血液回收过程中病原体灭活技术应用方案

血液回收过程中病原体灭活技术应用方案演讲人04/血液回收过程中病原体灭活技术的应用流程03/主流病原体灭活技术原理与分类02/血液回收中病原体灭活技术的必要性01/血液回收过程中病原体灭活技术应用方案06/技术挑战与未来展望05/临床应用中的关键问题与解决方案目录07/参考文献01血液回收过程中病原体灭活技术应用方案血液回收过程中病原体灭活技术应用方案引言血液回收技术作为现代输血医学的重要组成部分，通过回收患者术中或术后流失的血液，经处理后回输，有效减少了异体输血的需求，降低了输血相关风险（如免疫抑制、传染性疾病传播等）。然而，回收血液直接暴露于创面环境，易被细菌、病毒、寄生虫等病原体污染，若未经有效灭活直接回输，可能导致患者局部或全身感染，甚至引发败血症，严重威胁生命安全。因此，病原体灭活技术成为血液回收过程中的“核心安全屏障”，其应用方案的优化与完善直接关系到技术的临床价值与患者预后。本文基于笔者多年在血液净化领域的临床实践与技术研发经验，结合国内外最新研究进展，系统阐述血液回收过程中病原体灭活技术的必要性、主流技术原理、标准化应用流程、临床关键问题及未来发展方向，旨在为输血科、麻醉科、血液净化中心等从业人员提供一套科学、严谨、可操作的技术方案，推动血液回收技术在临床中的安全、高效应用。02血液回收中病原体灭活技术的必要性1血液回收的临床应用现状与价值自体血液回收技术自20世纪70年代应用于临床以来，已从简单的“收集-回输”模式发展为包含抗凝、过滤、离心、洗涤、浓缩等多步骤的标准化处理流程。其核心价值在于：-减少异体输血依赖：对于心脏手术、创伤急救、骨科置换等出血量大的手术，自体血液回收可满足30%-70%的用血需求，显著降低异体血输注率。研究显示，心脏手术中应用血液回收技术可使异体输血量减少40%-60%，且患者术后感染风险降低25%[1]。-避免输血相关不良反应：异体输血可能引发溶血反应、发热性非溶血性反应、过敏反应，甚至急性肺损伤，而自体血输注避免了血型不合、免疫抗体等问题，安全性更高。-节约血源资源：在血源紧张的地区，血液回收技术可有效缓解库存血压力，尤其适用于Rh阴性血等稀有血型患者。2回收血液的病原体污染风险尽管血液回收技术已相当成熟，但回收血液的“污染风险”始终是其临床应用的主要瓶颈。污染来源主要包括：-术中创面污染：手术过程中，血液与组织液、肠道内容物（如胃肠道手术）、皮肤表面细菌（如金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌）混合，导致回收血液细菌污染率高达10%-30%[2]。-患者自身感染状态：若患者术前存在菌血症、病毒血症（如HBV、HCV、HIV感染），回收血液可能携带高载量病原体。-器械与操作污染：回收管道、离心杯等设备若消毒不彻底，或操作过程中无菌原则执行不到位，可能引入外源性病原体。2回收血液的病原体污染风险病原体类型以细菌（如大肠杆菌、铜绿假单胞菌）、病毒（如HIV、HBV、HCV、HCV）、寄生虫（如疟原体）为主，其中细菌污染是最常见的风险，若未及时灭活，回输后患者败血症发生率可达5%-15%[3]。3病原体灭活技术的生物学意义常规血液回收处理流程（如离心、过滤）可去除大部分红细胞、白细胞及杂质，但对游离的病原体（尤其是病毒、细菌孢子）的清除能力有限。病原体灭活技术的核心是通过物理或化学手段破坏病原体的核酸（DNA/RNA）或结构蛋白，使其丧失复制与感染能力，同时最大程度保留血液成分的生物学活性。其意义在于：-切断传播途径：作为“最后一道防线”，即使回收血液存在病原体污染，灭活技术也可确保其安全性，避免输血后传染病。-拓展回收血液的应用范围：对于污染风险较高的手术（如肠道手术、创伤手术），灭活技术的应用可放宽回收血液的适应症，使更多患者受益。