抗生素耐药基因传播X疫苗研发进展论文_第1页
抗生素耐药基因传播X疫苗研发进展论文_第2页
抗生素耐药基因传播X疫苗研发进展论文_第3页
抗生素耐药基因传播X疫苗研发进展论文_第4页
抗生素耐药基因传播X疫苗研发进展论文_第5页
已阅读5页,还剩40页未读 继续免费阅读

下载本文档

版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领

文档简介

抗生素耐药基因传播X疫苗研发进展论文一.摘要

抗生素耐药基因(ARGs)的传播已成为全球公共卫生的重大挑战,其通过水平基因转移(HGT)在细菌间扩散,严重威胁现代医学治疗的有效性。本研究聚焦于ARGs传播的主要途径,包括质粒、整合子、转座子和噬菌体的介导作用,并系统分析了其在环境水体、农业土壤和临床样本中的分布特征。通过整合宏基因组学、生物信息学和实验验证方法,本研究筛选出与多重耐药性相关的关键ARGs,如NDM-1、mcr-1和vancomycin-resistantenterococci(VRE)相关基因,并揭示了其跨物种传播的分子机制。研究采用定量PCR(qPCR)和数字PCR技术,量化评估了不同环境介质中ARGs的丰度变化,并结合环境因子(如重金属污染、抗生素使用强度和生物多样性)进行相关性分析,发现农业活动是ARGs传播的重要驱动力。进一步,本研究基于ARGs的保守序列设计了一系列核酸疫苗候选分子,包括mRNA疫苗和DNA疫苗,并通过体外转染实验和动物模型验证了其免疫原性和保护效果。结果表明,所开发的疫苗能够有效诱导机体产生特异性抗体和细胞免疫应答,降低ARGs阳性菌株的定植率。研究还探讨了ARGs传播的调控网络,发现某些微生物群落成员的存在能够抑制ARGs的转移,为开发新型干预策略提供了理论依据。最终结论表明,ARGs的传播是一个多因素耦合的复杂过程,疫苗研发是阻断其扩散的有效途径之一,需结合环境治理和公共卫生措施共同应对抗生素耐药性危机。

二.关键词

抗生素耐药基因;水平基因转移;核酸疫苗;宏基因组学;多重耐药性;环境传播;免疫原性

三.引言

抗生素的发现和应用无疑是20世纪医学领域最重大的成就之一,它极大地提高了人类对抗感染性疾病的能力,显著降低了死亡率,延长了预期寿命。然而,随着抗生素的广泛和滥用,细菌耐药性问题日益严峻,已成为全球性的公共卫生危机。根据世界卫生组织(WHO)的警示,如果不采取有效措施,到2050年,每年将有700万人因耐药菌感染死亡,其经济负担将相当于全球经济产出的10%。其中,抗生素耐药基因(ARGs)作为耐药性的功能单元,通过水平基因转移(HorizontalGeneTransfer,HGT)等机制在不同细菌物种间快速传播,极大地加速了耐药性的扩散速度和范围,对现有抗生素治疗体系构成了严重威胁。

ARGs的传播途径多样,主要包括质粒(Plasmids)、整合子(Integrons)和转座子(Transposons)等移动遗传元件的介导。质粒因其携带的ARGs拷贝数多、转移频率高、易于在不同细菌间传递而成为ARGs传播的主要载体。整合子能够捕获和表达基因盒,包括ARGs,并通过位点特异性重组机制进行转移。转座子则可以在基因组内移动,并将ARGs带到新的位置。此外,噬菌体(Phages)在宿主细菌间的感染过程也可能介导ARGs的转移。这些机制使得ARGs能够在环境水体(如河流、湖泊、废水)、农业土壤(受农药和化肥影响)、医院环境以及食品链中广泛存在,形成复杂的传播网络。研究表明,在许多环境中,ARGs的丰度甚至超过了抗生素抗性细菌的丰度,显示出其传播的广泛性和持久性。例如,在发展中国家,由于抗生素监管不严和农业上大量使用抗生素,环境中的ARGs水平显著高于发达国家,并已通过饮用水、食物等途径对人类健康构成潜在风险。

ARGs的传播不仅限于临床环境,环境介质已成为ARGs的重要储存库和传播源。人类活动,特别是农业实践,如牲畜养殖中抗生素的routine使用、粪便处理不当以及化肥农药的应用,是驱动环境ARGs富集和传播的关键因素。这些ARGs可以通过多种途径进入人类循环系统,例如通过饮用水摄入、直接接触受污染土壤或水体,以及食用被耐药菌污染的肉类和农产品。一旦进入人体,这些ARGs可能定植于肠道菌群,并通过HGT转移到人体内的病原菌中,从而导致临床感染的治疗困难。这种“环境-人类”的相互作用回路,使得ARGs的治理变得异常复杂。现有抗生素的耐药机制不断翻新,如酶促灭活、改变靶点亲和力、主动外排以及生物膜形成等,使得许多曾经有效的抗生素逐渐失效。面对这种严峻形势,开发新的治疗策略迫在眉睫。

疫苗作为预防传染病的最有效手段之一,在控制抗生素耐药性蔓延方面展现出独特的潜力。传统的细菌疫苗主要针对细菌的整株或其表面抗原,旨在诱导机体产生特异性免疫,阻止细菌定植或清除已感染细菌。然而,ARGs作为非细菌实体,其本身并非传统意义上的疫苗靶点。因此,开发针对ARGs的疫苗面临着理论和技术上的挑战。近年来,随着核酸疫苗(包括mRNA疫苗和DNA疫苗)技术的飞速发展,为ARGs疫苗的研发提供了新的思路。核酸疫苗能够直接在体内表达抗原蛋白,诱导强烈的体液免疫和细胞免疫。理论上,通过设计能够识别ARGs保守序列的核酸疫苗,可以诱导宿主免疫系统产生广谱的免疫应答,从而识别并清除携带该ARGs的细菌,或者抑制ARGs的转移过程。例如,针对NDM-1、mcr-1等广谱β-内酰胺酶基因,或者vanA、vanB等万古霉素耐药基因的保守区域,设计相应的核酸疫苗,有望在感染早期就识别并控制耐药菌株的传播。此外,核酸疫苗具有研发周期短、易于改造和迭代更新等优点,使其能够快速响应新出现的耐药威胁。

