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探索黏附类G蛋白偶联受体:内源性配体识别与激活机制的深度剖析一、引言1.1研究背景与意义细胞作为生物体的基本结构和功能单位,时刻与周围环境进行着物质、能量和信息的交换。在这一过程中,细胞信号传导扮演着至关重要的角色,它如同细胞的“通信网络”,确保细胞能够准确感知外界信号,并做出恰当的反应,以维持生命活动的正常进行。从单细胞生物到多细胞生物,细胞信号传导的复杂性和精确性不断提高,其调控机制涉及众多分子和信号通路。G蛋白偶联受体(GProtein-CoupledReceptors,GPCRs)是细胞信号传导通路中的关键成员,在细胞生理功能的调节中发挥着核心作用。作为一类重要的细胞表面受体,GPCRs广泛存在于人体的各种组织和器官中,能够感知多种外界信号,包括激素、神经递质、生长因子、气味分子、光信号等。当这些信号分子与GPCRs结合后,会引发受体的构象变化,进而激活细胞内的G蛋白,启动一系列复杂的信号传导级联反应,最终调节细胞的生理功能,如基因表达、代谢、增殖、分化、迁移等。GPCRs参与介导并调控人体的各类生命活动,如视觉、嗅觉、味觉、心血管功能、神经系统功能、免疫系统功能等。其功能的正常发挥对于维持人体的健康至关重要,一旦GPCRs的功能出现异常,就可能导致各种疾病的发生和发展。黏附类G蛋白偶联受体(adhesionGPCR,aGPCR)是GPCR超家族中的重要一员,也是第二大GPCR家族。aGPCRs在结构上具有独特的特征,其通常包含一个异常大的细胞外结构域(ECD),该结构域中存在多种串联的特征蛋白基序,如表皮生长因子(EGF)、免疫球蛋白(Ig)、正五聚蛋白(PTX)、血小板反应蛋白(TSP)、富含亮氨酸的重复序列(LRR)等,这些基序赋予了aGPCRs细胞黏附的功能。同时,aGPCRs还含有一个可以发生自水解的GPCR蛋白酶自水解诱导(GAIN)结构域,其中包含保守的GPCR水解位点(GPS)。绝大多数aGPCR成员可以自发在GPS位置发生自水解,产生α和β两个亚基,其中α亚基为细胞外区域(NTF),β亚基为包含七次跨膜螺旋区域(CTF),水解后的NTF与CTF在细胞表面保持非共价相连。这种独特的结构特征使得aGPCRs在细胞信号传导中具有独特的作用机制,不仅能够整合细胞外细胞黏附功能与细胞内GPCR信号传导功能,还参与调控免疫反应、器官发育、细胞通讯、组织再生等重要生理过程。aGPCRs与多种疾病的发生发展密切相关,如精神分裂症、多动症、癌症、神经发育或神经行为障碍、肿瘤、肌肉骨骼疾病等。在癌症研究中,越来越多的证据表明aGPCRs在肿瘤细胞的增殖、黏附、迁移侵袭、血管形成等生物学行为中发挥着重要作用。ADGRD1和ADGRF1被发现是多种癌症的致癌基因,其异常激活可能促进肿瘤的发生和发展;通过生物信息学分析和临床样本检测发现,ADGRA2、ADGRC3、ADGRF1、ADGRG6、ADGRE5和ADGRF4等aGPCRs在胰腺癌组织中高表达,且与预后相关,其中ADGRF4、ADGRE5的表达还与肿瘤的临床病理特征密切相关,提示它们可能是胰腺癌潜在的诊疗靶点。在神经系统疾病方面,aGPCRs的突变或异常表达可能导致神经发育异常、神经传递功能障碍等,进而引发精神分裂症、多动症等疾病。然而,目前aGPCRs是研究最不透彻的GPCR家族之一,几乎所有成员都是配体未知和功能不明的“孤儿受体”。对aGPCRs内源性配体识别及激活机制的研究还存在诸多空白,这严重制约了我们对其生理功能和信号转导机制的全面认识,也阻碍了相关药物的研发进程。深入研究aGPCRs内源性配体识别及激活机制具有重要的科学意义和应用价值。从科学意义角度来看,有助于揭示细胞信号传导的新机制和细胞生理功能调控的新模式,丰富我们对生命过程的理解;从应用价值角度出发,为开发新型治疗药物提供关键的理论基础和潜在的药物靶点,有望为相关疾病的治疗带来新的突破和希望,具有广阔的临床应用前景。1.2研究目的与创新点本研究旨在深入探索黏附类G蛋白偶联受体内源性配体识别及激活机制,通过综合运用生物化学、细胞生物学、结构生物学以及生物信息学等多学科研究方法,全面解析aGPCRs与内源性配体相互作用的分子机制,揭示其激活的详细过程和关键调控因素,为理解aGPCRs在生理病理过程中的功能提供坚实的理论基础,为相关疾病的治疗和药物研发提供新的靶点和思路。本研究可能存在以下创新点:其一,致力于探索全新的内源性配体,目前aGPCRs大多为“孤儿受体”,配体的未知极大地限制了对其功能和机制的研究,若能发现新的内源性配体,将开拓aGPCRs研究的新方向,为深入理解其在生理和病理过程中的作用提供新的视角。其二,深入探究aGPCRs独特的激活机制,aGPCRs具有不同于其他GPCRs的结构特征和激活方式,通过对其激活机制的深入研究,有望揭示出全新的细胞信号传导机制,丰富和完善细胞信号传导理论体系,为药物研发提供独特的靶点和作用机制,推动创新药物的开发进程。其三,采用多学科交叉的研究方法,打破传统单一学科研究的局限性,整合生物化学、细胞生物学、结构生物学和生物信息学等多学科的技术和方法,从不同层面和角度对aGPCRs进行全面深入的研究,提高研究结果的可靠性和全面性,为解决复杂的生物学问题提供新的思路和方法。1.3国内外研究现状在国外,对黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)的研究起步相对较早,取得了一系列具有重要意义的成果。在配体识别方面,2021年,山东大学孙金鹏教授团队在《Nature》发表论文,首次揭示了糖皮质激素作为内源性配体与aGPCR成员GPR97结合并激活受体的分子机制,明确了GPR97识别糖皮质激素的关键氨基酸残基,为aGPCR配体识别研究开辟了新路径。2022年,西安交通大学张磊教授团队与山东大学等单位合作,利用冷冻电镜技术解析了Stachel序列激活的ADGRG2-β-Gs和ADGRG4-β-Gs复合物结构,详细阐述了Stachel序列与aGPCR的直接作用机制,发现Stachel序列呈“U”型形态结合在受体七次跨膜螺旋形成的口袋中,其疏水部分五个疏水氨基酸与受体五个疏水口袋接触,这种疏水作用模式是激活所必需的,为理解aGPCR激活机制提供了重要结构基础。在激活机制研究上,2022年中国科学院上海药物研究所吴蓓丽研究组、赵强研究组联合上海科技大学水雯箐研究组在《Nature》发表的研究成果引人注目,他们成功解析了两种黏附类GPCR(ADGRD1和ADGRF1)分别与G蛋白结合的复合物三维结构,发现受体自身的一部分可作为内源性激动剂使受体激活,这是一种全新的受体自发激活方式,从未在其他类型GPCR中被发现,充分体现了黏附类受体信号转导机制的独特性;该研究还发现天然脂分子溶血磷脂胆碱(LPC)通过与ADGRF1特异性结合对受体功能进行调控,极大地拓展了对于GPCR功能调控机制的认识。在aGPCR与疾病关联研究领域,芝加哥大学研究团队运用冷冻电子显微镜(cryo-EM)和Förster共振能量转移(FRET)成像技术,对aGPCR进行深入研究,揭示了其细胞外区域与跨膜区域的通信机制,发现不同构象状态与受体的不同信号活性相关,为药物作用于aGPCRs开辟了新途径,有望开发出针对癌症、神经系统疾病等的创新药物。在国内,对aGPCR的研究也在积极开展并取得了一定进展。山东大学孙金鹏教授团队在aGPCR配体发现和功能机制研究方面处于国内领先水平,除上述发现糖皮质激素作为GPR97配体外,还确定了孤儿aGPCRs的几种新型内源性配体,如GPR126识别黄体酮以促进乳腺癌发展,DHEA/DHEAS作为ADGRG2的配体引发其对生命系统的影响。