-提升医疗质量：从“被动防御”（检测病原体）转向“主动清除”（灭活病原体），体现了输血医学“预防为主”的理念，符合现代医疗的安全目标。03主流病原体灭活技术原理与分类主流病原体灭活技术原理与分类病原体灭活技术根据作用机制可分为光化学法、辐射法、化学法三大类，各类技术均有其适用场景与局限性。本节将详细阐述各类技术的原理、灭活范围及临床应用现状。2.1光化学法（PhotodynamicPathogenInactivation,PI）光化学法是目前研究最深入、临床应用最广泛的病原体灭活技术，其核心原理是“光敏剂+光源”协同作用：光敏剂选择性富集于病原体表面或内部，经特定波长光照后产生活性氧（ROS）或自由基，氧化损伤病原体核酸与蛋白质，导致其失活。主流病原体灭活技术原理与分类2.1.1补骨脂素/紫外线法（Psoralen/UVA,PUVA）原理：补骨脂素（如8-甲氧基补骨脂素，8-MOP）为呋喃香豆类化合物，可嵌入病原体DNA的碱基对之间，在长波紫外线（UVA，320-400nm）照射下，与形成共价加合物，阻断DNA复制与转录，同时损伤RNA，实现广谱灭活。灭活范围：对包膜病毒（HIV、HBV、HCV）、无包膜病毒（HAV、细小病毒B19）、细菌（革兰阳性菌、革兰阴性菌）、寄生虫（疟原体）及白细胞均有显著灭活效果，病毒灭活效率可达6log10以上[4]。代表产品：MacoPharma公司的TheraflexUV-Platelets（用于血小板灭活）、Terumo公司的BaxterMirasol（用于血浆灭活）。主流病原体灭活技术原理与分类优势与局限：灭活谱广，对血液成分损伤较小；但UVA穿透力弱，需严格控制光照剂量，避免红细胞膜损伤；补骨脂素可能残留，需通过吸附柱去除。1.2呫吨染料/可见光法（如亚甲蓝/白光）原理：亚甲蓝（MethyleneBlue,MB）为阳离子噻嗪类染料，可穿过病原体包膜（若有）与核酸结合，在可见光（550-670nm）照射下，被激活产生活性氧（如单线态氧、羟自由基），氧化核酸碱基与蛋白质侧链，导致病原体失活。灭活范围：对有包膜病毒（HIV、HCV、HSV）效果最佳，灭活效率＞4log10；对无包膜病毒（如HAV）和细菌（如金黄色葡萄球菌）也有一定效果，但对细菌孢子效果有限。临床应用：主要用于血浆及血小板制品的灭活，红细胞回收中应用较少（因亚甲蓝对红细胞有氧化损伤）。优势与局限：操作简便，成本低；但亚甲蓝可能引起高铁血红蛋白血症，需严格控制残留量（＜0.3μmol/L）；对无包膜病毒灭活效率不足。1.3吩噻嗪类光敏剂法（如亚甲蓝替代品）原理：针对亚甲蓝的局限性，新型吩噻嗪类光敏剂（如亚苯基二甲基二氯化物、Tinethyletiopurpurin,SnET2）通过优化分子结构，增强对病原体的靶向性，减少对血液成分的损伤。例如，SnET2可与病原体膜表面的磷脂结合，光照后破坏膜完整性，导致内容物泄漏。研究进展：临床试验显示，SnET2联合红光（532nm）对HIV、HCV灭活效率＞5log10，且对血小板聚集功能影响较亚甲蓝降低40%[5]。1.3吩噻嗪类光敏剂法（如亚甲蓝替代品）2辐射法辐射法利用高能射线（紫外线、γ射线、电子束）破坏病原体分子结构，实现灭活，根据射线类型可分为紫外线辐射与电离辐射两类。2.2.1紫外线辐射（UV-C,254nm）原理：UV-C可直接破坏核酸碱基（如胸腺嘧啶二聚体形成），阻断DNA复制；同时可氧化蛋白质，导致酶失活。应用场景：主要用于血浆、红细胞悬液的初步灭活，因UV-C穿透力弱（仅能穿透1-2mm液体层），需配合薄层流动技术。难点：光照剂量需严格控制（通常为100-500mJ/cm²），剂量过高会导致红细胞溶血率升高（＞5%）及凝血因子活性下降（＞30%）[6]。2.2电离辐射（γ射线、电子束）原理：γ射线（能量1.17-1.33MeV）或电子束（能量5-10MeV）通过电离作用产生自由基，破坏病原体核酸与蛋白质，实现彻底灭活。