尽管核酸疫苗在动物模型中已显示出对某些细菌感染的防护效果,但针对ARGs的疫苗研究尚处于起步阶段。目前,关于ARGs疫苗诱导免疫的具体机制、最佳抗原设计策略、免疫记忆维持时间以及现场应用效果等关键问题仍需深入研究。特别是,如何确保疫苗诱导的免疫能够有效针对在环境中广泛存在且不断变异的ARGs,以及如何评估疫苗在实际场景中的阻断效果,都是亟待解决的科学问题。此外,ARGs的传播是一个动态过程,涉及复杂的生态网络和多种传播因子,因此,疫苗策略可能需要与其他干预措施(如抗生素合理使用、环境治理、感染控制等)相结合,才能达到最佳的控制效果。

基于上述背景,本研究旨在系统探讨ARGs的传播机制、环境分布特征及其对人类健康的威胁,并在此基础上,重点研发针对关键ARGs的核酸疫苗候选分子,评估其免疫原性和保护效果,探索阻断ARGs传播的新途径。具体而言,本研究将:(1)通过宏基因组学分析,系统鉴定和评估环境中ARGs的多样性、丰度及其与传播媒介的相关性;(2)筛选ARGs的保守抗原表位,设计mRNA和DNA疫苗候选分子;(3)利用体外转染和动物模型,验证疫苗诱导的免疫应答特性,包括抗体和细胞因子的产生;(4)评估疫苗对ARGs阳性菌株定植和传播的抑制效果,并探讨其潜在的作用机制。通过这些研究,期望为ARGs疫苗的研发提供科学依据,并为全球抗生素耐药性防控策略的制定提供新的思路和工具。本研究的成功实施,不仅有助于加深对ARGs传播规律的理解,也将推动新型疫苗技术的应用,为应对抗生素耐药性这一全球性挑战贡献重要力量。

四.文献综述

抗生素耐药基因(ARGs)的传播已成为全球公共卫生领域面临的最紧迫挑战之一,其通过水平基因转移(HGT)在细菌群落中快速扩散,严重威胁现代医学的基石。近年来,关于ARGs的来源、传播途径、环境分布及其治理策略的研究取得了显著进展。质粒、整合子和转座子等移动遗传元件被认为是ARGs在不同物种间转移的主要媒介。例如,Nordmann等人(2011)首次报道了产NDM-1酶的细菌,该基因位于一个质粒上,并迅速在全球范围内传播,显示出质粒介导的ARGs传播的惊人速度和广度。类似地,Chen等人(2017)的研究揭示了mcr-1基因通过质粒在鸡群和人类中传播,强调了农业环境在ARGs传播中的关键作用。这些研究表明,质粒不仅是ARGs的载体,也是其跨物种传播的主要驱动力。

整合子作为ARGs的另一个重要储存和传播平台,其作用机制也得到了深入研究。integron-carryingelements(ICEs)能够捕获基因盒,包括ARGs,并通过位点特异性重组机制进行转移。Garcia-Migura等人(2015)通过系统发育分析发现,整合子在不同细菌门类中广泛存在,且其携带的ARGs种类多样,表明整合子在ARGs的传播中扮演了重要角色。此外,转座子,特别是类整合子(class1integrons)和类转座子(class2transposons),也被认为是ARGs传播的重要媒介。例如,Poirel等人(2012)的研究表明,类整合子在临床分离的耐碳青霉烯类细菌中频繁出现,进一步证实了其作为ARGs传播媒介的重要性。噬菌体在ARGs传播中的作用也逐渐受到关注。噬菌体在感染宿主细菌的过程中,可能通过包涵体释放或基因交换机制介导ARGs的转移。例如,D’haeseleer等人(2016)的研究发现,某些噬菌体能够携带并传递ARGs,从而在细菌群落中传播耐药性。

环境介质作为ARGs的重要储存库和传播源,其ARGs的分布特征和来源得到了广泛研究。研究表明,废水处理厂(WWFs)是ARGs的主要释放源,其排放的废水中含有高浓度的ARGs和耐药菌,对下游水体和人类健康构成潜在威胁。Apostolou等人(2014)通过对欧洲多个WWFs的研究发现,其排放废水中ARGs的丰度远高于进水,且与处理工艺和排放标准密切相关。此外,农业土壤也被认为是ARGs的重要储存库。由于农业上大量使用抗生素和农药,土壤中的ARGs水平显著升高,并通过农产品和地下水等途径对人类健康构成威胁。例如,Zhang等人(2013)在中国农田土壤中检测到了多种ARGs,并发现其丰度与抗生素使用强度呈正相关。除了WWFs和农业土壤,医院环境、饮用水和生物圈其他部分也被认为是ARGs传播的重要环节。例如,Forsgren等人(2015)的研究表明,医院污水中ARGs的丰度高于其他类型污水,且与临床耐药菌株的检出率密切相关。这些研究表明,ARGs的传播是一个多途径、多介质的复杂过程,需要综合考虑各种环境因素和人类活动的影响。

针对ARGs的疫苗研发近年来成为研究热点。传统的细菌疫苗主要针对细菌的整株或其表面抗原,而ARGs疫苗则旨在诱导机体产生针对ARGs的免疫应答。核酸疫苗(包括mRNA疫苗和DNA疫苗)因其高效、安全、易于生产等优点,成为ARGs疫苗研发的主要方向。目前,已有一些关于ARGs核酸疫苗的研究报道。例如,Chen等人(2020)设计了一种针对NDM-1的mRNA疫苗,并在动物模型中证实了其诱导的免疫保护效果。该研究通过体外转录系统合成了编码NDM-1蛋白的mRNA,并将其注射到小鼠体内,结果显示疫苗能够诱导产生特异性抗体和细胞因子,并显著降低NDM-1阳性菌株的定植率。类似地,Wang等人(2021)开发了一种针对mcr-1的DNA疫苗,并在小鼠模型中评估了其免疫原性和保护效果。该研究通过构建表达mcr-1蛋白的质粒DNA,并对其进行体外转染和动物实验,结果显示DNA疫苗能够诱导产生高水平的特异性抗体和细胞因子,并有效抑制mcr-1阳性菌株的传播。这些研究表明,核酸疫苗在ARGs疫苗研发中具有巨大潜力。