在aGPCR激活机制研究方面,国内科研团队也在不断探索,通过结构生物学、细胞生物学等多学科交叉方法,深入研究aGPCR激活过程中的分子事件和信号通路,为理解其生理病理功能提供理论依据。在aGPCR与疾病相关性研究上,国内学者同样做出了重要贡献。通过生物信息学分析和临床样本检测,发现aGPCRs在多种疾病中异常表达并发挥重要作用。安徽医科大学附属省立医院的研究人员利用Oncomine、GEPIA2、K-Mplotter数据库分析胰腺癌组织中aGPCRsmRNA水平及其与预后的关系,采用免疫组化法检测临床样本中aGPCRs蛋白表达,结果表明ADGRA2、ADGRC3、ADGRF1、ADGRG6、ADGRE5和ADGRF4mRNA在胰腺癌组织中高表达,且与预后相关,其中ADGRF4、ADGRE5的表达还与肿瘤的临床病理特征密切相关,提示它们可能是胰腺癌潜在的诊疗靶点。尽管国内外在aGPCR研究方面取得了一定成果,但目前aGPCRs仍是研究最不透彻的GPCR家族之一,还有大量的aGPCR成员的内源性配体尚未被发现,其激活机制仍存在诸多未解之谜,与疾病的关联机制也有待进一步深入研究。未来,需要国内外科研人员继续加强合作,综合运用多种先进技术和研究方法,全面深入地探索aGPCRs的内源性配体识别及激活机制,为相关疾病的治疗和药物研发提供更多的理论支持和新的策略。二、黏附类G蛋白偶联受体概述2.1G蛋白偶联受体家族简介G蛋白偶联受体(GProtein-CoupledReceptors,GPCRs),作为一大类膜蛋白受体的统称,在细胞信号转导进程中扮演着举足轻重的角色,是人体中最大且最为重要的膜蛋白受体家族之一。这类受体拥有高度保守的结构特征,其立体结构中存在七个跨膜α螺旋,恰似一座连接细胞内外的桥梁,使得受体能够稳定地锚定在细胞膜之上。肽链的C端和连接第5与第6个跨膜螺旋的胞内环(即第三个胞内环)上,存在着G蛋白(鸟苷酸结合蛋白)的特异性结合位点,这一结构特点为受体与G蛋白之间的相互作用奠定了基础,使得GPCRs能够通过激活G蛋白,启动一系列复杂的细胞内信号转导级联反应。GPCRs能够识别并结合多种多样的细胞外信号分子,这些信号分子涵盖了激素、神经递质、气味分子、趋化因子、光子等,它们宛如细胞的“通信使者”,将细胞外的各种信息传递给细胞。当这些信号分子与GPCRs结合后,会诱发受体的构象发生变化,进而使受体展现出鸟苷酸交换因子(GEF)的特性。此时,受体能够以三磷酸鸟苷(GTP)替换G蛋白上原本结合的二磷酸鸟苷(GDP),促使G蛋白的α亚基与β、γ亚基分离,被激活的G蛋白α亚基随后参与到下一步的信号传递过程中,从而引发细胞内一系列生理生化反应,最终调节细胞的功能和行为。GPCRs在生物体内分布极为广泛,几乎存在于人体的每一个细胞中,参与介导并调控着人体的各类生命活动,如视觉、嗅觉、味觉、心血管功能、神经系统功能、免疫系统功能、代谢调节等。在视觉系统中,视紫红质作为一种特殊的GPCR,能够感知光信号,并将其转化为细胞内的化学信号,从而启动视觉信号传导通路,使我们能够感知光线,分辨物体的形状、颜色和运动;在嗅觉系统中,众多不同类型的GPCR分布于嗅觉神经元表面,它们能够识别空气中的各种气味分子,进而引发嗅觉信号的传递,让我们能够辨别出不同的气味;在心血管系统中,肾上腺素受体作为GPCR的一种,能够对肾上腺素等激素作出响应,调节心脏的收缩力、心率以及血管的舒张和收缩,维持心血管系统的稳定。根据对人类基因组进行序列分析的结果,研究人员预测出了近千种G蛋白偶联受体的基因。依据基因序列的相似性以及结构和功能的特点,这些GPCRs可以被划分为六个主要类型:A类(视紫红质样受体)、B类(分泌素受体家族)、C类(代谢型谷氨酸受体)、D类(真菌交配信息素受体)、E类(环腺苷酸受体)和F类(Frizzled/Smoothened家族)。其中,A类即视紫红质样受体包含了绝大多数种类的G蛋白偶联受体,并且被进一步细分为19个子类(A1-A19)。近年来,一种新的分类系统——GRAFS应运而生,它是由谷氨酸(Glutamate)、视紫红质(Rhodopsin)、粘附(Adhesion)、Frizzled/Taste2以及分泌素(Secretin)的英文首字母缩写组成。在这个分类系统中,黏附类G蛋白偶联受体(adhesionGPCR,aGPCR)作为一个独立的类别被划分出来,凸显了其在GPCR家族中的独特地位和重要性。2.2黏附类G蛋白偶联受体的独特特征黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)作为GPCR超家族中的重要成员,具有一系列独特的结构和功能特征,使其在细胞信号传导和生理过程中发挥着特殊的作用,与其他类型的GPCR存在显著的区别。从结构层面来看,aGPCR最显著的特征之一是拥有异常大的细胞外结构域(ECD)。相较于其他GPCR,aGPCR的ECD长度往往更长,结构也更为复杂。在这个庞大的ECD中,包含了多种串联的特征蛋白基序,这些基序如同一个个功能模块,赋予了aGPCR独特的生物学功能。其中,表皮生长因子(EGF)基序常见于aGPCR的ECD中,EGF基序能够与其他细胞表面的EGF受体或相关配体相互作用,参与细胞的增殖、分化和迁移等过程;免疫球蛋白(Ig)基序则赋予了aGPCR类似免疫球蛋白的结构和功能特点,使其能够参与细胞间的识别和黏附,在免疫系统中发挥重要作用;正五聚蛋白(PTX)基序、血小板反应蛋白(TSP)基序以及富含亮氨酸的重复序列(LRR)等也在aGPCR的ECD中频繁出现,它们各自具有独特的结构和功能,如PTX基序可能参与细胞信号的调节,TSP基序与细胞外基质的相互作用密切相关,LRR基序则在蛋白质-蛋白质相互作用中发挥关键作用。这些多样化的蛋白基序使得aGPCR的ECD能够与多种细胞外分子发生特异性结合,从而实现细胞间的黏附、信号传递以及对细胞微环境的感知。aGPCR还含有一个保守的GPCR蛋白酶自水解诱导(GAIN)结构域,其中包含GPCR水解位点(GPS)。绝大多数aGPCR成员可以在GPS位置发生自发的自水解反应,这一过程如同一个分子开关,将aGPCR切割产生α和β两个亚基。α亚基即为细胞外区域(NTF),它包含了上述提到的各种蛋白基序,负责与细胞外的配体或其他分子相互作用;β亚基则包含七次跨膜螺旋区域(CTF),是aGPCR与G蛋白偶联并传导信号的关键结构。水解后的NTF与CTF在细胞表面通过非共价相互作用保持相连,形成一个完整的功能受体。这种独特的自水解激活机制在其他类型的GPCR中较为罕见,为aGPCR的激活和信号传导提供了一种独特的调控方式。在功能方面,aGPCR的特殊结构决定了其功能的独特性。aGPCR能够整合细胞外细胞黏附功能与细胞内GPCR信号传导功能,成为连接细胞外环境与细胞内信号通路的桥梁。通过其ECD中的各种蛋白基序与细胞外配体或其他细胞表面分子的相互作用,aGPCR可以感知细胞外环境的变化,如细胞间的接触、细胞外基质的组成和力学信号等,并将这些信息转化为细胞内的信号,通过激活下游的G蛋白,启动一系列复杂的信号传导级联反应,最终调节细胞的生理功能,如细胞的增殖、分化、迁移、存活等。aGPCR在组织和器官发育过程中发挥着关键作用。在胚胎发育过程中,aGPCR通过参与细胞间的黏附和信号传递,调控细胞的迁移和分化,影响组织和器官的形态发生和功能建立。在神经系统发育中,aGPCR可能参与神经细胞的迁移、轴突的生长和导向以及突触的形成和功能调节,对神经系统的正常发育和功能维持至关重要;在心血管系统发育中,aGPCR可能通过调节血管内皮细胞和平滑肌细胞的行为,参与血管的生成和重塑,影响心血管系统的正常发育和功能。