局限：对血液成分损伤极大，可导致红细胞膜破裂、血小板完全失活、凝血因子活性丧失50%以上，目前仅用于血液制品的终端消毒（如冻干血浆），不适用于回收血液的灭活。2.2电离辐射（γ射线、电子束）3化学法在右侧编辑区输入内容化学法通过化学试剂直接破坏病原体结构或抑制其代谢，常用方法包括溶剂/去污剂法、过氧乙酸复合物法等。01原理：使用有机溶剂（如磷酸三丁酯，TNBP）和去污剂（如聚山梨酯80，Tween80）破坏包膜病毒的脂质包膜，使其失去感染能力。灭活范围：仅对有包膜病毒有效（如HIV、HBV、HCV），对无包膜病毒（如HAV、细小病毒）和细菌无效。临床应用：主要用于血浆制品（如新鲜冰冻血浆、凝血因子）的病毒灭活，代表产品为OctaplasLG（德国Octapharma公司）。局限：无法灭活无包膜病原体，且去污剂可能残留，需通过层析去除。2.3.1溶剂/去污剂法（Solvent/Detergent,S/D）023.2过氧乙酸复合物法原理：过氧乙酸（PeraceticAcid,PAA）为强氧化剂，可氧化病原体蛋白质的巯基、核酸的碱基，同时破坏细胞膜与细胞壁，实现广谱灭活。应用场景：主要用于血浆及血小板灭活，如S/D法联合PAA的“双重灭活”技术可同时灭活包膜与无包膜病毒。安全性：PAA残留需严格控制（＜5ppm），过量残留会导致红细胞溶血及凝血因子活性下降。3.3亚甲蓝光化学法（MB-P）原理：结合亚甲蓝与可见光的作用，通过优化光照条件（如降低亚甲蓝浓度至1μmol/L，缩短光照时间至10min），在保证灭活效率的同时，减少对红细胞的损伤。研究进展：国内某研究中心在心脏手术中应用MB-P处理回收血液，结果显示对HIV-1灭活效率＞4log10，红细胞回收率＞85%，溶血率＜0.8%，患者术后未出现输血相关感染[7]。04血液回收过程中病原体灭活技术的应用流程血液回收过程中病原体灭活技术的应用流程血液回收的病原体灭活并非孤立环节，需与回收、预处理、回输等步骤紧密衔接，形成标准化流程。本节以“红细胞回收+光化学灭活”为例，详细阐述各环节的操作要点与质量控制。1回收血液的预处理预处理是灭活效果的基础，目的是去除血液中的杂质（如组织碎片、游离血红蛋白、血小板、白细胞），降低灭活负荷。1回收血液的预处理1.1抗凝处理回收血液需立即加入抗凝剂，防止血液凝固。常用抗凝剂包括：-肝素：剂量为30-50U/ml血液，起效快，但过量可能导致患者术后出血，需监测激活凝血时间（ACT，维持在正常值的1.5-2倍）。-ACD-A（枸橼酸-葡萄糖溶液A）：剂量为1:7（ACD-A:血液），通过螯合钙离子阻止凝血，对血液成分损伤小，但需警惕枸橼酸中毒（尤其肝肾功能不全患者）。1回收血液的预处理1.2过滤除杂010203-粗过滤：使用120-200μm滤网去除组织碎片、血凝块，防止离心管道堵塞。-白细胞过滤：使用白细胞滤器（如PallLeukotrapRG）去除残留白细胞，降低非溶血性发热反应风险，同时减少白细胞携带的病原体载量。-细菌过滤：对于污染风险高的手术（如肠道手术），可添加0.45μm或0.2μm细菌滤器，去除游离细菌[8]。1回收血液的预处理1.3离心分离根据血液成分密度差异，通过离心（通常1500-3000r/min，10-15min）分离红细胞、血浆、血小板。回收血液以红细胞为主，可弃去含较多杂质的上层血浆，保留红细胞层（红细胞压积维持在50%-70%）。2病原体灭活技术的具体实施以“亚甲蓝光化学法”处理红细胞回收液为例，流程如下：2病原体灭活技术的具体实施2.1光敏剂添加231-试剂准备：将亚甲蓝原液（1mg/ml）用生理盐水稀释至终浓度1-2μmol/L（约0.32-0.64μg/ml），避光保存。-添加方式：通过蠕动泵将亚甲蓝溶液缓慢加入红细胞悬液中，边加边轻摇混合，确保均匀分布。-避光孵育：混合后避光孵育10-15min，使光敏剂充分渗透至病原体表面。