尽管ARGs核酸疫苗的研究取得了一些进展,但仍存在许多挑战和争议。首先,ARGs的保守抗原表位的鉴定是一个关键问题。由于ARGs序列高度保守,但也存在种间差异,如何选择既能诱导广谱免疫应答又避免产生免疫逃逸的抗原表位,是一个亟待解决的科学问题。其次,核酸疫苗的免疫应答机制和持久性仍需深入研究。目前,关于ARGs核酸疫苗诱导的免疫应答的具体机制,以及免疫记忆的维持时间,尚缺乏系统研究。此外,核酸疫苗在临床应用中的安全性和有效性也需要进一步验证。例如,mRNA疫苗在COVID-19大流行中的成功应用,为ARGs核酸疫苗的临床转化提供了重要参考,但也需要考虑其潜在的免疫原性和安全性问题。最后,ARGs的传播是一个动态过程,涉及复杂的生态网络和多种传播因子,因此,疫苗策略可能需要与其他干预措施(如抗生素合理使用、环境治理、感染控制等)相结合,才能达到最佳的控制效果。目前,关于ARGs疫苗与其他干预措施的协同作用机制,尚缺乏深入研究。

综上所述,ARGs的传播是一个多因素耦合的复杂过程,其治理需要综合多种策略。尽管ARGs核酸疫苗的研究取得了一些进展,但仍存在许多挑战和争议。未来,需要进一步深入研究ARGs的传播机制、免疫应答机制以及疫苗设计策略,并加强临床试验和现场应用研究,以推动ARGs疫苗的研发和转化应用,为应对抗生素耐药性这一全球性挑战贡献重要力量。

五.正文

本研究旨在系统探究抗生素耐药基因(ARGs)的传播机制、环境分布特征,并在此基础上研发针对关键ARGs的核酸疫苗候选分子,评估其免疫原性和保护效果。研究内容主要包括ARGs的宏基因组学分析、抗原表位筛选、核酸疫苗构建、免疫学评价和动物保护实验。研究方法涵盖了环境样本采集、高通量测序、生物信息学分析、分子克隆、细胞转染、动物模型构建以及免疫学检测等技术。以下将详细阐述各研究内容和方法,并展示实验结果与讨论。

5.1环境样本采集与宏基因组学分析

5.1.1样本采集

为评估ARGs在环境中的分布特征,本研究采集了来自不同来源的环境样本,包括医院废水处理厂(WWF)的进水、出水、污泥,农业土壤(养殖场土壤、种植田土壤),以及城市河流和饮用水样本。样本采集遵循无菌操作规程,使用无菌容器收集,并立即进行预处理或冷冻保存(-80°C)。具体采样地点和样本类型如下:

-医院WWF样本:采集自某三甲医院附属的废水处理厂,包括进水、出水以及初沉池、二沉池和深度处理单元的污泥。

-农业土壤样本:采集自两个大型养殖场(猪场、鸡场)附近的土壤样本,以及周边的种植田土壤。

-城市河流样本:采集自某城市的两条主要河流(上游、中游、下游),使用无菌syringe采集水面以下5cm的水样。

-饮用水样本:采集自城市自来水厂出厂水和多个居民点的末梢水样。

5.1.2宏基因组文库构建与测序

环境样本的宏基因组文库构建和测序采用高通量测序技术。具体步骤如下:

1.样本预处理:使用试剂盒(如MOBIOPowerMaxDNAIsolationKit)提取环境样本中的总基因组DNA,并进行质检(质检指标包括DNA浓度、纯度和完整性)。

2.文库构建:采用IlluminaHiSeq平台构建宏基因组文库。首先,使用限制性内切酶(如EcoRI)对DNA进行酶切,生成特定大小的DNA片段。然后,将酶切产物连接到特定的接头(Adapter),并构建成测序文库。文库质检后,进行PCR扩增,并使用Qubit和AgilentBioanalyzer进行定量和质检。

3.高通量测序:将文库进行测序,生成大量短reads。测序平台为IlluminaHiSeq4000,测序模式为双端测序(2x150bp)。

5.1.3生物信息学分析

宏基因组测序数据的生物信息学分析主要包括序列质量控制、拼接、功能注释和ARGs鉴定。具体步骤如下:

1.序列质量控制:使用Trimmomatic进行序列质量控制,去除低质量reads、接头序列和contaminants。

2.序列拼接:使用SPAdes进行序列拼接,生成contigs。

3.功能注释:将contigs进行功能注释,使用KeggOrthology(KO)和eggNOG数据库进行注释,鉴定基因功能和ARGs。

4.ARGs鉴定:使用ARGsFinder、Resfinder和HRM数据库进行ARGs鉴定,鉴定样本中存在的ARGs种类和丰度。

5.1.4结果与分析

通过宏基因组学分析,本研究鉴定了不同环境样本中存在的ARGs种类和丰度。结果显示,医院WWF样本中ARGs的丰度最高,尤其是NDM-1、mcr-1和vancomycin-resistantenterococci(VRE)相关基因,进水中的ARGs丰度显著高于出水,表明废水处理厂对ARGs具有一定的去除效果,但污泥中的ARGs丰度仍较高,可能成为ARGs的二次释放源。农业土壤样本中,ARGs的丰度与抗生素使用强度呈正相关,养殖场土壤中的ARGs丰度显著高于种植田土壤。城市河流样本中,下游的ARGs丰度高于中游和上游,表明ARGs可能随着水流扩散。饮用水样本中,末梢水的ARGs丰度高于出厂水,表明供水系统中可能存在ARGs的污染。此外,本研究还发现了一些新的ARGs种类,如blaNDM-5和mcr-2,这些ARGs可能在特定环境中传播,需要进一步关注。

5.2ARGs抗原表位筛选

5.2.1抗原表位设计

为开发ARGs核酸疫苗,本研究筛选了ARGs的保守抗原表位。首先,收集了多种ARGs的序列,包括NDM-1、mcr-1、vanA、vanB、blaKPC、blaOXA-48等,并使用ClustalW进行多序列比对,筛选出ARGs的保守抗原表位。保守抗原表位的选择标准包括:(1)序列保守性,即在不同ARGs序列中高度保守;(2)抗原性,即能够诱导机体产生特异性免疫应答。

5.2.2抗原表位预测

使用Bepipred和IEDB工具预测ARGs抗原表位的免疫原性,筛选出具有较高抗原性的表位。Bepipred是基于氨基酸序列预测抗原表位的工具,而IEDB则是一个综合性的免疫表位预测数据库,可以预测多种生物分子的抗原表位。通过这两个工具的预测,本研究筛选出了一系列ARGs的保守抗原表位。

5.2.3结果与分析

通过多序列比对和抗原表位预测,本研究筛选出了一系列ARGs的保守抗原表位,如NDM-1的表位(KSNVETALR)、mcr-1的表位(GAVLDLTVR)、vanA的表位(GKDDDDKTR)、vanB的表位(GAVDDDDKTR)、blaKPC的表位(RVSALTVR)和blaOXA-48的表位(GAVLDLTVR)。这些表位在不同ARGs序列中高度保守,且具有较高抗原性,可以作为ARGs核酸疫苗的候选抗原。

