培养瓶应该室温保存,

不可冷藏或冷冻。在运往实验室的途中如果天气寒冷，应采

取一定的保温措施。

九、标本拒收标准

1.无标记或标记错误。

2,血培养瓶已破碎、损坏或渗漏。

附件2：

下呼吸道标本

（痰、支气管肺泡灌洗液、支气管灌洗液、

保护性毛刷、肺穿刺等）

下呼吸道标本可做：细菌培养、真菌培养、细菌涂片、

真菌涂片、抗酸汗菌涂片、涂片找卡氏肺抱子菌。

一、临床采集指征

L咳嗽、咳痰：痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色

胶脓样痰。

2.咯血：肺结核病人常痰中带血。

3.呼吸困难、发热、胸痛：当炎症病变累及壁层胸膜时，

会发生胸痛。

二、采集时间

1.以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易于采集。且清

晨痰含有的病理成分较多。会增加培养的阳性率。

2.痰涂片查抗酸杆菌一般要求患者分三天留三次痰。

三、采集容器

一次性无菌留痰盒。

四、采集方法

L咳痰：咳痰前，向患者详细说明如何正确留取痰标本;

请患者用清水漱口，并指导患者咳出深部痰（戴假牙的患者

应先摘掉假牙）；留取的痰液不少于1ml,盖好盖子并拧紧,

以免溢洒。

2.诱导痰：当咳嗽无痰或少痰时，可采集诱导痰；患

者先刷牙（口腔砧膜、舌头和牙龈），勿用牙膏；再用无菌

水或生理盐水漱口；用超声雾化器，患者吸入3%NaCl约

3mL-5mL；用无菌螺帽宽口容器收集诱导痰标本，留取

的痰液不少于1mlo

注：诱导痰标本只适用于检测卡氏肺抱子菌和结核分枝

杆菌，对其他病原菌检出效果差。

3.气管吸出物：仅当气管插管的患者出现肺炎症状时

（如发热或浸润），可采集气管吸出物标本，留取的痰液不

少于1ml。从气管中吸痰，用无菌容器留取送检。

4.气管镜标本：采集气管镜标本注意事项：

气管镜可采集到感染部位高质量的标本，包括支气管肺

泡灌洗液（BAL）、支气管灌洗液标本（BW）、保护性毛刷标

本（PSB）及支气管穿刺活检标本，均应由呼吸科医师或经

培训医师采集。为防止污染，应采用吸入麻醉剂，勿从工作

腔中吸取灌洗液标本。

①支气管肺泡灌洗液：将支气管镜顶端紧密嵌顿在目标

支气管段或亚段开口，末端连接无菌样本采集杯和负压吸

引器。经操作孔道分5次快速注入总量为60mL~100mL

的37°C或室温灭菌生理盐水，每次灌入20mL〜50mL生

理盐水后，以合适的负压（推荐小于-100mmHg的负压）

吸引回收灌洗，可直接使用标本采集器送检，也可在无菌操

作下吸取10mL〜20mLBALF（25mL）到带螺帽无菌容器

中，立即送检。

注：每次回吸收量不低于灌入量的5%（总回收率以N30%

为宜）。若每次的回收率均＜5%,则要及时停止灌洗以免液体

大量潴留于肺内。儿科患者只能灌入（1mL〜2mL）/kg,

通常儿童的回收量不超过10mL,大于10mL的儿童标本可

离心提高阳性率。

②支气管毛刷：将检查用毛刷插入支气管镜，推进毛刷

直至推出护套，刷取标本后将刷子抽回护套，取出整个毛刷，

用无菌剪刀揩刷子头剪下，放入1mL生理盐水或乳酸钠林

格溶液中，立即送实验室。

③支气管吸引物：通过支气管镜直接抽吸呼吸道较大管

道内的分泌物。

注：支气管镜取材的标本会受到上呼吸道菌群的污染，

宜进行质量评估；支气管毛刷标本大概含有0.001mL到

0.01mL的分泌物，为避免分泌物干燥引起细菌死亡，毛刷

迅速置于1mL的无菌盐水中；BALE标本必须定量培养，

定量结果与临床的相关性优于痰标本；麻醉剂可抑制细菌

生长，也会影响标本的质量。

五、标本运送及保存

用无菌防渗漏容器收集标本，贴好标本条码后，应在2h

内（室温）送至微生物实验室。

六.标本拒收标准

1.标本标记错误或无患者姓名的标本。

2.