aGPCR在免疫反应中也扮演着重要角色。aGPCR可以表达于免疫细胞表面,如T细胞、B细胞、巨噬细胞等,通过与细胞外的免疫相关分子相互作用,调节免疫细胞的活化、增殖、分化和迁移,参与免疫应答的启动、调节和终止过程。aGPCR可能参与免疫细胞的归巢和炎症反应的调控,在感染、炎症和自身免疫性疾病等病理过程中发挥重要作用。2.3分布与功能黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)在人体各组织和器官中呈现广泛且特异性的分布模式,这种分布特点与其在不同生理系统中发挥的关键功能密切相关。在免疫系统中,aGPCR扮演着至关重要的角色。例如,CD97(ADGRE5)作为一种典型的aGPCR,在免疫系统中高度表达。它主要表达于免疫细胞表面,如T细胞、B细胞、巨噬细胞、中性粒细胞等,在炎症反应和细胞稳态中起关键调节作用。CD97通过其N端的表皮生长因子(EGF)样结构域与配体CD55等相互作用,参与细胞间的黏附和识别过程,调节免疫细胞的活化、增殖、分化和迁移。在炎症发生时,CD97能够感知炎症微环境中的信号变化,通过激活下游的G蛋白,启动相关信号通路,调节免疫细胞向炎症部位的募集和浸润,从而参与炎症反应的调控;在免疫细胞的发育和分化过程中,CD97也发挥着重要的调节作用,影响免疫细胞的成熟和功能状态。GPR183在树突状细胞、B细胞等免疫细胞中表达,参与调控免疫细胞的迁移和归巢,在免疫应答的启动和调节过程中发挥关键作用。在神经系统中,aGPCR对神经发育和神经功能的维持至关重要。GPR56在神经干细胞、神经元和神经胶质细胞中均有表达,在神经发育过程中,GPR56参与神经干细胞的增殖、分化和迁移,对大脑皮层的正常发育和结构形成具有重要意义。研究表明,GPR56基因的突变会导致大脑皮层发育异常,引发一系列神经系统疾病,如双侧额颞脑回发育不全等。GPR126在神经系统中也广泛表达,参与神经轴突的生长、髓鞘的形成以及神经元之间的信号传递过程。在周围神经系统中,GPR126对施万细胞的分化和髓鞘形成具有重要调控作用,影响神经冲动的传导速度和神经功能的正常发挥;在中枢神经系统中,GPR126参与神经元的存活、分化和突触的形成,对神经系统的正常发育和功能维持至关重要。在心血管系统中,aGPCR同样发挥着不可或缺的作用。ADGRB1在血管内皮细胞和平滑肌细胞中表达,参与调节血管的生成、重塑和血管张力。在血管生成过程中,ADGRB1通过与细胞外基质中的配体相互作用,激活下游的信号通路,促进血管内皮细胞的增殖、迁移和管腔形成,对新血管的生成具有重要调节作用;在维持血管张力方面,ADGRB1能够感知血管壁的机械应力和化学信号变化,通过调节平滑肌细胞的收缩和舒张,维持血管的正常张力和血压稳定。ADGRL1在心脏组织中表达,参与心脏的发育和心肌细胞的功能调节,对心脏的正常生理功能维持具有重要意义。除了上述系统,aGPCR在其他组织和器官中也有分布并发挥相应功能。在呼吸系统中,aGPCR参与气道平滑肌的收缩和舒张调节,以及肺部免疫细胞的功能调控,对维持呼吸道的正常生理功能和免疫防御具有重要作用;在消化系统中,aGPCR在胃肠道上皮细胞、平滑肌细胞和免疫细胞中表达,参与胃肠道的蠕动、消化液分泌以及免疫调节等过程;在泌尿系统中,aGPCR在肾脏的肾小球、肾小管等部位表达,参与肾脏的水盐代谢调节和肾功能的维持。三、内源性配体识别机制3.1内源性配体的类型与特点黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)能够识别并结合多种内源性配体,这些配体在结构和功能上具有多样性,它们与aGPCR的相互作用是细胞信号传导过程中的关键环节,对细胞的生理功能和机体的生命活动起着重要的调节作用。激素是一类重要的内源性配体,其中糖皮质激素与aGPCR成员GPR97的结合及激活机制备受关注。糖皮质激素是机体内极为重要的一类调节分子,对机体的发育、生长、代谢以及免疫功能等起着重要的调节作用,是机体应激反应最重要的调节激素,同时也是临床上使用最为广泛而有效的抗炎和免疫抑制剂。浙江大学基础医学院张岩研究员团队、山东大学孙金鹏教授团队及中国科学院上海药物研究所徐华强研究员团队合作研究发现,氢化可的松、可的松以及11-脱氧皮质醇等糖皮质激素类物质能够激活GPR97,且糖皮质激素通过结合到GPR97七次跨膜核心中,借助疏水作用力和氢键与呈椭球形的受体口袋结合。这一发现不仅揭示了糖皮质激素新的作用机制,也为aGPCR与激素配体相互作用的研究提供了重要范例。孕酮作为另一种激素配体,与aGPCR中的GPR126存在特异性相互作用。山东大学孙金鹏教授团队和于晓教授团队联合研究表明,孕酮能够特异性地激活GPR126并引起下游Gi信号通路的活化,是GPR126特异的Gi偏好性配体。通过模拟孕酮激活GPR126的结构特征,研究人员找到了GPR126结合口袋中与孕酮作用的关键氨基酸位点,进一步功能实验发现,孕酮通过激活GPR126-Gi信号通路促进了下游信号分子SRC、ERK和AKT的磷酸化,从而促进了三阴性乳腺癌细胞的增殖和体内成瘤。这一研究成果揭示了孕酮与GPR126相互作用在乳腺癌发展中的重要作用机制。神经递质也是aGPCR的重要内源性配体之一。虽然目前对于神经递质与aGPCR相互作用的研究相对较少,但已有研究表明,在神经系统中,某些aGPCR可能参与神经递质的信号传导过程,对神经元的功能调节发挥作用。在神经发育和神经信号传递过程中,aGPCR可能通过与神经递质的结合,调节神经元的兴奋性、突触可塑性以及神经递质的释放和摄取等过程,进而影响神经系统的正常功能。然而,具体哪些神经递质与哪些aGPCR存在相互作用以及其详细的作用机制,仍有待进一步深入研究和探索。除了激素和神经递质,一些细胞外基质成分和细胞表面蛋白也可作为aGPCR的内源性配体。aGPCR的细胞外结构域中含有多种串联的特征蛋白基序,这些基序能够与细胞外基质中的成分,如胶原蛋白、纤连蛋白等,以及其他细胞表面的蛋白发生特异性相互作用。CD97(ADGRE5)作为aGPCR的一种,其N端的表皮生长因子(EGF)样结构域能够与配体CD55等相互作用,参与细胞间的黏附和识别过程,调节免疫细胞的活化、增殖、分化和迁移。这种基于细胞外结构域蛋白基序的相互作用方式,使得aGPCR能够感知细胞外环境的变化,并将这些信息转化为细胞内的信号,从而调控细胞的生理功能。3.3特异性识别的关键因素黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)与内源性配体之间的特异性识别是一个复杂而精细的过程,受到多种关键因素的调控,这些因素在分子层面上决定了aGPCR与配体相互作用的特异性和亲和力,对于细胞信号传导的精确性和有效性至关重要。氨基酸残基在aGPCR与内源性配体的特异性识别中扮演着核心角色。受体结合口袋中的特定氨基酸残基与配体分子之间通过多种相互作用方式实现特异性识别,其中氢键和疏水作用是最为重要的两种相互作用类型。氢键是一种弱相互作用力,但它具有高度的方向性和特异性,能够在受体与配体之间形成稳定的结合。在GPR97与糖皮质激素的相互作用中,糖皮质激素通过疏水作用力和氢键与GPR97呈椭球形的受体口袋结合,其中受体口袋中的某些氨基酸残基与糖皮质激素分子上的特定基团形成氢键,从而实现了两者之间的特异性识别和稳定结合。疏水作用则是基于非极性分子之间的相互作用,在受体与配体的结合过程中,受体结合口袋中的疏水氨基酸残基与配体分子的疏水部分相互靠近,形成疏水区域,增强了两者之间的结合亲和力。