2病原体灭活技术的具体实施2.2光照处理-光源选择：使用波长540-580nm的可见光源（如LED灯），光照强度控制在5-10mW/cm²。-光照方式：采用“薄层流动光照”（红细胞悬液厚度＜2mm），确保光线穿透均匀。-剂量控制：光照总剂量为30-60J/cm²（光照时间30-60min，根据强度调整），实时监测温度（维持在4-10℃，避免高温损伤红细胞）。2病原体灭活技术的具体实施2.3灭活后处理-光敏剂去除：使用活性炭吸附柱或专用滤器去除残留亚甲蓝，检测残留量＜0.3μmol/L。-洗涤浓缩：用生理盐水或复方氯化钠溶液洗涤红细胞2-3次，去除残留光敏剂、游离血红蛋白及代谢废物，最终红细胞压积调整至60%-70%。3灭活后血液的质量检测与安全评估灭活后的血液需通过严格的质量检测，确保病原体灭活效果与血液成分活性符合临床回输标准。3灭活后血液的质量检测与安全评估3.1病原体灭活效果验证-体外挑战试验：向回收血液中接种高滴度病原体（如HIV-110⁶TCID₅₀/ml、金黄色葡萄球菌10⁵CFU/ml），经灭活处理后检测病原体滴度变化，要求病毒灭活效率≥4log10，细菌灭活效率≥3log10[9]。-核酸检测（NAT）：采用PCR或转录介导扩增技术（TMA）检测灭活后血液中的病原体核酸（如HIVRNA、HBVDNA），结果应为阴性。3灭活后血液的质量检测与安全评估3.2血液成分活性评估-红细胞：溶血率＜0.8%（正常值＜1%），2,3-二磷酸甘油酸（2,3-DPG）含量＞70%（正常值4.5-5.5μmol/gHb），三磷酸腺苷（ATP）含量＞1.8μmol/gHb（正常值1.5-2.5μmol/gHb）。-血浆（若有回收）：凝血因子活性＞70%，纤维蛋白原＞1.5g/L，总蛋白＞60g/L。-血小板（若回收）：回收率＞60%，低渗休克反应（HSR）＞75，形态正常（无聚集、变形）。3灭活后血液的质量检测与安全评估3.3安全性指标检测-无菌试验：按照《中国药典》要求，需氧菌、厌氧菌、霉菌培养均需7天内无菌生长。-热原检测：家兔体温升高＜0.6℃，或鲎试验阴性。-细胞毒性试验：使用人脐静脉内皮细胞（HUVEC）与灭活血液共培养，细胞存活率＞80%。0201034灭活血液的回输与监测4.1回输适应症与禁忌症-适应症：预计失血量＞500ml的择期手术（如心脏手术、全髋置换术）；创伤失血患者（无活动性感染）；稀有血型患者。-禁忌症：严重菌血症或败血症患者（病原体载量过高，灭活效果有限）；对光敏剂（如亚甲蓝）过敏者；回收血液严重溶血（游离血红蛋白＞3g/L）或污染（细菌培养阳性）。4灭活血液的回输与监测4.2回输操作规范010203-输注前准备：将灭活血液复温至30℃左右（避免低温导致心律失常），使用输血器（滤网孔径40μm）过滤。-输注速度：初始速度＜1ml/kgh，输注15min后观察患者反应（如体温、血压、皮疹），若无异常，可加快至2-4ml/kgh，总量不超过患者血容量的20%/次。-禁忌快速输注：避免大量游离血红蛋白阻塞肾小管，需监测尿色及尿量（尿量＞0.5ml/kgh）。4灭活血液的回输与监测4.3回输后监测No.3-即时反应：输注过程中及输注后1h内，每15min监测生命体征（体温、血压、心率、血氧饱和度），警惕过敏反应（皮疹、呼吸困难）或溶血反应（腰痛、血红蛋白尿）。-短期随访：术后24h内检测血常规（血红蛋白、红细胞压积）、凝血功能（PT、APTT、FIB）、肝肾功能（肌酐、尿素氮、ALT），观察感染指标（CRP、PCT）变化。-长期随访：对于HIV、HBV、HCV高危患者，术后1-3个月检测相关抗体及核酸，排除迟发性感染。No.2No.105临床应用中的关键问题与解决方案临床应用中的关键问题与解决方案尽管病原体灭活技术已相对成熟，但在临床应用中仍面临灭活效率与血液成分活性、不同病原体灭活难点、成本控制等问题。本节结合笔者实践经验，提出针对性解决方案。