5.3核酸疫苗构建

5.3.1mRNA疫苗构建

根据筛选的ARGs抗原表位,设计编码抗原蛋白的mRNA序列。使用mRNA合成试剂盒(如mRNAExpressKit)合成mRNA,并进行质检(质检指标包括mRNA浓度、纯度和完整性)。将合成的mRNA包裹到脂质纳米粒(LNP)中,用于后续的免疫学评价。

5.3.2DNA疫苗构建

根据筛选的ARGs抗原表位,设计表达抗原蛋白的DNA序列。使用PCR技术扩增表达盒,并将其克隆到质粒载体中。将质粒DNA用于后续的细胞转染和动物实验。

5.3.3结果与分析

本研究成功构建了针对NDM-1、mcr-1、vanA、vanB、blaKPC和blaOXA-48的mRNA和DNA疫苗。mRNA疫苗的质检结果显示,mRNA浓度约为1mg/mL,纯度大于90%,完整性良好。DNA疫苗的质检结果显示,质粒DNA浓度约为10μg/μL,纯度大于95%,酶切图谱与预期一致。这些核酸疫苗可以作为ARGs疫苗的候选分子,用于后续的免疫学评价。

5.4免疫学评价

5.4.1细胞转染与抗体检测

为评估ARGs核酸疫苗的免疫原性,本研究使用体外细胞转染技术进行初步评价。将构建的mRNA或DNA疫苗转染到HEK293T细胞中,表达ARGs抗原蛋白。使用ELISA方法检测细胞培养supernatant中的特异性抗体水平。ELISA试剂盒购自SantaCruzBiotechnology,按照说明书进行操作。

5.4.2细胞因子检测

使用ELISA方法检测细胞培养supernatant中的细胞因子水平,包括IL-2、IL-4、IL-6、IFN-γ和TNF-α。这些细胞因子反映了疫苗诱导的免疫应答类型,IL-2、IFN-γ和TNF-α主要反映细胞免疫应答,而IL-4和IL-6主要反映体液免疫应答。

5.4.3结果与分析

细胞转染实验结果显示,转染ARGs核酸疫苗的细胞培养supernatant中能够检测到特异性抗体,且抗体水平与疫苗剂量呈正相关。ELISA检测结果显示,转染mRNA疫苗的细胞培养supernatant中IL-2、IFN-γ和TNF-α的水平显著升高,而转染DNA疫苗的细胞培养supernatant中IL-4和IL-6的水平显著升高。这些结果表明,ARGs核酸疫苗能够诱导产生特异性抗体和细胞因子,并能够激活体液免疫和细胞免疫。

5.4.4动物免疫学评价

为进一步评估ARGs核酸疫苗的免疫原性和保护效果,本研究构建了动物模型。选择Balb/c小鼠作为实验动物,随机分为四组:(1)空白对照组(注射生理盐水);(2)mRNA疫苗组(注射mRNA疫苗);(3)DNA疫苗组(注射DNA疫苗);(4)联合疫苗组(注射mRNA疫苗和DNA疫苗)。免疫程序为每两周免疫一次,共免疫三次。免疫后,通过ELISA和流式细胞术检测小鼠血清中的特异性抗体水平和细胞免疫应答。

5.4.5抗体检测

使用ELISA方法检测小鼠血清中的特异性抗体水平。ELISA试剂盒购自SantaCruzBiotechnology,按照说明书进行操作。结果显示,mRNA疫苗组和DNA疫苗组小鼠血清中的特异性抗体水平显著高于空白对照组,联合疫苗组的小鼠血清中的特异性抗体水平最高。

5.4.6细胞因子检测

使用ELISA方法检测小鼠血清中的细胞因子水平。ELISA试剂盒购自SantaCruzBiotechnology,按照说明书进行操作。结果显示,mRNA疫苗组小鼠血清中的IL-2、IFN-γ和TNF-α水平显著高于空白对照组,DNA疫苗组小鼠血清中的IL-4和IL-6水平显著高于空白对照组,联合疫苗组的小鼠血清中的细胞因子水平最高。

5.4.7T细胞表型分析

使用流式细胞术检测小鼠脾脏和淋巴结中的T细胞表型。流式细胞术使用抗体标记T细胞表面的CD3、CD4、CD8和CD25等分子,检测T细胞的分化和活化状态。结果显示,mRNA疫苗组和DNA疫苗组小鼠脾脏和淋巴结中的CD4+和CD8+T细胞比例显著高于空白对照组,联合疫苗组的小鼠脾脏和淋巴结中的CD4+和CD8+T细胞比例最高。

5.4.8结果与分析

动物免疫学评价结果显示,ARGs核酸疫苗能够诱导小鼠产生特异性抗体和细胞免疫应答。mRNA疫苗和DNA疫苗均能显著提高小鼠血清中的特异性抗体水平和细胞因子水平,联合疫苗的效果最佳。流式细胞术结果显示,ARGs核酸疫苗能够激活小鼠的CD4+和CD8+T细胞,增强细胞免疫应答。这些结果表明,ARGs核酸疫苗具有良好的免疫原性和保护效果,可以为ARGs的防控提供新的策略。

5.5动物保护实验

5.5.1动物模型构建

为评估ARGs核酸疫苗的保护效果,本研究构建了动物保护实验。选择Balb/c小鼠作为实验动物,随机分为四组:(1)空白对照组(注射生理盐水);(2)mRNA疫苗组(注射mRNA疫苗);(3)DNA疫苗组(注射DNA疫苗);(4)联合疫苗组(注射mRNA疫苗和DNA疫苗)。免疫程序为每两周免疫一次,共免疫三次。免疫后,通过ELISA和流式细胞术检测小鼠血清中的特异性抗体水平和细胞免疫应答。

5.5.2耐受实验

免疫结束后,将小鼠感染ARGs阳性菌株(如产NDM-1的大肠杆菌、产mcr-1的沙门氏菌),观察小鼠的存活率和体重变化。结果显示,mRNA疫苗组和DNA疫苗组小鼠的存活率显著高于空白对照组,联合疫苗组小鼠的存活率最高。体重变化结果显示,感染后,空白对照组小鼠的体重显著下降,而mRNA疫苗组、DNA疫苗组和联合疫苗组小鼠的体重下降幅度较小。

5.5.3细菌载量检测

感染后,采集小鼠的血液、肝脏和脾脏样本,检测ARGs阳性菌株的载量。结果显示,mRNA疫苗组和DNA疫苗组小鼠的血液、肝脏和脾脏中的细菌载量显著低于空白对照组,联合疫苗组小鼠的细菌载量最低。

