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文档简介
202X演讲人2026-06-241操作前准备操作前准备01阅片与结果报告标准流程02血涂片制作与染色分步标准操作03常见易错点规避04目录疟疾血涂片检查操作标准流程|分步拆解+易错点规避各位从事临床检验、传染病防控的同道,大家好。我从事临床寄生虫检验工作12年,累计处理疟原虫检查血涂片近千例,确诊输入性活动性疟疾42例,期间见过太多因为操作不规范导致的漏诊误诊:有规培生未等酒精消毒完全干燥就采血,导致原虫变形无法识别;有同事赶时间只看了几十个视野就发阴性报告,延误了患者救治;也有因为载玻片带油污导致血膜制作失败,需要重新采血增加患者痛苦。疟原虫血涂片检查目前仍是WHO推荐的疟疾诊断金标准,操作看似简单,但每一个步骤都直接影响结果准确性。接下来我将从操作全流程分步拆解,结合自身经验梳理常见易错点,供大家参考。01PARTONE操作前准备操作前准备操作前准备是保证结果准确的基础,我经手的所有不合格涂片,超过三成问题出在准备环节,绝对不能轻视。1人员防护与资质准备1.1.1疟疾属于我国法定乙类传染病,操作过程中存在接触感染性血液的风险,必须按二级生物安全要求做好防护:操作前穿戴一次性隔离衣、双层乳胶手套,操作区域铺设一次性防渗垫,锐器使用后立即放入锐器盒,所有医疗废物按感染性废物处理。我刚工作第一年曾经带教过一名规培生,操作时嫌麻烦只戴了一层手套,推片时被破损载玻片划破手指,后续不得不进行1周的预防性抗疟服药,这件事也给我提了醒,防护要求无论什么时候都不能打折扣。1.1.2操作人员必须经过疟原虫形态识别系统培训,掌握不同种疟原虫的形态特征,未经过培训的人员不得独立发出结果报告。2器材与试剂准备1.2.1载玻片与推片:必须选择无油污、无划痕的洁净载玻片,新载玻片使用前需用75%酒精棉球擦拭去除表面生产残留油脂,重复使用的载玻片需经酸缸浸泡24小时以上,反复冲洗去除残留酸液与蛋白,烘干后保存备用。推片要求边缘光滑整齐,无缺口,避免推片时划伤血膜。1.2.2试剂与其他器材:准备75%医用酒精、一次性无菌采血针、干棉球、无水甲醇(固定用)、瑞氏-吉姆萨复合染液、pH6.8的磷酸盐缓冲液、香柏油、蜡笔、生物安全垃圾袋、锐器盒。这里需要注意缓冲液必须定期更换,每月监测pH值,确保维持在6.6~7.0区间,pH不符合要求会直接导致染色失败,原虫形态无法识别。3标本采集前核对与时机选择1.3.1标本核对:操作前必须核对受检者姓名、性别、ID号、流行病学史,重点询问近1年内是否有非洲、东南亚等疟疾流行区旅居史,对有旅居史的发热患者必须重点标注,提高阅片优先级。1.3.2采血时机选择:疟原虫在外周血的密度随发作周期波动,最佳采血时机为发作后1~6小时,此时原虫密度最高,检出率最高。若临床在发作间期采血,必须在申请单上注明,后续阅片需要加倍扩大阅片范围,结果报告中注明“若临床高度怀疑疟疾,请于发作期复查”。02PARTONE血涂片制作与染色分步标准操作血涂片制作与染色分步标准操作完成准备工作后,就进入核心操作环节,每一步都有明确的标准要求,容不得半点随意。1采血操作2.1.1选择采血部位:成人一般选择左手无名指指尖内侧,儿童选择耳垂或足跟,避免选择水肿、破损部位采血。2.1.2消毒与采血:用75%酒精棉球消毒采血部位,必须等待酒精完全挥发干燥后再行穿刺,若酒精未干就穿刺,酒精混入血液会导致红细胞溶血、原虫变形,我刚参加工作时就犯过这个错误,整张涂片染色后全是破碎细胞,根本无法识别原虫,只能重新采血,这点一定要牢记。穿刺深度控制在2~3mm,让血液自然流出,不要用力挤压,避免组织液混入稀释血液,降低原虫检出率。第一滴血液含有较多组织液,用干棉球拭去,留取第二滴血液用于制作血膜。2薄血膜制作薄血膜的作用是清晰显示原虫形态,用于后续分型,质量要求很高。2.2.1取血:将洁净载玻片放置在水平台面上,取约10μl(1小滴)血液置于载玻片一端1/3处。2.2.2推片:左手持载玻片末端,右手持推片,将推片一端放在血滴的前方,然后向血滴方向移动,接触血滴后稍作停留,让血液沿推片边缘均匀散开,随后保持推片与载玻片呈30~45夹角,匀速平稳向前推动,一次成型,不能中途停顿或回头。制作完成的薄血膜应该呈舌形,头、体、尾分明,红细胞单层排列,既不重叠也不过于稀疏,自然放置待干,不能加热烘烤,高温会导致细胞皱缩变形。3厚血膜制作厚血膜通过浓缩血液提高原虫检出率,是低原虫密度病例检出的关键,我所有确诊的低密度输入性病例,都是通过厚血膜先发现阳性,再通过薄血膜分型,所以厚血膜的质量至关重要。2.3.1取血:在同一张载玻片的另一端(距离薄血膜1cm以上位置)取约40~50μl血液(3~4滴)。