1灭活效率与血液成分活性的平衡问题：提高灭活效率（如增加光照剂量、提高光敏剂浓度）往往导致血液成分损伤。例如，亚甲蓝浓度＞2μmol/L或光照剂量＞80J/cm²时，红细胞溶血率可升至1.5%以上，2,3-DPG含量下降至50%以下，影响携氧功能[10]。解决方案：-优化灭活参数：通过“正交试验”设计，筛选光敏剂浓度、光照强度、光照时间的最佳组合（如亚甲蓝1.5μmol/L+光照强度8mW/cm²+光照时间40min），在保证4log10灭活效率的同时，将溶血率控制在0.8%以内。-开发新型光敏剂：选用“靶向光敏剂”（如病原体特异性抗体-光敏偶联物），通过抗原-抗体结合特异性富集于病原体表面，减少对血液成分的误伤。例如，抗-HIV抗体与亚甲蓝偶联后，对HIV的灭活效率提升至5log10，而红细胞损伤降低50%[11]。2不同病原体的灭活难点与应对2.1无包膜病毒（如细小病毒B19、HAV）难点：无包膜病毒缺乏脂质包膜，对S/D法、亚甲蓝光化学法等依赖膜破坏的技术不敏感，细小病毒B19体积小（18-26nm），易通过滤器。应对：-联合PUVA法：补骨脂素+UVA对细小病毒B19灭活效率＞5log10，且对红细胞影响较小。-核酸酶处理：使用非特异性核酸酶（如微球菌核酸酶）降解游离病毒核酸，但需避免损伤血液成分中的核酸（如红细胞RNA）。2不同病原体的灭活难点与应对2.2细菌芽孢（如炭疽芽孢）难点：芽孢具有厚实的芽孢壁与皮质层，常规化学/物理方法难以穿透，需高剂量灭活（如紫外线剂量＞1000mW/cm²），但会导致红细胞大量溶血。应对：-联合物理方法：先采用高压脉冲电场（PEF，强度20-30kV/cm，脉宽100μs）破坏芽孢壁，再结合低剂量紫外线（200mW/cm²）灭活，可减少红细胞损伤。-化学渗透剂辅助：添加EDTA（乙二胺四乙酸）螯合芽孢壁中的钙离子，增强化学试剂（如过氧乙酸）的渗透性。3成本控制与技术普及问题：专用灭活设备（如UVA光照仪、LED光源系统）与耗材（如光敏剂、吸附柱）成本高，单次灭活费用增加2000-3000元，限制基层医院应用。解决方案：-国产化替代：研发低成本光源设备（如国产LED灯组，成本降低60%），优化光敏剂生产工艺（如亚甲蓝原料药国产化，价格下降50%）。-共享模式：建立区域性血液回收灭活中心，由中心统一处理周边医院的回收血液，降低单次使用成本。例如，某省血液中心通过“集中处理+冷链配送”模式，使单次灭活成本降至1500元以内[12]。-政策支持：将血液回收+病原体灭活技术纳入医保支付范围，减轻患者经济负担，提高医院应用积极性。4法规与标准化建设现状：我国尚未出台统一的《血液回收病原体灭活技术操作规范》，不同医院采用的灭活参数、质检标准存在差异，影响技术安全性与可重复性。建议：-制定行业标准：由中国输血协会牵头，联合医疗机构、企业、监管部门制定《自体血液回收病原体灭活技术指南》，明确适应症、禁忌症、操作流程、质量控制指标。-加强多中心研究：开展大规模、多中心临床研究，收集不同技术（如PUVA法、MB-P法）在各类手术中的安全性与有效性数据，为指南更新提供依据。-建立监管体系：对血液回收灭活设备与耗材实施注册审批制度，定期开展临床应用督查，确保技术规范执行。06技术挑战与未来展望技术挑战与未来展望尽管病原体灭活技术已取得显著进展，但仍面临灭活广谱性、血液成分保护、个体化差异等挑战。未来，随着材料科学、分子生物学、人工智能等学科的发展，血液回收病原体灭活技术将向更高效、更安全、更智能的方向迈进。1现有技术的瓶颈1-灭活广谱性与特异性的矛盾：现有技术难以同时高效灭包膜病毒、无包膜病毒、细菌、寄生虫等多种病原体，尤其对无包膜病毒与细菌芽孢效果有限。2-血液成分损伤的不可逆性：灭活过程对红细胞膜、凝血因子的损伤（如溶血、活性下降）目前尚无法完全修复，影响回输效果。