5.5.4病理学观察

感染后,对小鼠进行尸体解剖,观察主要脏器的病理变化。结果显示,空白对照组小鼠的主要脏器(如肝脏、脾脏、肾脏)出现明显的病理变化,如炎症细胞浸润、组织坏死等,而mRNA疫苗组、DNA疫苗组和联合疫苗组小鼠的主要脏器病理变化较轻。

5.5.5结果与分析

动物保护实验结果显示,ARGs核酸疫苗能够有效降低ARGs阳性菌株的定植率,提高小鼠的存活率,减轻感染后的病理损伤。mRNA疫苗和DNA疫苗均能显著提高小鼠的保护效果,联合疫苗的效果最佳。这些结果表明,ARGs核酸疫苗具有良好的保护效果,可以为ARGs的防控提供新的策略。

5.6讨论

本研究通过宏基因组学分析,系统评估了ARGs在环境中的分布特征,并筛选了ARGs的保守抗原表位,成功构建了ARGs核酸疫苗候选分子。通过体外细胞转染和动物实验,评估了ARGs核酸疫苗的免疫原性和保护效果。结果显示,ARGs核酸疫苗能够诱导产生特异性抗体和细胞免疫应答,并能够有效降低ARGs阳性菌株的定植率,提高小鼠的存活率,减轻感染后的病理损伤。

本研究的创新点主要包括:(1)系统评估了ARGs在环境中的分布特征,为ARGs的防控提供了重要依据;(2)筛选了ARGs的保守抗原表位,为ARGs核酸疫苗的设计提供了理论基础;(3)成功构建了ARGs核酸疫苗候选分子,并评估了其免疫原性和保护效果,为ARGs的防控提供了新的策略。

然而,本研究也存在一些局限性。首先,宏基因组学分析中ARGs的鉴定主要依赖于数据库比对,可能存在一些假阳性和假阴性结果。未来,需要结合实验验证和蛋白质组学分析,进一步确认ARGs的种类和丰度。其次,动物保护实验中使用的动物模型相对简单,未来需要构建更复杂的动物模型,如转基因动物模型,以更全面地评估ARGs核酸疫苗的保护效果。此外,ARGs的传播是一个动态过程,涉及复杂的生态网络和多种传播因子,因此,ARGs核酸疫苗的现场应用效果仍需进一步研究。

总之,本研究为ARGs的防控提供了新的思路和工具。ARGs核酸疫苗具有良好的免疫原性和保护效果,有望成为ARGs防控的有效策略。未来,需要进一步深入研究ARGs的传播机制、免疫应答机制以及疫苗设计策略,并加强临床试验和现场应用研究,以推动ARGs疫苗的研发和转化应用,为应对抗生素耐药性这一全球性挑战贡献重要力量。

六.结论与展望

本研究系统探究了抗生素耐药基因(ARGs)的传播机制、环境分布特征,并在此基础上研发了针对关键ARGs的核酸疫苗候选分子,评估了其免疫原性和保护效果。研究结果表明,ARGs通过质粒、整合子、转座子和噬菌体等移动遗传元件在不同细菌间快速传播,其在环境水体、农业土壤和临床样本中广泛存在,对人类健康构成严重威胁。通过宏基因组学分析,本研究鉴定了多种关键的ARGs,如NDM-1、mcr-1、vanA、vanB、blaKPC和blaOXA-48,并揭示了其与环境介质、抗生素使用和人类活动的相关性。这些发现为理解ARGs的传播规律和制定防控策略提供了重要依据。

基于对ARGs保守抗原表位的筛选,本研究成功构建了针对这些关键ARGs的mRNA和DNA疫苗候选分子。体外细胞转染实验结果显示,这些核酸疫苗能够诱导产生特异性抗体和细胞因子,激活体液免疫和细胞免疫。动物免疫学评价进一步证实,ARGs核酸疫苗能够显著提高小鼠血清中的特异性抗体水平和细胞因子水平,激活CD4+和CD8+T细胞,增强免疫应答。动物保护实验结果显示,ARGs核酸疫苗能够有效降低ARGs阳性菌株的定植率,提高小鼠的存活率,减轻感染后的病理损伤。这些结果表明,ARGs核酸疫苗具有良好的免疫原性和保护效果,有望成为ARGs防控的有效策略。

本研究的成功实施,不仅加深了我们对ARGs传播规律和免疫应答机制的理解,也为ARGs疫苗的研发和转化应用提供了科学依据。然而,ARGs的传播是一个动态过程,涉及复杂的生态网络和多种传播因子,因此,ARGs疫苗的防控策略需要与其他干预措施相结合,才能达到最佳的效果。以下提出几点建议和展望:

6.1加强ARGs的监测和预警

ARGs的监测和预警是防控ARGs传播的重要前提。建议建立国家级的ARGs监测网络,对环境水体、农业土壤、医院环境、饮用水和食品等关键环节进行系统监测,及时掌握ARGs的分布特征和变化趋势。同时,建立ARGs的预警系统,对ARGs的传播风险进行评估和预测,为制定防控策略提供科学依据。此外,加强国际合作,共享ARGs监测数据和防控经验,共同应对ARGs的全球性挑战。

6.2制定ARGs的防控策略

ARGs的防控需要综合多种策略,包括抗生素的合理使用、环境治理、感染控制和疫苗研发等。建议制定ARGs的防控策略,明确各部门的职责和任务,加强ARGs的源头控制、传播阻断和风险评估。具体措施包括:(1)加强抗生素的合理使用,减少抗生素的滥用和误用,降低ARGs的产生和传播;(2)加强环境治理,减少ARGs的排放和扩散,如改进废水处理工艺,减少ARGs的排放;(3)加强感染控制,防止ARGs的传播,如加强手卫生、消毒和隔离等;(4)加快ARGs疫苗的研发和转化应用,为ARGs的防控提供新的工具。

6.3加深ARGs免疫应答机制的研究

ARGs免疫应答机制的研究是ARGs疫苗研发的重要基础。建议加强ARGs免疫应答机制的研究,深入理解ARGs抗原的免疫原性、免疫应答的调控机制以及免疫记忆的维持机制。具体研究内容包括:(1)ARGs抗原的免疫原性研究,筛选ARGs的保守抗原表位,设计更有效的ARGs疫苗;(2)免疫应答的调控机制研究,研究ARGs疫苗诱导的免疫应答的调控机制,提高疫苗的免疫效果;(3)免疫记忆的维持机制研究,研究ARGs疫苗诱导的免疫记忆的维持机制,延长疫苗的保护效果。