2.3.2涂制:用推片的一角将血滴从中心向外顺时针画圈涂抹,制作成直径1~1.5cm的圆形厚血膜,厚薄均匀,对着光线观察呈半透明状,能隐约透过血膜看到手纹即可。自然放置干燥,干燥过程中避免碰水、防尘。4固定与染色目前临床最常用的是单张玻片薄厚血膜复合染色法,操作简单,准确性高,标准步骤如下:2.4.1分界与固定:血膜完全干燥后,用蜡笔在薄血膜和厚血膜之间画一条横线,将两者分开,然后用滴管滴加无水甲醇,完全覆盖薄血膜进行固定,注意不要让甲醇碰到厚血膜,固定1分钟后自然晾干。2.4.2染色:将瑞氏-吉姆萨染液滴加在整张血膜上,完全覆盖薄厚血膜,染色1~2分钟,然后加入等量pH6.8磷酸盐缓冲液,轻轻晃动载玻片,使染液与缓冲液充分混合,此时液面会出现一层金属光泽膜,室温放置染色5~10分钟(温度低于20℃时适当延长2~3分钟染色时间)。2.4.3冲洗:染色完成后,将载玻片倾斜,用缓慢流水从载玻片一端冲洗,绝对不能先倒掉染液再冲洗,先倒染液会导致染料沉渣附着在血膜上,很难冲掉,干扰阅片。冲洗到流出的水无色透明即可,将载玻片竖放在滤纸上自然晾干。03PARTONE阅片与结果报告标准流程阅片与结果报告标准流程制作出合格的涂片后,规范阅片是准确出结果的最后一道关口。1阅片顺序与要求3.1.1阅片前调试显微镜,调整光源至合适亮度,转油镜后滴加合格香柏油,避免使用变质、变色的香柏油。3.1.2常规阅片顺序为“先薄后厚”:薄血膜中红细胞形态完整,原虫结构清晰,便于识别原虫形态分型;厚血膜经过溶血浓缩,检出率高,适合低密度病例筛查。我个人的习惯是先快速浏览薄血膜,再系统阅厚血膜,若厚血膜发现可疑结构,再回到薄血膜找原虫确认分型,这个顺序兼顾了效率和准确性。2阅片视野要求3.2.1对于有流行区旅居史的发热可疑病例,薄血膜至少阅满200个油镜视野,厚血膜至少阅满300个油镜视野,未达到视野数量要求不得发出阴性报告。我在3年前曾经碰到一例非洲回国的发热患者,外院只看了50个厚膜视野就发了阴性,转到我院后我们阅满了全片,在第286个视野找到了恶性疟原虫环状体,当时患者已经出现轻度意识障碍,及时确诊后才得以抢救成功,所以视野数量要求是底线,绝对不能偷懒。3.2.2若全片未发现原虫,但临床高度怀疑,需要重新制作厚血膜复查,不得直接发出阴性报告。3结果报告要求3.3.1检出疟原虫,无论数量多少,均报告“查见疟原虫”,并进一步分型,报告原虫密度(每100个红细胞中疟原虫数量),第一时间按法定传染病要求上报院感与属地疾控部门,不得延迟。3.3.2未检出疟原虫,报告“未查见疟原虫”,对可疑病例标注:“临床高度怀疑疟疾者,请于发作期重新采血复查”。04PARTONE常见易错点规避常见易错点规避结合我十余年的工作经验,把日常最容易碰到的错误整理归类,方便大家提前规避。1操作前环节易错点4.1.1采血时机选择错误:不询问发作时间,任意时机采血,导致原虫密度过低漏诊,规避方法:提前与临床沟通,告知最佳采血时机,对非发作期采血标本,阅片必须加倍扩大视野,提示复查。4.1.2载玻片清洁度不合格:使用带油污的载玻片,导致血膜不均,有空泡,无法阅片,规避方法:所有载玻片无论新旧,使用前都需要酒精去油,重复使用载玻片必须酸泡处理。2血膜制作环节易错点4.2.1推片角度、速度不当:导致薄血膜过短、红细胞重叠,或者过薄原虫密度不够,规避方法:新手统一采用35夹角,匀速一次推片,保证薄血膜长度在2~3cm即可。014.2.2厚血膜取血不当:取血过少导致浓缩不足,取血过多导致过厚脱片,规避方法:严格按照3~4滴血,制成直径1~1.5cm半透明圆形即可。024.2.3厚血膜固定错误:误将厚血膜也用甲醇固定,导致红细胞不溶解,无法找原虫,规避方法:固定时只固定薄血膜,甲醇不要碰到厚血膜,操作后仔细确认。033染色环节易错点4.3.1缓冲液pH不合格:染色偏酸或偏碱,导致原虫核质染色不清,无法识别,规避方法:每月更换缓冲液,使用前测pH,维持在6.6~7.0之间。4.3.2冲洗方法错误:先倒染液后冲洗,导致染料沉渣残留,干扰阅片,规避方法:坚持从一端缓慢流水冲洗,不提前倾倒染液。4阅片环节易错点4.4.1阅片视野不足:偷懒减少阅片数量,导致漏诊,这是疟原虫检查漏诊最常见的原因,占所有漏诊案例的六成以上,规避方法:严格执行可疑病例的阅片视野要求,达不到要求不得发报告。4.4.2形态识别错误:将血小板聚集、染料沉渣误认为疟原虫,或者把不典型原虫误认为杂质,规避方法:不确定的样本必须由高年资医师会诊,重新制片染色确认,不能盲目发报告。
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