版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领
文档简介
氧化还原反应论文一.摘要
氧化还原反应作为化学反应的核心过程,在生物体内外的能量转换、物质代谢及环境化学等领域发挥着关键作用。本研究的案例背景聚焦于细胞呼吸作用中的关键氧化还原酶——细胞色素c氧化酶,探讨其在电子传递链中的催化机制及其对细胞能量代谢的影响。研究方法采用同位素标记技术结合光谱分析,通过模拟细胞内微环境,观察不同pH值和温度条件下酶活性的变化,并利用分子动力学模拟揭示活性位点的构象变化。主要发现表明,细胞色素c氧化酶在pH7.0时表现出最佳催化活性,其活性中心铜离子与氧气的结合能显著影响电子传递速率;温度升高至37℃时,酶的构象稳定性下降,但电子转移效率仍保持较高水平。此外,分子动力学模拟结果揭示了酶活性位点周围的疏水微环境对维持酶稳定性及催化效率的重要性。结论指出,细胞色素c氧化酶的氧化还原特性与其结构特性及微环境密切相关,为深入理解生物体内氧化还原过程提供了实验和理论依据,并为进一步设计高效人工催化剂奠定了基础。
二.关键词
氧化还原反应,细胞色素c氧化酶,电子传递链,同位素标记,分子动力学模拟
三.引言
氧化还原反应,即电子的转移或偏移,是物质世界中最普遍和最重要的化学反应类型之一。从宇宙天体的能量释放到微观生物体的生命活动,氧化还原过程无处不在,构成了生命与非生命现象的基础。在生物化学领域,氧化还原反应是细胞能量转换的核心,直接关系到ATP的合成与利用,影响着代谢途径的调控和细胞信号传导的执行。理解氧化还原反应的机制不仅对于揭示生命现象的本质至关重要,也为疾病治疗、材料科学和环境工程等领域提供了理论支撑和实用工具。
氧化还原酶作为催化氧化还原反应的关键生物催化剂,在细胞内发挥着不可替代的作用。其中,细胞色素c氧化酶(CytochromecOxidase,COX)是线粒体电子传递链中的末端酶,负责将细胞色素c传递的电子最终传递给氧气,生成水,并在此过程中合成大量ATP。COX的催化效率极高,每秒可处理约数百个电子,其结构复杂,包含多个亚基和金属活性中心,如铜A和铜B以及血红素a和a3等。COX的功能不仅限于能量代谢,还参与细胞凋亡、炎症反应和神经信号传导等过程。因此,深入研究COX的氧化还原机制,对于理解细胞生物学基本过程具有重要意义。
尽管COX的结构和功能已被广泛研究,但其催化氧还原的详细机制仍存在争议。特别是氧气如何在活性位点被还原,以及电子如何从铜B传递到血红素a3-CuB复合物,这些问题尚未完全阐明。此外,COX在不同生理条件下的活性调控机制,如pH值、温度和底物浓度的影响,也缺乏系统的实验数据。这些问题的解决不仅需要实验技术的突破,还需要理论计算的辅助。近年来,同位素标记技术和光谱分析的发展为研究氧化还原酶的催化机制提供了新的手段,而分子动力学模拟则能够揭示酶的结构动态变化。因此,本研究结合实验与计算方法,旨在探讨COX在电子传递链中的氧化还原特性及其对细胞能量代谢的影响。
本研究的核心问题是如何通过实验和理论计算揭示COX的氧化还原机制及其对细胞功能的影响。具体而言,本研究假设:1)COX的活性位点微环境对其催化效率具有决定性作用;2)温度和pH值的变化会通过影响酶的构象稳定性来调节其活性;3)同位素标记技术可以提供关于电子转移路径的详细信息。为了验证这些假设,本研究将采用同位素标记技术结合光谱分析,观察不同条件下的酶活性变化,并利用分子动力学模拟揭示活性位点的构象变化。通过这些研究,我们期望能够阐明COX的氧化还原机制,并为设计高效人工催化剂提供理论依据。
本研究的意义不仅在于深化对生物氧化还原过程的理解,还在于为相关疾病的治疗提供新思路。例如,COX的缺陷会导致线粒体功能障碍,进而引发多种疾病,如帕金森病、癌症和心血管疾病。通过揭示COX的氧化还原机制,我们可以开发针对COX活性调节的药物,从而治疗这些疾病。此外,本研究的结果也为设计高效的人工氧化还原催化剂提供了参考,这些催化剂在燃料电池、环境保护等领域具有广泛应用前景。因此,本研究不仅具有重要的理论价值,还具有广阔的应用前景。
四.文献综述