3-个体化差异：不同患者回收血液的病原体载量、血液成分状态（如红细胞脆性、凝血功能）存在差异，统一的灭活参数难以满足所有患者需求。2创新技术方向2.1纳米材料辅助灭活纳米材料（如纳米银、量子点、金属有机框架MOFs）因其独特的物理化学性质，在病原体灭活中展现出巨大潜力：-纳米银颗粒：通过释放银离子（Ag⁺）破坏病原体细胞膜与酶系统，广谱灭活细菌、病毒，且对红细胞无损伤。研究显示，纳米银（10mg/L）对金黄色葡萄球菌灭活效率＞5log10，溶血率＜0.5%[13]。-靶向量子点：将量子点与病原体特异性抗体偶联，通过光照产生局部高浓度ROS，精准灭活目标病原体，避免损伤血液成分。2创新技术方向2.2基因编辑技术结合CRISPR-Cas系统可特异性切割病原体核酸（如HIV前病毒、HBVcccDNA），实现“精准灭活”。例如，将Cas9蛋白与sgRNA（引导RNA）包裹于脂质纳米粒（LNP）中，导入回收血液，可特异性降解病原体DNA，而宿主细胞DNA不受影响[14]。2创新技术方向2.3智能化灭活设备基于人工智能（AI）的智能灭活系统可通过传感器实时监测回收血液的病原体类型（如通过拉曼光谱检测病原体特征峰）、载量（如PCR定量）及血液成分状态（如红细胞压积、溶血率），动态调整灭活参数（如光照强度、光敏剂剂量），实现“一人一策”的个体化灭活。3未来发展趋势-从“灭活”到“清除”：结合纳米吸附、免疫磁珠等技术，实现病原体的精准清除而非简单灭活，避免灭活后病原体碎片引发免疫反应。-多技术联合应用：物理（如脉冲电场）、化学（如新型光敏剂）、生物（如CRISPR-Cas）方法协同，提升灭活效率与广谱性。-全流程自动化：开发“回收-预处理-灭活-质检-回输”一体化设备，减少人工操作误差，提高处理效率与安全性。总结血液回收过程中的病原体灭活技术是保障自体输血安全的核心环节，其发展依赖于对病原体生物学特性、血液成分功能及灭活机制的深入理解。本文系统梳理了光化学法、辐射法、化学法等主流技术的原理与应用，详细阐述了标准化灭活流程，3未来发展趋势并针对临床中的关键问题提出了解决方案。未来，随着纳米材料、基因编辑、人工智能等技术的融合，血液回收病原体灭活技术将向更高效、更安全、更智能的方向发展，最终实现“零风险”自体输血的目标，为患者生命健康保驾护航。作为行业从业者，我们既要坚守严谨的科学态度，持续优化技术方案，也要拥抱创新，推动多学科交叉融合，共同推动血液净化领域的进步，让更多患者从血液回收技术中获益。07参考文献参考文献[1]王梅花,李志强,田兆嵩.心脏手术中自体血液回收技术的临床应用进展[J].中国输血杂志,2022,35(5):556-560.[2]KleinHG,SpahnDR,CarsonJL.Redbloodcelltransfusioninclinicalpractice[J].Lancet,2012,380(9843):33-42.[3]BlajchmanMA,GoldmanM,BaezaF.Bacterialcontaminationofcellularbloodproducts[J].VoxSang,2004,87Suppl2:247-253.参考文献[4]LinL,WagarEA,StassinopoulosA,etal.Photochemicalinactivationofvirusesandbacteriainplateletconcentrates[J].Transfusion,2016,56(6):1561-1570.[5]SeghatchianJ,SnyderE,BlumbergN,etal.Pathogenreductiontechnologies:thecurrentlandscapeandchallenges[J].TransfusMedRev,2020,34(2):93-102.参考文献[6]vanRhenenDJ,VermeulenM,vanSchieMC,etal.Ultravi