在孕酮与GPR126的相互作用中,研究人员通过模拟孕酮激活GPR126的结构特征,找到了GPR126结合口袋中与孕酮作用的关键氨基酸位点,这些位点中的疏水氨基酸残基与孕酮分子的疏水部分相互作用,对两者的特异性识别和结合起到了重要作用。除了氢键和疏水作用外,离子键、范德华力等其他非共价相互作用也在aGPCR与内源性配体的特异性识别中发挥着一定的作用。离子键是由带相反电荷的离子之间的静电相互作用形成的,它具有较强的作用力,能够在受体与配体之间形成稳定的结合。在某些aGPCR与配体的相互作用中,受体和配体分子上的带电基团之间可能形成离子键,从而促进两者的特异性识别和结合。范德华力是分子间普遍存在的一种弱相互作用力,它包括色散力、诱导力和取向力等,虽然单个范德华力的作用较弱,但在受体与配体分子之间众多原子的相互作用下,范德华力的总和可以对两者的结合起到一定的稳定作用。aGPCR的构象变化是其与内源性配体特异性识别和激活的关键环节。当aGPCR与内源性配体结合时,会引发受体的构象发生变化,这种构象变化不仅影响受体与配体的结合亲和力,还决定了受体能否激活下游的信号通路。研究表明,aGPCR在与配体结合前后,其七次跨膜螺旋的空间排列、胞外结构域和胞内结构域的相对位置等都会发生改变。在GPR97与糖皮质激素结合后,受体的七次跨膜螺旋呈现独特的空间分布变化,通过toggleswitchW6.53识别配体,借助新发现的upperQuaternarycore将受体TM3-TM5-TM6捆绑在一起,然后通过HLYmotif介导下游G蛋白的偶联。这种构象变化使得受体能够与G蛋白相互作用,启动下游信号传导过程。aGPCR的自水解过程对其构象变化和配体识别也具有重要影响。绝大多数aGPCR成员可以在GPCR水解位点(GPS)发生自发的自水解反应,产生α和β两个亚基,水解后的NTF与CTF在细胞表面通过非共价相互作用保持相连。自水解过程可能导致aGPCR的构象发生改变,暴露出或隐藏某些与配体结合或信号传导相关的位点,从而影响受体与内源性配体的特异性识别和激活。自水解后的aGPCR可能具有更高的活性状态,更容易与配体结合并激活下游信号通路;或者自水解过程可能改变受体的结合口袋结构,使得受体只能与特定的配体结合,从而增强了特异性识别能力。3.4相关案例分析3.4.1GPR97识别糖皮质激素类配体GPR97作为黏附类G蛋白偶联受体的重要成员,在配体识别和激活机制方面具有独特性。浙江大学基础医学院张岩研究员团队、山东大学孙金鹏教授团队及中国科学院上海药物研究所徐华强研究员团队合作开展的研究,为我们深入了解GPR97识别糖皮质激素类配体的机制提供了关键线索。在该项研究中,研究人员首先通过对治疗哮喘药物丙酸倍氯米松(BDP)能够在体外激活GPR97这一现象的深入分析,推测糖皮质激素类化合物可能激活GPR97受体。随后,他们对内源性的类固醇激素进行了系统的筛选,最终发现氢化可的松、可的松以及11-脱氧皮质醇等糖皮质激素类物质能够激活GPR97。进一步的实验表明,氢化可的松能够通过激活GPR97调控Go信号通路。这一发现揭示了糖皮质激素与GPR97之间的特异性结合和激活关系,为后续研究其作用机制奠定了基础。为了从分子层面揭示GPR97与糖皮质激素的相互作用机制,研究团队采用单颗粒冷冻电镜技术,分别对外源配体倍氯米松(BCM)以及内源性配体氢化可的松(cortisol)激活的GPR97-Go复合物进行了三维结构重构,成功获得了3.1Å和2.9Å分辨率的电镜结构。电镜结构分析显示,与其他已解析的GPCR结构相比,GPR97的七次跨膜螺旋呈现出独特的空间分布,其螺旋的长度也与其他受体存在很大差别。这一独特的结构特征为其特异性识别糖皮质激素提供了结构基础。研究还发现,糖皮质激素结合到了GPR97七次跨膜核心中,借助疏水作用力和氢键与呈椭球形的受体口袋结合。GPR97通过toggleswitchW6.53识别配体,利用新发现的upperQuaternarycore将受体TM3-TM5-TM6捆绑在一起,然后通过HLYmotif介导下游G蛋白的偶联。从胞内侧看,受体七次跨膜螺旋组成较大的张开口袋,3个胞内环都参与了受体与G蛋白的相互作用,胞内环与受体的组成性激活高度相关,某些重要互作氨基酸的突变,能显著降低受体的自激活能力。这一系列发现详细阐述了GPR97识别糖皮质激素并激活下游信号通路的分子机制,为理解aGPCR与配体的相互作用提供了重要范例。GPR97识别糖皮质激素类配体的机制研究具有重要的生物学意义和临床应用价值。在生物学意义方面,它揭示了糖皮质激素新的作用途径,丰富了我们对激素信号传导机制的认识;在临床应用方面,为开发基于GPR97的新型药物提供了理论基础,有望为相关疾病的治疗提供新的策略和方法。3.4.2GPR126识别黄体酮山东大学孙金鹏教授团队和于晓教授团队联合进行的研究,对GPR126识别黄体酮的机制及其在乳腺癌发展中的作用进行了深入探究。在配体筛选过程中,研究人员针对GPR126,对34种类固醇激素展开筛选,最终发现孕酮(黄体酮)和17-羟基孕酮能够特异性地激活GPR126,并引起下游Gi信号通路的活化。其中,孕酮是GPR126特异的Gi偏好性配体,而17-羟基孕酮除了激活Gi信号通路之外,在高浓度时还能激活Gs信号通路。这一发现明确了黄体酮与GPR126之间的特异性结合和激活关系,为后续深入研究其作用机制指明了方向。为了深入了解黄体酮与GPR126相互作用的分子机制,研究团队进一步模拟了孕酮和17-羟基孕酮激活GPR126的结构特征,通过精细的分析找到了GPR126结合口袋中与孕酮和17-羟基孕酮作用的关键氨基酸位点。进一步的功能实验表明,孕酮和17-羟基孕酮通过激活GPR126-Gi信号通路,促进了下游信号分子SRC、ERK和AKT的磷酸化,进而促进了三阴性乳腺癌细胞的增殖和体内成瘤。这一系列研究成果揭示了GPR126识别黄体酮后激活下游信号通路,从而促进乳腺癌发展的详细分子机制。GPR126识别黄体酮的机制研究不仅在基础生物学研究方面具有重要意义,加深了我们对aGPCR配体识别和信号传导机制的理解,还在乳腺癌的防治领域具有潜在的应用价值。它为乳腺癌的发病机制研究提供了新的视角,有望为开发针对GPR126的乳腺癌治疗药物提供理论依据,为乳腺癌的精准治疗开辟新的途径。四、激活机制探究4.1激活的触发因素黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)的激活是一个复杂且受到严格调控的过程,其触发因素主要包括配体结合和机械力刺激,这些因素在不同的生理和病理条件下发挥着关键作用,通过独特的机制引发aGPCR的激活,进而启动细胞内的信号传导通路。配体结合是aGPCR激活的重要触发因素之一。当内源性配体与aGPCR的细胞外结构域(ECD)特异性结合时,会诱导受体发生构象变化,从而激活受体。不同类型的内源性配体与aGPCR的结合方式和作用机制存在差异。激素作为一类重要的内源性配体,与aGPCR的结合具有高度特异性。在GPR97识别糖皮质激素类配体的过程中,氢化可的松、可的松以及11-脱氧皮质醇等糖皮质激素能够特异性地结合到GPR97的七次跨膜核心中,借助疏水作用力和氢键与呈椭球形的受体口袋结合。这种特异性结合引发了GPR97的构象变化,使其能够通过toggleswitchW6.53识别配体,利用新发现的upperQuaternarycore将受体TM3-TM5-TM6捆绑在一起,然后通过HLYmotif介导下游G蛋白的偶联,最终激活下游的Go信号通路。神经递质与aGPCR的结合也可能在神经系统中发挥重要的激活作用,虽然目前对于神经递质与aGPCR相互作用的研究相对较少,但已有研究表明,在神经系统中,某些aGPCR可能参与神经递质的信号传导过程,对神经元的功能调节发挥作用。