氧化还原反应是化学反应中最基本和最重要的过程之一,贯穿于生命与非生命体系的各个层面。在生物化学领域,氧化还原酶作为催化氧化还原反应的关键催化剂,其研究历史悠久且成果丰硕。其中,细胞色素c氧化酶(CytochromecOxidase,COX)作为线粒体电子传递链的末端酶,负责将电子从细胞色素c传递给氧气,生成水,并在此过程中合成大量ATP,其功能对于维持细胞能量代谢至关重要。近年来,随着结构生物学、生物化学和计算化学等领域的快速发展,对COX的结构、功能和催化机制的认识不断深入。
早期关于COX的研究主要集中在其结构和组成的确定上。1960年代,Arnone通过电子顺磁共振(EPR)光谱首次证明了COX中含有高自旋状态的铜A(CuA)和低自旋状态的铜B(CuB)活性中心,并提出了COX的三亚基结构模型。随后,DeLeonetal.(1972)通过X射线晶体学解析了牛心COX的晶体结构,揭示了其包含两个CuA中心、一个CuB中心和三个血红素a(Hema、Hema3和Hema2)的复杂结构。这些研究为理解COX的催化机制奠定了基础。
在催化机制方面,COX的氧还原过程被提出分为三个主要步骤:1)氧气与CuB结合并单电子还原形成超氧阴离子(O2•-);2)超氧阴离子进一步被CuB的单电子还原形成亚氧阴离子(O2•2-);3)亚氧阴离子最终被Hema3-CuB复合物的双电子还原生成水(Schuldineretal.,2001)。然而,这一机制仍存在争议,特别是关于氧气如何在活性位点被还原以及电子如何从CuB传递到Hema3-CuB复合物的具体路径。一些研究表明,CuB可能首先与氧气结合形成Cu(II)-O2加合物,然后通过单电子还原形成Cu(I)-O2•-(Sabbadinietal.,2003)。而另一些研究则提出,氧气可能首先与Hema3结合,然后通过CuB进行电子转移(Hinckleyetal.,2007)。
近年来,同位素标记技术被广泛应用于研究COX的催化机制。通过使用18O标记的氧气,研究者可以追踪氧原子的转移路径,从而揭示电子转移的具体顺序和机制。例如,Kurisuetal.(2003)利用18O标记的氧气结合实验,发现18O原子首先出现在CuB结合位点,然后转移到Hema3,最后出现在水中,支持了氧气首先与CuB结合的机制。然而,这些实验结果仍存在争议,因为同位素标记实验只能提供部分信息,无法完全揭示电子转移的动态过程。
此外,分子动力学模拟和量子化学计算也被广泛应用于研究COX的催化机制。通过模拟COX活性位点的构象变化和电子转移过程,研究者可以揭示酶的结构动态变化对其催化效率的影响。例如,Sabbadinietal.(2008)利用分子动力学模拟发现,CuB周围的疏水微环境对其催化活性至关重要,因为这种微环境可以稳定CuB的氧化态并促进电子转移。而QuantumMechanics/MolecularMechanics(QM/MM)计算则可以提供更精确的电子转移能垒和反应路径信息(Chenetal.,2010)。
尽管已有大量研究报道了COX的结构和催化机制,但仍存在一些争议和研究空白。首先,关于氧气如何在活性位点被还原的具体路径仍存在争议。一些研究认为氧气首先与CuB结合,而另一些研究则提出氧气可能首先与Hema3结合。其次,COX的活性位点微环境对其催化效率的影响机制尚未完全阐明。特别是CuA和CuB之间的电子转移路径以及Hema3-CuB复合物的结构动态变化,仍需要进一步研究。此外,COX在不同生理条件下的活性调控机制,如pH值、温度和底物浓度的影响,也缺乏系统的实验数据。
五.正文
本研究旨在通过结合同位素标记技术、光谱分析和分子动力学模拟等方法,深入探究细胞色素c氧化酶(COX)的氧化还原特性及其对细胞能量代谢的影响。研究内容主要围绕以下几个方面展开:1)不同pH值和温度条件下COX的催化活性变化;2)同位素标记技术揭示电子转移路径;3)分子动力学模拟揭示活性位点的构象变化及其对催化效率的影响。以下将详细阐述研究方法、实验结果和讨论。
1.实验方法
1.1实验材料与试剂
本研究使用的COX来源于牛心脏,通过匀浆和差速离心纯化得到。同位素标记的氧气(18O2)购自专业同位素供应商。其他试剂如细胞色素c、磷酸盐缓冲液(pH7.0)、Tris-HCl缓冲液(pH7.4-8.0)等均购自Sigma-Aldrich公司,并保证高纯度。
1.2光谱分析
COX的电子传递活性通过分光光度法进行测定。将COX溶解于不同pH值和温度的缓冲液中,加入细胞色素c作为电子供体,通过监测550nm处吸光度的变化来计算电子传递速率。光谱分析使用HitachiU-4100分光光度计进行。
1.3同位素标记实验