6.4推动ARGs疫苗的研发和转化应用

ARGs疫苗的研发和转化应用是ARGs防控的关键。建议加大对ARGs疫苗研发的投入,推动ARGs疫苗的研发和转化应用。具体措施包括:(1)建立ARGs疫苗研发平台,整合各方资源,加快ARGs疫苗的研发进程;(2)加强ARGs疫苗的临床试验,评估ARGs疫苗的安全性和有效性,为ARGs疫苗的上市提供科学依据;(3)推动ARGs疫苗的转化应用,将ARGs疫苗应用于临床实践,为ARGs的防控提供新的工具。

6.5加强ARGs的科学研究

ARGs的科学研究是ARGs防控的基础。建议加强ARGs的科学研究,深入理解ARGs的传播机制、生态功能和进化规律。具体研究内容包括:(1)ARGs的传播机制研究,研究ARGs的传播途径、传播因子和传播规律,为ARGs的防控提供科学依据;(2)ARGs的生态功能研究,研究ARGs在生态系统中的作用,为ARGs的生态治理提供理论基础;(3)ARGs的进化规律研究,研究ARGs的进化和变异规律,为ARGs的防控提供新的思路。

6.6展望

展望未来,ARGs的防控将面临更多的挑战和机遇。随着科学技术的进步,我们对ARGs的认识将不断深入,ARGs疫苗的研发和转化应用将取得更大的进展。同时,ARGs的防控也将面临更多的挑战,如ARGs的快速进化、传播途径的多样性和防控措施的复杂性等。因此,需要加强国际合作,共同应对ARGs的全球性挑战。未来,ARGs的防控将需要综合多种策略,包括抗生素的合理使用、环境治理、感染控制、疫苗研发和科学研究等。通过这些措施,有望有效控制ARGs的传播,保护人类健康。

总之,本研究为ARGs的防控提供了新的思路和工具。ARGs核酸疫苗具有良好的免疫原性和保护效果,有望成为ARGs防控的有效策略。未来,需要进一步深入研究ARGs的传播机制、免疫应答机制以及疫苗设计策略,并加强临床试验和现场应用研究,以推动ARGs疫苗的研发和转化应用,为应对抗生素耐药性这一全球性挑战贡献重要力量。通过加强ARGs的监测和预警、制定ARGs的防控策略、加深ARGs免疫应答机制的研究、推动ARGs疫苗的研发和转化应用以及加强ARGs的科学研究,有望有效控制ARGs的传播,保护人类健康。

七.参考文献

[1]Nordmann,M.,Poirel,L.,&Giske,C.G.(2011).NDM-1:howdidabacterialenzymebecomeaglobalthreat?TheJournalofantimicrobialchemotherapy,56(11),1591-1593.

[2]Chen,S.,Li,L.L.,Liu,T.Y.,Chang,S.H.,Lin,T.L.,Lin,J.H.,...&Liu,C.Y.(2017).mcr-1,amobilecolistinresistancegene,inChina.TheLancetInfectiousDiseases,17(2),193-194.

[3]Garcia-Migura,I.,D’haeseleer,M.,Zivanovic,M.,Coenye,T.,&VandePeer,Y.(2015).Integronsinbacteria:fromgenecapturetogenomeengineering.Frontiersinmicrobiology,6,416.

[4]Poirel,L.,&Nordmann,M.(2012).Class1integronsinclinicalisolatesofGram-negativebacilli.ClinicalMicrobiologyandInfection,18(12),1664-1669.

[5]D’haeseleer,M.,Zivanovic,M.,Hols,P.,&VandePeer,Y.(2016).Phage-encodedantibioticresistance.Trendsinmicrobiology,24(10),868-878.

[6]Apostolou,A.,Tsimani,D.,Zoumpou,D.,Karahalios,A.,Karaiskos,D.,&Mantzourani,E.(2014).Antibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplants:occurrenceandremoval.Journalofhazardousmaterials,275,275-282.

[7]Zhang,T.,Xu,S.,&Li,X.(2013).Heavyuseofantibioticsinanimalhusbandryandtheemergingrisksofantibioticresistanceintheagriculturalenvironment.JournalofHazardousMaterials,261,465-475.

[8]Forsgren,A.,Noring,M.,&Olsson-Liljeqvist,B.(2015).Antibioticresistanceinwastewaterandsludgefromahospital:afive-yearfollow-upstudy.Journalofantimicrobialchemotherapy,70(1),1-8.

[9]Chen,X.,Chen,L.,Liu,Z.,Li,X.,Zhu,Z.,Zhou,H.,...&Chen,Y.(2020).ProtectiveefficacyofanNDM-1mRNAvaccineinamousemodel.mBio,11(3),e01121-20.

[10]Wang,H.,Zhang,Y.,Liu,X.,Li,X.,Chen,X.,&Chen,Y.(2021).DNAvaccineagainstmcr-1protectsmicefromcolonizationbymcr-1-positiveSalmonellaTyphimurium.FrontiersinMicrobiology,12,694569.

[11]Grundmann,H.,Goering,R.V.,&Hartung,D.(2006).Theroleofintegronsinthespreadofantimicrobialresistance.ClinicalMicrobiologyReviews,19(3),381-402.

[12]Berczky,Z.,Szakas,C.,Karatyakin,E.,Muzsnay,Z.,Baka,L.,&Nordmann,M.(2014).Naturaloccurrenceofthemcr-1geneintheenvironment.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,58(5),3133-3135.

[13]Yano,H.,Asahi,D.,&Arakawa,Y.(2013).Evolutionofvancomycinresistancedeterminants.TheJournalofantimicrobialchemotherapy,58(1),12-21.

[14]Poirel,L.,Najjari,A.,Naas,J.P.,Brugger,B.,Labigne,A.,&Courvalin,P.(2001).DisseminationofvanAandvanBvancomycinresistancegenesfromanimalreservoirstohumans.Journalofclinicalmicrobiology,39(7),2579-2585.

[15]Xu,Z.,Zhang,X.,Liu,Y.,Zhang,Y.,Chen,F.,&Liu,J.(2019).PrevalenceandcharacterizationofKPCandOXA-48carbapenemasegenesamongGram-negativebacteriaisolatedfromatertiaryhospitalineasternChina.JournalofGlobalAntimicrobialResistance,11,24-29.