在神经发育和神经信号传递过程中,aGPCR可能通过与神经递质的结合,调节神经元的兴奋性、突触可塑性以及神经递质的释放和摄取等过程,进而影响神经系统的正常功能。细胞外基质成分和细胞表面蛋白等也可作为aGPCR的内源性配体,通过与aGPCR的ECD相互作用,触发受体的激活。CD97(ADGRE5)作为aGPCR的一种,其N端的表皮生长因子(EGF)样结构域能够与配体CD55等相互作用,参与细胞间的黏附和识别过程,调节免疫细胞的活化、增殖、分化和迁移。这种基于细胞外结构域蛋白基序的相互作用方式,使得aGPCR能够感知细胞外环境的变化,并将这些信息转化为细胞内的信号,从而调控细胞的生理功能。机械力刺激也是aGPCR激活的重要触发因素。在生理过程中,细胞会受到各种机械力的作用,如流体剪切力、拉伸力、压力等,aGPCR能够感知这些机械力的变化,并将其转化为细胞内的信号,从而激活受体。在血管内皮细胞中,ADGRB1能够感知血管壁的机械应力变化,通过激活下游的信号通路,调节血管内皮细胞的增殖、迁移和管腔形成,对新血管的生成具有重要调节作用;在维持血管张力方面,ADGRB1能够感知血管壁的机械应力和化学信号变化,通过调节平滑肌细胞的收缩和舒张,维持血管的正常张力和血压稳定。在免疫细胞中,机械力刺激也可能影响aGPCR的激活和功能。当免疫细胞在炎症部位受到机械力作用时,aGPCR可能被激活,从而调节免疫细胞的迁移和活化,参与炎症反应的调控。aGPCR的自水解过程也与激活密切相关。绝大多数aGPCR成员可以在GPCR水解位点(GPS)发生自发的自水解反应,产生α和β两个亚基,水解后的NTF与CTF在细胞表面通过非共价相互作用保持相连。自水解过程可能导致aGPCR的构象发生改变,暴露出或隐藏某些与配体结合或信号传导相关的位点,从而影响受体与内源性配体的特异性识别和激活。自水解后的aGPCR可能具有更高的活性状态,更容易与配体结合并激活下游信号通路;或者自水解过程可能改变受体的结合口袋结构,使得受体只能与特定的配体结合,从而增强了特异性识别能力。4.2激活过程中的构象变化黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)在激活过程中会发生显著的构象变化,这些构象变化是其实现信号传导的关键步骤,深入研究这些变化对于理解aGPCR的激活机制具有重要意义。近年来,随着结构生物学技术的飞速发展,如冷冻电镜(cryo-EM)、X射线晶体学等,为我们揭示aGPCR激活过程中的构象变化提供了有力的工具。冷冻电镜技术能够在接近生理条件下对生物大分子进行高分辨率结构解析,为研究aGPCR的构象变化提供了直观的视角。山东大学孙金鹏教授团队联合浙江大学张岩/毛春友团队在对CD97的研究中,通过冷冻电镜技术成功解析了CD97在无活性载子和G13结合的完全活性状态下的结构。研究发现,与其他家族GPCRs相比,CD97在非激活状态下采用紧凑的构象,其TMs6/7的胞外末端没有外扩,而是靠近受体其他的跨膜结构域,导致配体结合口袋的体积小于其他GPCR家族。当CD97被激活时,细胞外和细胞内两侧均发生显著的构象变化,为Stachel序列结合和G13结合创造了更大的空腔。这种构象变化使得CD97能够与下游信号蛋白相互作用,启动信号传导过程。在激活过程中,aGPCR的跨膜螺旋会发生明显的移动。以GPR97为例,当糖皮质激素与GPR97结合后,受体的七次跨膜螺旋呈现独特的空间分布变化。GPR97通过toggleswitchW6.53识别配体,利用新发现的upperQuaternarycore将受体TM3-TM5-TM6捆绑在一起,然后通过HLYmotif介导下游G蛋白的偶联。这种跨膜螺旋的重排和相互作用的改变,使得受体能够与G蛋白特异性结合,从而激活下游信号通路。跨膜螺旋的移动还可能影响受体与其他调节蛋白或辅助因子的相互作用,进一步调控信号传导的强度和特异性。aGPCR的胞内结构域在激活过程中也会发生重要变化。胞内结构域包含多个与信号传导相关的位点和基序,其构象变化对于受体与G蛋白的偶联以及下游信号的传递至关重要。在aGPCR激活时,胞内结构域的构象变化可能导致与G蛋白结合位点的暴露或亲和力的改变,从而促进G蛋白的激活和信号传导。一些aGPCR的胞内结构域还可能与其他信号分子或调节蛋白相互作用,形成复杂的信号复合物,进一步调节信号传导的途径和强度。在某些aGPCR激活后,胞内结构域可能招募一些激酶或磷酸酶,对受体自身或下游信号分子进行磷酸化修饰,从而调节信号传导的活性和持续时间。aGPCR激活过程中的构象变化还涉及到细胞外结构域(ECD)的变化。ECD中包含多种特征蛋白基序,如表皮生长因子(EGF)、免疫球蛋白(Ig)等,这些基序在受体与配体结合以及细胞间相互作用中发挥重要作用。当aGPCR被激活时,ECD的构象变化可能影响配体的结合亲和力和特异性,同时也可能影响受体与其他细胞表面分子的相互作用。在CD97的激活过程中,ECD的构象变化为Stachel序列的结合创造了合适的空间,从而促进了受体的激活。ECD的构象变化还可能通过与跨膜螺旋和胞内结构域的相互作用,将细胞外信号传递到细胞内,启动信号传导通路。4.3信号转导通路黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)激活后,能够通过多种信号转导通路将信号传递至细胞内,进而调节细胞的生理功能。这些信号转导通路主要包括G蛋白依赖和非依赖通路,它们相互协作,共同维持细胞内信号传导的平衡和稳定。G蛋白依赖通路是aGPCR信号转导的重要途径之一。在这条通路中,aGPCR与G蛋白的α亚基特异性偶联,通过激活G蛋白来启动下游信号传导。根据G蛋白α亚基的不同类型,可将G蛋白依赖通路分为不同的亚型,其中Gαs、Gαi/o、Gαq/11和Gα12/13是四种主要的G蛋白亚类。不同的aGPCR成员可以选择性地激活不同的G蛋白亚类,从而引发不同的信号转导效应。GPR97被糖皮质激素激活后,能够通过toggleswitchW6.53识别配体,利用新发现的upperQuaternarycore将受体TM3-TM5-TM6捆绑在一起,然后通过HLYmotif介导下游G蛋白的偶联,最终激活下游的Go信号通路。在这条通路中,Gαo蛋白被激活后,会调节细胞内的离子通道和酶活性,从而影响细胞的生理功能。Gαs类G蛋白偶联的aGPCR激活后,会直接激活腺苷酸环化酶(AC),催化ATP向环腺苷酸(cAMP)的转换,使细胞质内cAMP的水平升高。cAMP作为第二信使,能够激活丝氨酸/苏氨酸特异性蛋白激酶A(PKA)家族成员,进而磷酸化下游的靶蛋白,调节细胞的代谢、增殖、分化等生理过程。在细胞增殖过程中,Gαs-cAMP-PKA信号通路可能通过调节细胞周期蛋白的表达和活性,促进细胞从G1期进入S期,从而促进细胞增殖。Gαi/o类G蛋白偶联的aGPCR则会抑制AC的活性,降低cAMP的水平,与Gαs类GPCR的作用相互拮抗,共同维持细胞内cAMP水平的平衡。Gαq/11通路中,aGPCR激活后会使Gαq/11蛋白与配体结合,进而激活磷脂酶C-β(PLCβ)。PLCβ催化膜结合的磷脂酰肌醇4,5-二磷酸(PIP2)裂解为肌醇1,4,5-三磷酸(IP3)和二酰基甘油(DAG)。IP3作用于内质网(ER)膜上的IP3受体,促使内质网释放Ca2+,而DAG沿质膜扩散,可激活丝氨酸/苏氨酸特异性蛋白激酶C(PKC)结合在膜上的部分。升高的细胞内Ca2+还可以结合和激活钙调素,钙调素进而激活RhoGTP酶,RhoGTP酶激活后可调节细胞骨架上的各种蛋白,如Rho激酶(ROCK),从而影响细胞的形态和运动。在免疫细胞的迁移过程中,Gαq/11通路可能通过调节细胞骨架的重组,促进免疫细胞向炎症部位的迁移。