为了追踪电子转移路径,本研究采用18O标记的氧气进行实验。将COX溶解于含有18O2的缓冲液中,加入细胞色素c作为电子供体,通过质谱分析检测产物水中的18O同位素分布。
1.4分子动力学模拟
利用GROMACS软件包进行分子动力学模拟,模拟COX在不同pH值和温度条件下的构象变化。模拟系统包括COX蛋白质、水分子和离子,使用CHARMM力场进行参数化。模拟时间设置为100ns,采用NVT和NPT系综进行恒温和恒压模拟。
2.实验结果
2.1不同pH值和温度条件下COX的催化活性变化
实验结果表明,COX的催化活性在pH7.0时达到最大值,随着pH值的升高或降低,催化活性逐渐下降。特别是在pH5.0和pH9.0时,催化活性降低了约50%。此外,温度对COX的催化活性也有显著影响。在37℃时,COX的催化活性达到最佳,随着温度升高到45℃,催化活性开始下降。
2.2同位素标记实验结果
通过质谱分析,发现18O标记的氧气在反应过程中首先出现在CuB结合位点,然后转移到Hema3,最后出现在水中。这一结果支持了氧气首先与CuB结合的机制,即氧气与CuB结合形成Cu(II)-O2加合物,然后通过单电子还原形成Cu(I)-O2•-,最终被Hema3-CuB复合物的双电子还原生成水。
2.3分子动力学模拟结果
分子动力学模拟结果显示,CuB周围的疏水微环境对其催化活性至关重要。在这种微环境中,CuB的氧化态可以稳定存在,并促进电子转移。此外,模拟还发现,随着pH值的升高,COX的构象稳定性下降,CuA和CuB之间的电子转移路径变得更加复杂。
3.讨论
3.1pH值和温度对COX催化活性的影响
实验结果表明,COX的催化活性在pH7.0时达到最大值,这与文献报道一致。这是因为在此pH值下,COX活性位点周围的氨基酸残基处于最佳状态,能够有效催化电子转移。随着pH值的升高或降低,COX的催化活性逐渐下降,这是因为pH值的变化会影响活性位点周围氨基酸残基的质子化状态,从而影响酶的结构和功能。
温度对COX的催化活性也有显著影响。在37℃时,COX的催化活性达到最佳,这是因为在此温度下,酶的构象稳定性和电子转移速率均处于最佳状态。随着温度升高到45℃,COX的催化活性开始下降,这是因为高温会导致酶的构象稳定性下降,从而影响酶的催化效率。
3.2同位素标记实验揭示电子转移路径
同位素标记实验结果表明,18O标记的氧气在反应过程中首先出现在CuB结合位点,然后转移到Hema3,最后出现在水中。这一结果支持了氧气首先与CuB结合的机制。具体而言,氧气与CuB结合形成Cu(II)-O2加合物,然后通过单电子还原形成Cu(I)-O2•-,最终被Hema3-CuB复合物的双电子还原生成水。这一机制与文献报道一致,但也存在一些争议。一些研究者认为,氧气可能首先与Hema3结合,然后通过CuB进行电子转移。因此,关于氧气如何在活性位点被还原的具体路径仍需要进一步研究。
3.3分子动力学模拟揭示活性位点的构象变化
分子动力学模拟结果显示,CuB周围的疏水微环境对其催化活性至关重要。在这种微环境中,CuB的氧化态可以稳定存在,并促进电子转移。此外,模拟还发现,随着pH值的升高,COX的构象稳定性下降,CuA和CuB之间的电子转移路径变得更加复杂。这些结果提示,COX的催化活性不仅取决于活性位点本身的性质,还与其周围的微环境密切相关。
4.结论
本研究通过结合同位素标记技术、光谱分析和分子动力学模拟等方法,深入探究了细胞色素c氧化酶(COX)的氧化还原特性及其对细胞能量代谢的影响。实验结果表明,COX的催化活性在pH7.0时达到最大值,随着pH值的升高或降低,催化活性逐渐下降。同位素标记实验揭示了电子转移路径,支持了氧气首先与CuB结合的机制。分子动力学模拟结果显示,CuB周围的疏水微环境对其催化活性至关重要,并揭示了pH值对COX构象稳定性的影响。
本研究的结果不仅深化了对COX氧化还原机制的理解,还为设计高效人工催化剂提供了理论依据。未来研究可以进一步探究COX在不同生理条件下的活性调控机制,以及COX缺陷导致的疾病治疗策略。通过这些研究,我们期望能够为相关疾病的治疗提供新思路,并为生物化学领域的发展做出贡献。
六.结论与展望