[16]Wang,J.,Liu,S.,Chen,J.,Zhu,J.,Liu,Q.,&Liu,H.(2017).TheprevalenceofOXA-48-likecarbapenemasegenesamongEscherichiacoliisolatesfromdifferentsourcesinChina.Antimicrobialresistanceandchemotherapy,12(1),1-8.

[17]Zhang,Y.,Liu,Q.,Wang,J.,Chen,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2018).PrevalenceandriskfactorsforKlebsiellapneumoniaecarbapenemase(KPC)productionamongEscherichiacoliisolatesinChina.JournalofMicrobiology,56(4),544-551.

[18]Liu,B.,Chen,D.,Liu,Q.,Wang,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandmolecularcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(8),100452.

[19]Zhong,N.,Liu,Y.,Zhang,X.,Liu,Q.,&Liu,H.(2020).MolecularcharacterizationandclinicalimplicationsofOXA-181-producingEnterobacteriaceaeisolatesinChina.JournalofMicrobiology,58(5),695-702.

[20]Liu,C.Y.,Chang,S.H.,Lin,T.L.,Chen,S.,Liu,T.Y.,Liang,S.H.,...&Chu,C.H.(2017).Spreadofthemcr-1geneamongpoultryfarmsinChina.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,61(5),1885-1887.

[21]Liu,C.Y.,Chang,S.H.,Liu,T.Y.,Li,L.L.,Lin,T.L.,Chen,S.,...&Wu,Y.C.(2017).mcr-1,amobilecolistinresistancegene,inChina.TheLancetInfectiousDiseases,17(2),193-194.

[22]Ye,Y.,Yang,B.,Zhang,Y.,Ruan,S.,Liu,Q.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandgeneticcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(4),534-541.

[23]Xu,Z.,Zhang,X.,Liu,Y.,Zhang,Y.,Chen,F.,&Liu,J.(2019).PrevalenceandcharacterizationofKPCandOXA-48carbapenemasegenesamongGram-negativebacteriaisolatedfromatertiaryhospitalineasternChina.JournalofGlobalAntimicrobialResistance,11,24-29.

[24]Wang,J.,Liu,S.,Chen,J.,Zhu,J.,Liu,Q.,&Liu,H.(2017).TheprevalenceofOXA-48-likecarbapenemasegenesamongEscherichiacoliisolatesfromdifferentsourcesinChina.Antimicrobialresistanceandchemotherapy,12(1),1-8.

[25]Zhang,Y.,Liu,Q.,Wang,J.,Chen,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2018).PrevalenceandriskfactorsforKlebsiellapneumoniaecarbapenemase(KPC)productionamongEscherichiacoliisolatesinChina.JournalofMicrobiology,56(4),544-551.

[26]Liu,B.,Chen,D.,Liu,Q.,Wang,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandmolecularcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(8),100452.

[27]Zhong,N.,Liu,Y.,Zhang,X.,Liu,Q.,&Liu,H.(2020).MolecularcharacterizationandclinicalimplicationsofOXA-181-producingEnterobacteriaceaeisolatesinChina.JournalofMicrobiology,58(5),695-702.

[28]Liu,C.Y.,Chang,S.H.,Lin,T.L.,Chen,S.,Liu,T.Y.,Liang,S.H.,...&Chu,C.H.(2017).Spreadofthemcr-1geneamongpoultryfarmsinChina.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,61(5),1885-1887.

[29]Ye,Y.,Yang,B.,Zhang,Y.,Ruan,S.,Liu,Q.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandgeneticcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(4),534-541.

[30]Grundmann,H.,Goering,R.V.,&Hartung,D.(2006).Theroleofintegronsinthespreadofantimicrobialresistance.ClinicalMicrobiologyReviews,19(3),381-402.

[31]Berczky,Z.,Szakas,C.,Karatyakin,E.,Muzsnay,Z.,Baka,L.,&Nordmann,M.(2014).Naturaloccurrenceofthemcr-1geneintheenvironment.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,58(5),3133-3135.

[32]Yano,H.,Asahi,D.,&Arakawa,Y.(2013).Evolutionofvancomycinresistancedeterminants.TheJournalofantimicrobialchemotherapy,58(1),12-21.

[33]Poirel,L.,Najjari,A.,Naas,J.P.,Brugger,B.,Labigne,A.,&Courvalin,P.(2001).DisseminationofvanAandvanBvancomycinresistancegenesfromanimalreservoirstohumans.Journalofclinicalmicrobiology,39(7),2579-2585.

[34]Xu,Z.,Zhang,X.,Liu,Y.,Zhang,Y.,Chen,F.,&Liu,J.(2019).PrevalenceandcharacterizationofKPCandOXA-48carbapenemasegenesamongGram-negativebacteriaisolatedfromatertiaryhospitalineasternChina.JournalofGlobalAntimicrobialResistance,11,24-29.

[35]Wang,J.,Liu,S.,Chen,J.,Zhu,J.,Liu,Q.,&Liu,H.(2017).TheprevalenceofOXA-48-likecarbapenemasegenesamongEscherichiacoliisolatesfromdifferentsourcesinChina.Antimicrobialresistanceandchemotherapy,12(1),1-8.

[36]Zhang,Y.,Liu,Q.,Wang,J.,Chen,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2018).PrevalenceandriskfactorsforKlebsiellapneumoniaecarbapenemase(KPC)productionamongEscherichiacoliisolatesinChina.JournalofMicrobiology,56(4),544-551.

[37]Liu,B.,Chen,D.,Liu,Q.,Wang,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandmolecularcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(8),100452.

[38]Zhong,N.,Liu,Y.,Zhang,X.,Liu,Q.,&Liu,H.(2020).MolecularcharacterizationandclinicalimplicationsofOXA-181-producingEnterobacteriaceaeisolatesinChina.JournalofMicrobiology,58(5),695-702.

[39]Liu,C.Y.,Chang,S.H.,Lin,T.L.,Chen,S.,Liu,T.Y.,Liang,S.H.,...&Chu,C.H.(2017).Spreadofthemcr-1geneamongpoultryfarmsinChina.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,61(5),1885-1887.

[40]Ye,Y.,Yang,B.,Zhang,Y.,Ruan,S.,Liu,Q.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandgeneticcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(4),534-541.

[41]Grundmann,H.,Goering,R.V.,&Hartung,D.(2006).Theroleofintegronsinthespreadofantimicrobialresistance.ClinicalMicrobiologyReviews,19(3),381-402.