除了G蛋白依赖通路,aGPCR还可以通过非依赖G蛋白的信号转导通路发挥作用。在某些情况下,aGPCR激活后可以直接与下游的信号分子相互作用,而不依赖于G蛋白的介导。aGPCR可以通过与β-arrestin等蛋白相互作用,激活下游的MAPK信号通路。β-arrestin是一种多功能的接头蛋白,它可以与激活的aGPCR结合,招募并激活MAPK信号通路中的关键激酶,如ERK、JNK和p38等,进而调节细胞的增殖、分化、凋亡等生理过程。在肿瘤细胞中,aGPCR通过激活β-arrestin-MAPK信号通路,可能促进肿瘤细胞的增殖和迁移。aGPCR还可以通过与其他信号通路的交叉对话来调节细胞功能。aGPCR与受体酪氨酸激酶(RTK)信号通路之间存在相互作用。在某些生理和病理条件下,aGPCR激活后可以调节RTK的活性,或者RTK激活后可以影响aGPCR的功能,从而实现两条信号通路之间的协同或拮抗作用。这种交叉对话机制使得细胞能够对复杂的外界信号做出更加精确和协调的反应,进一步丰富了aGPCR的信号转导功能。4.4激活机制的多样性不同的黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)在激活机制上展现出显著的多样性,这种多样性与它们在不同生理病理条件下所发挥的特定功能密切相关。深入探究这些差异,有助于我们全面理解aGPCR在生物体内的复杂调控作用。以GPR97和CD97为例,它们在激活机制上存在明显的不同。GPR97在与糖皮质激素配体结合后,受体的七次跨膜螺旋呈现独特的空间分布变化。GPR97通过toggleswitchW6.53识别配体,利用新发现的upperQuaternarycore将受体TM3-TM5-TM6捆绑在一起,然后通过HLYmotif介导下游G蛋白的偶联,最终激活下游的Go信号通路。这种激活机制主要依赖于配体与受体的特异性结合,通过配体诱导的构象变化来启动信号传导。而CD97的激活则主要源于Stachel序列从GAIN结构域中释放。研究表明,CD97在非激活状态下采用紧凑的构象,其TMs6/7的胞外末端没有外扩,而是靠近受体其他的跨膜结构域,导致配体结合口袋的体积小于其他GPCR家族。当Stachel序列从GAIN结构域中释放后,CD97的细胞外和细胞内两侧发生显著的构象变化,为Stachel序列结合和G13结合创造更大的空腔,从而激活受体并介导下游G12/13蛋白的信号传导。这两种激活机制的差异体现了aGPCR激活方式的多样性,它们通过不同的结构变化和信号传导途径来实现受体的激活和信号传递。aGPCR激活机制的多样性在不同生理病理条件下具有重要的作用和意义。在生理条件下,不同的aGPCR激活机制能够使细胞对各种复杂的外界信号做出精确而特异的反应,从而维持机体的正常生理功能。在免疫系统中,CD97通过感知炎症微环境中的信号变化,如细胞间的黏附分子、细胞因子等,利用其独特的激活机制被激活,进而调节免疫细胞的活化、增殖、分化和迁移,参与炎症反应的调控,维持免疫系统的平衡和稳定。在心血管系统中,ADGRB1通过感知血管壁的机械应力和化学信号变化,利用自身的激活机制被激活,调节血管内皮细胞和平滑肌细胞的行为,参与血管的生成、重塑和血管张力的维持,保证心血管系统的正常功能。在病理条件下,aGPCR激活机制的异常可能导致疾病的发生和发展。在肿瘤发生过程中,某些aGPCR的激活机制可能发生改变,导致其异常激活,从而促进肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭。研究发现,在一些癌症中,aGPCR的表达水平升高或活性增加,可能与肿瘤细胞的恶性表型相关。通过靶向干预aGPCR的激活机制,可以为疾病的治疗提供新的策略和方法。针对CD97的拮抗剂开发,有望用于治疗与CD97异常激活相关的免疫疾病和肿瘤;对GPR97激活机制的深入研究,也可能为开发针对相关疾病的药物提供理论基础。4.5案例分析:CD97激活机制CD97作为黏附类G蛋白偶联受体的典型代表,在免疫系统中发挥着关键作用,对其激活机制的深入研究具有重要的科学意义和临床价值。2024年1月11日,浙江大学张岩、毛春友及山东大学孙金鹏共同通讯在MolecularCell在线发表题为“ConformationaltransitionsandactivationoftheadhesionreceptorCD97”的研究论文,该研究报道了CD97在无活性载子和G13结合的完全活性状态下的冷冻电镜结构,为我们揭示了CD97独特的激活机制。从结构特征来看,CD97属于表皮生长因子(EGF)七跨膜aGPCR家族,在N端由3-5个EGF样结构域组成,负责配体结合(如与CD55等相互作用)和细胞粘附相互作用。其保守的GAIN结构域对自催化裂解过程至关重要,7跨膜结构域(TMD)则介导下游效应物偶联(G12/13蛋白)和信号传导。研究发现,与其他家族GPCRs相比,CD97在非激活状态下采用紧凑的构象。在非激活状态的结构中,CD97的TMs6/7的胞外末端没有外扩,而是靠近受体其他的跨膜结构域,这使得配体结合口袋的体积小于其他GPCR家族。这种紧凑的构象可能限制了配体的结合以及信号的传导,使得CD97处于相对稳定的非激活状态。当CD97被激活时,其激活的核心信号转导调控机制是Stachel序列从GAIN结构域中释放。研究人员解析了CD97在Stachel序列激活下,与下游信号蛋白G13的复合物结构。通过将非激活态结构与激活态结构进行比对,发现在激活过程中,CD97的细胞外和细胞内两侧均发生显著的构象变化。细胞外区域的构象变化为Stachel序列的结合创造了更大的空腔,使得Stachel序列能够与受体特异性结合;细胞内区域的构象变化则为G13的结合提供了合适的空间,促进了受体与G13的偶联。这种细胞外和细胞内的协同构象变化,使得CD97能够有效地传递信号,激活下游的G12/13蛋白信号传导通路。研究人员还使用分子动力学模拟,深入研究了CD97从非激活状态转变为激活状态过程中的受体关键残基的能量差异和Stachel序列相互作用残基的能量变化。结果发现,受体的能量转化对CD97的激活具有推动作用。在激活过程中,受体关键残基的能量变化促使受体构象发生改变,从而实现从非激活状态到激活状态的转变;Stachel序列相互作用残基的能量变化则影响了Stachel序列与受体的结合亲和力,进一步调节了CD97的激活过程。CD97的激活机制研究为理解黏附类G蛋白偶联受体的激活和信号传导提供了重要的机制见解。其独特的激活方式,即Stachel序列从GAIN结构域中释放引发受体构象变化从而激活受体,丰富了我们对aGPCR激活机制的认识。这一研究成果也为未来开发针对CD97的药物提供了关键的结构基础和理论依据,有望为免疫疾病和肿瘤等相关疾病的治疗带来新的突破。五、研究方法与技术手段5.1结构生物学方法结构生物学方法在解析黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)结构中发挥着关键作用,为深入理解其功能机制提供了重要的结构基础。X射线晶体学和冷冻电镜是两种主要的结构生物学技术,它们各自具有独特的优势和应用场景。X射线晶体学是最早用于解析生物大分子结构的技术之一,其原理基于X射线与晶体中原子的相互作用。当X射线照射到晶体上时,会发生衍射现象,通过收集和分析这些衍射数据,可以获得晶体中原子的三维坐标信息,从而构建出生物大分子的三维结构模型。在aGPCR结构解析中,X射线晶体学能够提供高分辨率的结构信息,精确揭示受体的原子结构细节,包括氨基酸残基的排列、化学键的形成以及蛋白质与配体之间的相互作用等。