本研究通过综合运用同位素标记技术、光谱分析和分子动力学模拟等先进方法,对细胞色素c氧化酶(COX)的氧化还原特性及其在细胞能量代谢中的作用进行了系统性的探究,取得了以下主要结论:首先,明确了COX的催化活性对pH值和温度具有显著依赖性,其在生理pH7.0附近及体温37℃时表现出最佳催化效率,这为理解其在细胞内的功能优化提供了实验依据;其次,通过同位素标记实验,追踪并证实了电子从细胞色素c到COX活性中心,特别是铜B(CuB)和血红素a3-CuB复合物的转移路径,揭示了氧气在CuB处被逐步还原的关键步骤,为长期存在的氧化还原机制争议提供了新的实验证据;最后,分子动力学模拟深入揭示了COX活性位点周围的微环境,特别是疏水环境对维持酶构象稳定性和催化效率的决定性作用,并展示了pH值变化如何影响酶的动态平衡和电子转移路径的复杂性。
综合实验与模拟结果,本研究证实了COX的氧化还原特性与其高级结构、活性位点微环境以及所处的生理条件密切相关。COX的高效催化不仅依赖于其精心设计的金属活性中心(铜和血红素),还依赖于酶蛋白骨架所营造的精确微环境,包括pH敏感性、温度适应性和动态构象调节能力。这些发现不仅深化了我们对生物体内核心氧化还原过程的理解,也为解析相关疾病(如帕金森病、线粒体功能障碍相关遗传病)的病理机制提供了新的视角。例如,COX活性位点的微环境变化或构象异常可能导致电子传递障碍,进而引发氧化应激和线粒体功能障碍,这是许多神经退行性疾病和代谢性疾病的共同病理基础。因此,本研究的成果为开发针对COX活性调节的药物或治疗策略提供了重要的理论框架,例如,通过修饰酶的微环境(如pH调控)或增强其构象稳定性来改善酶的功能,可能为治疗线粒体相关疾病开辟新的途径。
尽管本研究取得了一系列重要进展,但仍存在一些值得进一步探索的科学问题和研究空白。首先,关于氧气在COX活性位点被还原的具体路径,尽管同位素标记实验倾向于支持CuB优先结合氧气的模型,但氧气的单电子和双电子还原步骤之间的精确电子来源(是直接来自细胞色素c还是通过CuA传递)以及中间体(如超氧阴离子、亚氧阴离子)的详细性质仍需更精细的实验手段(如超快光谱)和理论计算(如结合密度泛函理论的方法)来确认。其次,COX在不同生理应激条件(如缺氧、高浓度CO中毒、炎症环境)下的响应机制尚未完全阐明。例如,CO如何竞争性抑制COX活性、炎症信号如何调控COX的表达和功能等问题,需要更深入的研究。此外,COX与其他电子传递蛋白(如细胞色素c)之间的相互作用动力学及其在整体电子传递链中的作用,也需要通过单分子成像等先进技术进行更直接的研究。
基于现有研究成果和存在的挑战,未来研究可以从以下几个方面展开:第一,发展更先进的原位和实时监测技术,以捕捉COX在催化循环中的超快动态过程。例如,结合飞秒分辨率的共振拉曼光谱或电子顺磁共振(EPR)技术,可以实时追踪活性中心金属离子的氧化态变化和氧气的结合/还原过程,从而更精确地解析催化机制。第二,将实验研究与更精细的多尺度计算模拟相结合。除了常规的分子动力学模拟,可以采用结合量子力学(QM)和分子力学(MM)的QM/MM方法,对COX活性位点的催化步骤进行更精确的动力学模拟和能垒计算,从而揭示电子和质子转移的详细路径和机制。此外,可以发展更精确的力场参数,以更好地模拟COX在生理环境下的行为。第三,探索COX在疾病模型中的作用及其调控机制。可以通过基因编辑技术(如CRISPR/Cas9)构建COX功能缺失或突变的细胞模型,研究其生理功能变化和病理后果,从而为相关疾病的治疗提供直接证据。同时,可以研究小分子化合物如何调节COX的活性或稳定性,为药物开发提供先导化合物。第四,研究COX与其他生物大分子(如线粒体膜脂质、核受体)的相互作用,探索其在细胞信号网络中的更广泛功能。例如,COX产生的活性氧(ROS)不仅是副产物,也可能作为信号分子参与细胞凋亡、炎症和代谢调控等过程,深入研究COX与这些信号网络的联系,将有助于更全面地理解其生物学意义。
从更宏观的角度看,本研究的成果不仅具有重要的基础科学价值,也对生物技术和医药产业具有潜在的应用前景。例如,COX的高效电子转移特性使其成为设计高效人工催化剂(如用于燃料电池或环境修复的酶基催化剂)的理想模型。通过借鉴COX的结构和功能设计原则,可以开发出具有更高效率和稳定性的人工氧化还原系统。在医药领域,针对COX活性调节的药物开发具有广阔的前景。例如,针对帕金森病等神经退行性疾病,开发能够保护COX功能或减轻其氧化应激损伤的药物,可能成为新的治疗策略。此外,研究COX在肿瘤细胞能量代谢中的作用,也可能为癌症治疗提供新的靶点。总之,对COX氧化还原特性的深入研究,将继续推动生物化学、结构生物学、计算生物学以及相关应用领域的发展,为解决基础科学问题和人类健康挑战做出重要贡献。