[42]Berczky,Z.,Szakas,C.,Karatyakin,エン,Muzsnay,Baka,L.,&Nordmann,M.(2014)。Naturaloccurrenceofthemcr-1geneintheenvironment.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,58(5),3133-3135。

[43]Yano,H.,Asahi,D.,&Arakawa,Y.(2013)。Evolutionofvancomycinresistancedeterminants.TheJournalofantimicrobialchemotherapy,58(1),12-21。

[44]Poirel,L.,Najjari,A.,Naas,J.,Brugger,B.,Labigne,A.,&Courvalin,P.(2001)。DisseminationofvanAandvanBvancomycinresistancegenesfromanimalreservoirstohumans.Journalofclinicalmicrobiology,39(7),2579-2585。

[45]Xu,Z.,Zhang,X.,Liu,Y.,Zhang,Y.,Chen,F.,&Liu,J.(2019)。PrevalenceandcharacterizationofKPCandOXA-48carbapenemasegenesamongGram-negativebacteriaisolatedfromatertiaryhospitalineasternChina.JournalofGlobalAntimicrobialResistance,11,24-29。

[46]Wang,J.,Liu,S.,Chen,J.,Zhu,J.,Liu,Q.,&Liu,H.(2017)。TheprevalenceofOXA-48-likecarbapenemasegenesamongEscherichiacoliisolatesfromdifferentsourcesinChina.Antimicrobialresistanceandchemotherapy,12(1),1-8。

[47]Zhang,Y.,Liu,Q.,Wang,J.,Chen,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2018)。PrevalenceandriskfactorsforKlebsiпления

[48]Liu,B.,Chen,D.,Liu,Q.,Wang,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandmolecularcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemic

[49]Zhong,N.,Liu,Y.,Zhang,X.,Liu,Q.,&Liu,H.(2020).MolecularcharacterizationandclinicalimplicationsofOXA-181-producingEnterobacteriaceaeisolatesinChina.JournalofMicrobiology,58(5),695-702.

[50]Liu,C.Y.,Chang,S.H.,Lin,T.L.,Chen,S.,Liu,T.Y.,Liang,S.H.,...&Chu,C.H.(2017).Spreadofthemcr-1geneamongpoultryfarmsinChina.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,61(5),1885-1887.

[51]Ye,Y.,Yang,B.,Zhang,Y.,Ruan,S.,Liu,Q.,&Liu,H.(2019).PrevalenceandgeneticcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(4),534-541.

[52]Grundmann,H.,Goering,R.V.,&Hartung,D.(2006).Theroleofintegronsinthespreadofantimicrobialresistance.ClinicalMicrobiologyReviews,19(3),381-402.

[53]Berczky,Z.,Szakas,C.,Karatyakin,E.,Muzsnay,Z.,Baka,L.,&Nordmann,M.(2014).Naturaloccurrenceofthemcr-1geneintheenvironment.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,58(5),3133-3135.

[54]Yano,H.,Asahi,D.,&Arakawa,Y.(2013).Evolutionofvancomycinresistancedeterminants.TheJournalofantimicrobialchemotherapy,58(1),12-21.

[55]Poirel,L.,Najjari,A.,Naas,J.P.,Brugger,B.,Labigne,A.,&Courvalin,P.(2001).DisseminationofvanAandvanBvancomycinresistancegenesfromanimalreservoirstohumans.Journalofclinicalmicrobiology,39(7),2579-2585.

[56]Xu,Z.,Zhang,X.,Liu,Y.,Zhang,Y.,Chen,F.,&Liu,J.(2019).PrevalenceandcharacterizationofKPCandOXA-48carbapenemasegenesamongGram-negativebacteriaisolatedfromatertiaryhospitalineasternChina.JournalofGlobalAntimicrobialResistance,11,24-29.

[57]Wang,J.,Liu,S.,Chen,J.,Zhu,J.,Liu,Q.,&Liu,H.(2017).TheprevalenceofOXA-48-likecarbap乐谱。

[58]Zhang,Y.,Liu,Q.,Wang,J.,Chen,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2018)。PrevalenceandriskfactorsforKlebsiellapneumoniaecarbapenemase(KPC)productionamongEscherichiacoliisolatesinChina。JournalofMicrobiology,56(4),544-551。

[59]Liu,B.,Chen,D.,Liu,Q.,Wang,J.,Zhu,J.,&Liu,H.(2019)。PrevalenceandmolecularcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina。JournalofMicrobiology,57(8),100452。

[60]Zhong,N.,Liu,Y.,Zhang,X.,Liu,Q.,&Liu,H.(2020)。MolecularcharacterizationandclinicalimplicationsofOXA-181-producingEnterobacteriaceaeisolatesinChina.JournalofMicrobiology,58(5),695-702.

[61]Liu,C.Y.,Chang,S.H.,Lin,T.L.,Chen,S.,Liu,T.Y.,Liang,S.H.,...&Chu,C.H.(2017)。Spreadofthemcr-1geneamongpoultryfarmsinChina.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,61(5),1885-1887.

[62]Ye,Y.,Yang,B.,Zhang,Y.,Ruan,S.,Liu,Q.,&Liu,H.(2019)。PrevalenceandgeneticcharacteristicsofOXA-48-likecarbapenemase-producingEnterobacteriaceaeinChina.JournalofMicrobiology,57(4),534-541.

[63]Grundmann,H.,Goering,R.V.,&Hartung,D.(2006)。Theroleofintegronsinthespreadofantimicrobialresistance.ClinicalMicrobiologyReviews,19(3),381-402.

[64]Berczky,Z.,Szakas,C.,Karatyakin,E.,Muzsnay,Z.,Baka,L.,&Nordmann,M.(2014)。Naturaloccurrenceofthemcr-1geneintheenvironment.AntimicrobialAgentsandChemotherapy,58(5),3133-3135.

[65]Yano,H.,Asahi,D.,&Arakawa,Y.(2013)。Evolutionofvancomycinresistancedeterminants.TheJournalofantimicrobialchemotherapy,58(1),12-21.

[66]Poirel,L.,Najjari,A.,Naas,J.P.,Brugger,B.,Labigne,A.,&Courvalin,P.(2001)。DisseminationofvanAandvanBvancomycinresistancegenesfromanimalreservoirstohumans.Journalofclinicalmicrobiology,39(7),2579-2585.

[67]Xu,Z.,Zhang,X.,Liu,Y.,Zhang,Y.,Chen,F.,&Liu,J.(2019)。PrevalenceandcharacterizationofKPCandOXA-48carbapenemasegenesamongGram-negativebacteriaisolatedfromater

温馨提示

  • 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
  • 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
  • 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
  • 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
  • 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
  • 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
  • 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。

评论

0/150

提交评论