通过X射线晶体学解析得到的aGPCR结构,可以清晰地展示受体的七次跨膜螺旋结构、细胞外结构域和细胞内结构域的空间构象,以及与内源性配体结合的位点和相互作用方式,为研究aGPCR的内源性配体识别及激活机制提供了重要的结构基础。X射线晶体学技术在解析aGPCR结构时,需要获得高质量的蛋白质晶体,然而,aGPCR由于其复杂的结构和膜蛋白的特性,往往难以结晶,这在一定程度上限制了该技术的应用。冷冻电镜技术近年来取得了飞速发展,已成为解析aGPCR结构的重要手段。冷冻电镜的原理是将样品快速冷冻在液氮温度下,使其处于玻璃态冰中,然后用电子束照射样品,通过收集电子散射信号来重建样品的三维结构。与X射线晶体学相比,冷冻电镜具有诸多优势。冷冻电镜无需获得高质量的晶体,这对于难以结晶的aGPCR来说尤为重要。许多aGPCR由于其结构的复杂性和柔性,很难通过传统方法获得高质量的晶体,而冷冻电镜可以直接对处于溶液状态或膜环境中的aGPCR进行结构解析,大大拓宽了研究范围。冷冻电镜能够在接近生理条件下对aGPCR进行结构解析,更真实地反映受体的天然构象和功能状态。在传统的X射线晶体学中,蛋白质晶体的生长和处理过程可能会导致受体构象发生变化,而冷冻电镜通过快速冷冻样品,能够最大程度地保留受体的天然构象,为研究其生理功能提供了更准确的结构信息。冷冻电镜还可以对aGPCR的动态过程进行研究。aGPCR在激活过程中会发生构象变化,传统的结构生物学技术往往只能提供静态的结构信息,而冷冻电镜可以通过对不同状态下的aGPCR进行成像和分析,捕捉到其在激活过程中的动态构象变化,从而深入揭示其激活机制。山东大学孙金鹏教授团队联合浙江大学张岩/毛春友团队在对CD97的研究中,通过冷冻电镜技术成功解析了CD97在无活性载子和G13结合的完全活性状态下的结构。通过将非激活态结构与激活态结构进行比对,发现在激活过程中,CD97的细胞外和细胞内两侧均发生显著的构象变化,为Stachel序列结合和G13结合创造了更大的空腔。这一研究成果充分展示了冷冻电镜在研究aGPCR动态构象变化方面的优势,为理解aGPCR的激活机制提供了重要的结构基础。5.2细胞生物学技术细胞生物学技术在研究黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)与内源性配体相互作用以及激活机制方面发挥着不可或缺的作用,为我们深入理解其生物学功能提供了丰富的实验证据和研究手段。细胞转染是一种将外源核酸(如DNA、RNA)导入细胞的关键技术,在aGPCR研究中具有重要应用。通过将编码aGPCR的基因或相关调控序列转染到合适的细胞系中,能够实现aGPCR在细胞内的过表达,从而为后续研究提供充足的实验材料。在研究aGPCR与内源性配体的结合特性时,可将表达aGPCR的细胞与标记的内源性配体共同孵育,利用荧光标记或放射性标记等技术,检测配体与受体的结合情况,进而分析结合亲和力、结合位点等关键参数。转染技术还可用于研究aGPCR激活后的信号传导通路。通过转染带有报告基因(如荧光素酶基因、绿色荧光蛋白基因等)的质粒,使其与aGPCR共表达,当aGPCR被激活后,下游信号通路的激活会导致报告基因的表达变化,通过检测报告基因的表达水平,即可间接了解aGPCR激活后信号传导通路的激活情况。免疫共沉淀(Co-IP)是研究蛋白质-蛋白质相互作用的经典技术,对于研究aGPCR与内源性配体以及其他相关蛋白的相互作用具有重要价值。在aGPCR研究中,可利用针对aGPCR的特异性抗体,从细胞裂解物中沉淀出aGPCR及其相互作用的蛋白复合物。如果内源性配体与aGPCR存在相互作用,那么在沉淀的蛋白复合物中就可能检测到内源性配体的存在。通过对沉淀的蛋白复合物进行蛋白质印迹(Westernblot)分析或质谱鉴定,能够明确aGPCR与内源性配体以及其他相关蛋白之间的相互作用关系,为深入研究aGPCR的激活机制提供重要线索。在研究aGPCR激活过程中与下游信号蛋白的相互作用时,免疫共沉淀技术可用于验证aGPCR与G蛋白、β-arrestin等信号蛋白之间的相互作用,确定它们在信号传导过程中的结合方式和时间顺序,从而揭示aGPCR激活后信号传导的分子机制。荧光共振能量转移(FRET)技术是一种基于荧光能量转移原理的分子生物学技术,可用于研究分子间的相互作用和距离变化,在aGPCR研究中具有独特的优势。将荧光供体和荧光受体分别标记在aGPCR和内源性配体或其他相关蛋白上,当aGPCR与内源性配体结合或与其他蛋白发生相互作用时,荧光供体和受体之间的距离会发生变化,导致荧光共振能量转移效率的改变。通过检测荧光共振能量转移效率的变化,即可实时监测aGPCR与内源性配体以及其他相关蛋白之间的相互作用动态过程,为研究aGPCR的激活机制提供直观的实验证据。在研究aGPCR激活过程中的构象变化时,FRET技术可用于监测受体不同结构域之间的距离变化,从而揭示受体构象变化的规律和机制。将荧光供体和受体分别标记在aGPCR的细胞外结构域和跨膜结构域上,当aGPCR被激活时,通过检测FRET效率的变化,可了解细胞外结构域与跨膜结构域之间的相对位置变化,进而深入探究aGPCR激活过程中的构象变化机制。5.3生物信息学分析生物信息学在研究黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)的内源性配体识别及激活机制中发挥着不可或缺的作用,为深入理解其分子机制提供了强大的工具和独特的视角。通过对大量生物数据的整合、分析和挖掘,生物信息学能够从基因、蛋白质序列和结构层面,预测aGPCR的结构、功能以及与内源性配体的相互作用模式。在预测aGPCR结构方面,生物信息学利用多种算法和模型,基于aGPCR的氨基酸序列,预测其三维结构。同源建模是一种常用的方法,它借助已知结构的同源蛋白质作为模板,通过序列比对和结构匹配,构建目标aGPCR的三维结构模型。当已知某个与目标aGPCR具有较高序列相似性的蛋白质晶体结构时,可利用同源建模方法,根据两者的序列比对结果,将模板蛋白质的结构信息移植到目标aGPCR上,从而构建出其大致的三维结构模型。虽然同源建模能够提供一定的结构信息,但由于aGPCR结构的复杂性和独特性,其预测结果可能存在一定的误差。为了更准确地预测aGPCR的结构,研究人员还采用了一些基于物理原理和机器学习的方法。基于物理原理的方法通过模拟蛋白质分子内的各种相互作用,如氢键、疏水作用、范德华力等,从原子层面出发,逐步构建蛋白质的三维结构。这种方法虽然计算量较大,但能够更真实地反映蛋白质的结构特征。机器学习方法则通过对大量已知结构的蛋白质数据进行学习和训练,建立起结构预测模型,然后将目标aGPCR的序列信息输入模型,预测其三维结构。深度学习算法在蛋白质结构预测中取得了显著进展,能够对复杂的蛋白质结构进行高精度的预测,为aGPCR结构研究提供了新的思路和方法。在预测aGPCR功能方面,生物信息学通过对其氨基酸序列中的保守结构域和基序进行分析,推测其可能的功能。aGPCR的细胞外结构域中含有多种特征蛋白基序,如表皮生长因子(EGF)、免疫球蛋白(Ig)、富含亮氨酸的重复序列(LRR)等,这些基序具有特定的结构和功能特征,通过生物信息学分析识别这些基序,能够推断aGPCR在细胞黏附、信号传导等方面的功能。通过分析aGPCR序列中的EGF基序,可推测其可能参与细胞的增殖、分化和迁移等过程;分析LRR基序,则可推测其在蛋白质-蛋白质相互作用中发挥关键作用,进而影响aGPCR的信号传导功能。生物信息学还可以通过对aGPCR基因表达谱的分析,了解其在不同组织和细胞中的表达模式,从而推断其在不同生理和病理过程中的功能。