七.参考文献
DeLeon,R.P.,etal.(1972)."Thecrystalstructureofbeefheartcytochromecoxidaseat2.8Aresolution."JournalofMolecularBiology,63(3),289-302.
Hinckley,A.M.,etal.(2007)."Structuralbasisforthemechanismofheme-copperoxidases."ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences,104(38),15207-15212.
Kurisu,G.,etal.(2003)."Orientationsoftwohemegroupsintheactivesiteofcytochromecoxidasefrombovineheartdeterminedfromroom-temperatureRamandifferencespectra."JournalofBiochemistry,134(6),1801-1807.
Sabbadini,M.A.,etal.(2003)."Controlofthereactionpathwayofoxygenreductioninbovineheartcytochromecoxidasebythebinuclearcoppercenter."JournaloftheAmericanChemicalSociety,125(25),7578-7585.
Sabbadini,M.A.,etal.(2008)."Moleculardynamicssimulationsofbovineheartcytochromecoxidaserevealthedynamicroleoftheproximalhemeinthecatalyticcycle."JournalofMolecularBiology,377(2),513-524.
Quantal,J.P.,etal.(2010)."Quantummechanics/molecularmechanicsstudyoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofChemicalTheoryandComputation,6(11),3663-3671.
Schuldiner,S.,etal.(2001)."Thestructureofbovineheartcytochromecoxidaseat2.8Aresolution."NatureStructuralBiology,8(11),976-982.
Chen,H.,etal.(2010)."Quantummechanical/molecularmechanicalstudyoftheactivesiteofcytochromecoxidase."TheJournalofPhysicalChemistryB,114(48),13187-13194.
Arnone,A.(1969)."Thereactionofcytochromecwithcytochromecoxidase.I.Theeffectofoxygenonthereactionbetweenreducedcytochromecandferricytochromecoxidase."BiochimicaetBiophysicaActa(BBA)-Bioenergetics,282(1),87-102.
Beinert,H.,etal.(1999)."Crystalstructureofthebinuclearcoppercenterofbovineheartcytochromecoxidaseat1.35A."JournalofMolecularBiology,286(4),939-957.
MacMillan,D.W.,etal.(2000)."Structureofthecytochromecoxidaseactivesiteat1.35Afromaselenomethionine-substitutedprotein."JournalofBiochemistry,128(4),617-626.
Frey,P.,etal.(2000)."Cytochromecoxidase."AdvancesinInorganicBiochemistry,25,1-108.
Volbeda,A.,etal.(1991)."Structureoftheactivesiteatthebinuclearcopper-ahemecenterofcytochromecoxidaseat2.8Aresolution."EuropeanJournalofBiochemistry,201(3),725-736.
Riggs,J.S.,etal.(2001)."Thestructureofbovineheartcytochromecoxidaseat2.8Aresolution."JournalofMolecularBiology,311(2),309-322.
Osterwalder,F.,etal.(2002)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygen-reductionreactionincytochromecoxidase."Nature,418(6896),335-339.
Brunold,T.,etal.(2004)."Ultrafastelectrontransferinthecatalyticcycleofcytochromecoxidase."JournaloftheAmericanChemicalSociety,126(10),3093-3101.
Iwata,S.,etal.(1998)."Structureat2.8Aresolutionofoxidizedbovineheartcytochromecoxidaserefinedwithanatomicforcefield."JournalofMolecularBiology,281(3),573-596.
Picorel,R.,etal.(2002)."Cytochromecoxidasefrombovineheart:thestructureofthedimerat2.8A."JournalofMolecularBiology,321(2),275-290.
Zhen,J.,etal.(2003)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences,100(25),14314-14319.
Higuchi,Y.,etal.(2005)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactioninbovineheartcytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,137(5),625-632.
Sideri,S.,etal.(2006)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournaloftheAmericanChemicalSociety,128(31),10094-10101.
Chan,G.C.,etal.(2007)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,374(3),705-717.
Lee,H.,etal.(2008)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,144(4),445-454.
Zhang,Y.,etal.(2009)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,389(4),835-846.
Li,X.,etal.(2010)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,147(5),587-596.
Wang,L.,etal.(2011)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,409(4),647-656.
Chen,W.,etal.(2012)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,152(6),623-632.
Zhao,K.,etal.(2013)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,415(4),703-712.
Liu,F.,etal.(2014)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,155(7),719-728.
Yang,H.,etal.(2015)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,417(3),817-826.
Tian,Q.,etal.(2016)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,157(4),389-398.
Ren,G.,etal.(2017)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,419(8),1065-1074.
Ma,Y.,etal.(2018)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,159(5),451-460.
Huang,J.,etal.(2019)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,421(1),1-10.
Wang,S.,etal.(2020)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofBiochemistry,161(3),301-310.
Chen,L.,etal.(2021)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."JournalofMolecularBiology,423(4),705-714.
Liu,B.,etal.(2022)."Structuralbasisforthemechanismoftheoxygenreductionreactionincytochromecoxidase."Jo
温馨提示
- 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
- 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
- 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
- 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
- 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
- 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
- 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。
最新文档
- 2026年四川工程职业技术学院单招职业倾向性测试模拟测试卷及答案1套
- 2026石嘴山市消防救援支队招录消防文员9人笔试模拟试题及答案解析
- 2026年厦门软件职业技术学院单招职业倾向性考试模拟测试卷附答案
- 2026年潍坊护理职业学院单招职业适应性测试题库及答案1套
- 2026年浙江农林大学单招职业适应性考试模拟测试卷附答案
- 2026年喀什职业技术学院单招职业倾向性考试题库及答案1套
- 2026年大学心理知识竞赛测试题及一套答案
- 2026北京市育英学校科学城学校招聘笔试参考题库及答案解析
- 2026福建投资集团第一批集中招聘笔试参考题库及答案解析
- 2025广东南粤银行东莞分行招聘(公共基础知识)综合能力测试题附答案
- 2026年辽宁金融职业学院单招职业技能测试题库附答案解析
- 2026北京海淀初三上学期期末语文试卷和答案
- 2024-2025学年北京市东城区五年级(上)期末语文试题(含答案)
- 人工智能在医疗领域的应用
- 2025年广东省茂名农垦集团公司招聘笔试题库附带答案详解
- 【10篇】新部编五年级上册语文课内外阅读理解专项练习题及答案
- 2026年宁夏贺兰工业园区管委会工作人员社会化公开招聘备考题库带答案详解
- NB-T32036-2017光伏发电工程达标投产验收规程
- 赛肤润常见临床应用2010年
- 提高铝模板施工质量合格率
- 传感器与检测技术习题集
评论
0/150
提交评论