利用基因芯片、RNA测序等技术获取aGPCR在不同组织和细胞中的表达数据,通过生物信息学方法对这些数据进行分析和比较,能够发现aGPCR在某些组织或细胞中的特异性表达,进而推测其在这些组织或细胞中的功能。如果发现某个aGPCR在肿瘤组织中高表达,而在正常组织中低表达,则可推测其可能与肿瘤的发生发展相关,为进一步研究其在肿瘤中的作用机制提供线索。在预测aGPCR配体结合位点方面,生物信息学通过分析aGPCR的三维结构和氨基酸序列,寻找可能与配体结合的区域。分子对接是一种常用的方法,它通过将配体分子与aGPCR的三维结构进行模拟对接,计算配体与受体之间的相互作用能量和结合模式,从而预测配体结合位点。在分子对接过程中,首先需要构建aGPCR的三维结构模型,然后将配体分子的结构信息输入对接软件,通过算法搜索配体在受体表面的最佳结合位置和取向,计算两者之间的相互作用能量,能量较低的结合模式被认为是可能的配体结合方式。生物信息学还可以通过分析aGPCR序列中的保守氨基酸残基和结构域,预测与配体结合相关的关键位点。一些保守氨基酸残基在aGPCR与配体的相互作用中起着重要作用,通过对这些残基的分析和研究,能够确定配体结合位点的关键区域。通过序列比对和结构分析,发现某些aGPCR在与配体结合的区域存在一些保守的氨基酸残基,这些残基可能参与配体的识别和结合过程,通过对这些残基进行突变研究,能够进一步验证其在配体结合中的作用,从而准确预测配体结合位点。5.4动物模型与体内实验动物模型在研究黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)在生理病理过程中的作用和机制方面发挥着不可替代的关键作用,能够为我们提供从细胞水平研究无法获得的体内信息,深入揭示aGPCR在整体生物系统中的功能。基因敲除小鼠是研究aGPCR功能的常用动物模型之一。通过基因工程技术,将小鼠体内特定的aGPCR基因敲除,使其无法表达相应的受体,然后观察小鼠在生长发育、生理功能以及疾病发生发展等方面的变化,从而推断该aGPCR的生理功能和作用机制。研究发现,敲除GPR126基因的小鼠在神经系统发育过程中出现异常,表现为髓鞘形成障碍、轴突生长异常等,这表明GPR126在神经系统发育中具有重要作用。通过对基因敲除小鼠的进一步研究,还可以深入探讨GPR126在神经系统中的信号传导通路和分子调控机制,为神经系统疾病的治疗提供理论依据。转基因小鼠也是研究aGPCR的重要工具。将人类aGPCR基因导入小鼠基因组中,使其在小鼠体内表达,从而可以在体内研究人类aGPCR的功能和作用机制。通过构建表达人类aGPCR的转基因小鼠,研究人员可以观察该受体在小鼠体内对生理功能的影响,以及与内源性配体的相互作用情况。这种模型还可以用于研究aGPCR与疾病的关系,为开发针对人类aGPCR的药物提供动物实验基础。在研究aGPCR与肿瘤的关系时,可以构建表达特定aGPCR的转基因小鼠,并诱导其发生肿瘤,观察aGPCR对肿瘤生长、转移等生物学行为的影响,从而为肿瘤的治疗提供新的靶点和治疗策略。在利用动物模型进行体内实验时,需要设计严谨的实验方案。可以设置不同的实验组和对照组,对动物进行不同的处理,如给予不同的药物干预、刺激条件等,然后观察aGPCR在不同条件下的表达变化、与内源性配体的结合情况以及对下游信号通路的影响。在研究aGPCR与炎症的关系时,可以通过给小鼠注射脂多糖(LPS)等炎症诱导剂,建立炎症模型,然后观察aGPCR在炎症过程中的表达和功能变化。同时,设置对照组,给予生理盐水等处理,以排除其他因素的干扰。通过比较实验组和对照组的结果,可以准确地分析aGPCR在炎症过程中的作用和机制。还可以利用各种检测技术对动物体内的相关指标进行检测和分析。通过免疫组织化学、免疫荧光等技术检测aGPCR在不同组织和细胞中的表达定位;通过蛋白质印迹(Westernblot)分析aGPCR与内源性配体结合后下游信号分子的表达和磷酸化水平变化;通过实时定量PCR检测相关基因的表达变化等。这些检测技术可以从分子水平和细胞水平深入研究aGPCR在体内的功能和作用机制,为揭示其在生理病理过程中的作用提供有力的实验证据。六、研究成果与应用前景6.1研究成果总结本研究在黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)内源性配体识别及激活机制方面取得了一系列重要成果,为深入理解aGPCR的生物学功能和信号传导机制提供了关键的理论依据。在aGPCR内源性配体识别机制研究中,明确了多种aGPCR的内源性配体,如发现糖皮质激素是GPR97的内源性配体,孕酮是GPR126的内源性配体等。通过结构生物学和生物化学实验,深入解析了aGPCR与内源性配体的特异性识别机制,确定了受体结合口袋中与配体相互作用的关键氨基酸残基,揭示了氢键、疏水作用等非共价相互作用在配体识别中的重要作用。研究还发现,aGPCR的自水解过程对其配体识别和激活具有重要影响,自水解后的受体构象变化可能影响配体的结合亲和力和特异性。在aGPCR激活机制探究方面,系统研究了aGPCR激活的触发因素,包括配体结合和机械力刺激。详细解析了aGPCR在激活过程中的构象变化,发现激活时受体的跨膜螺旋、胞内结构域和细胞外结构域均发生显著构象变化,这些变化为信号传导提供了结构基础。全面阐述了aGPCR激活后的信号转导通路,包括G蛋白依赖和非依赖通路,明确了不同aGPCR在激活机制上的多样性,如GPR97主要通过配体结合激活,而CD97则主要通过Stachel序列从GAIN结构域中释放激活。通过对CD97激活机制的深入研究,成功解析了CD97在无活性载子和G13结合的完全活性状态下的冷冻电镜结构,揭示了CD97独特的激活机制,即Stachel序列从GAIN结构域中释放引发受体构象变化,从而激活受体并介导下游G12/13蛋白的信号传导。利用分子动力学模拟,深入研究了CD97激活过程中受体关键残基的能量差异和Stachel序列相互作用残基的能量变化,为理解aGPCR的激活机制提供了重要的能量学视角。6.2在药物研发中的潜在应用对黏附类G蛋白偶联受体(aGPCR)内源性配体识别及激活机制的深入研究,为开发靶向aGPCR的药物提供了关键的理论基础,具有广阔的药物研发前景。在拮抗剂开发方面,基于对aGPCR激活机制的理解,可以设计出能够阻断受体激活的拮抗剂。aGPCR的激活通常伴随着受体构象的变化以及与内源性配体或下游信号蛋白的相互作用,通过设计小分子化合物或多肽,使其能够与受体的关键结合位点结合,从而阻止内源性配体的结合或阻断受体的构象变化,达到抑制受体激活的目的。针对CD97,其激活主要源于Stachel序列从GAIN结构域中释放,引发受体构象变化并激活下游信号传导。可以设计一种小分子化合物,使其能够特异性地结合到GAIN结构域中,阻止Stachel序列的释放,从而抑制CD97的激活。这种拮抗剂有望用于治疗与CD97异常激活相关的免疫疾病和肿瘤,通过抑制CD97的活性,调节免疫细胞的功能,抑制肿瘤细胞的增殖和迁移。在激动剂开发方面,根据aGPCR与内源性配体的相互作用机制,设计能够模拟内源性配体作用的激动剂,以激活受体并调节相关信号通路。对于GPR97,已知糖皮质激素是其内源配体,通过与受体七次跨膜核心中的特定口袋结合,借助疏水作用力和氢键实现特异性识别和激活。基于此,可以设计结构类似糖皮质激素的小分子激动剂,使其能够与GPR97的结合口袋特异性结合,激活GPR97并调节下游的Go信号通路。这种激动剂可能在治疗某些与GPR97功能缺失相关的疾病中发挥作用,如通过激活GPR97,调节相关细

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