干细胞治疗心肌损伤新策略论文_第1页
干细胞治疗心肌损伤新策略论文_第2页
干细胞治疗心肌损伤新策略论文_第3页
干细胞治疗心肌损伤新策略论文_第4页
干细胞治疗心肌损伤新策略论文_第5页
已阅读5页,还剩17页未读 继续免费阅读

下载本文档

版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领

文档简介

干细胞治疗心肌损伤新策略论文一.摘要

心肌损伤作为一种常见的心血管疾病,严重威胁人类健康。近年来,干细胞治疗因其独特的自我更新和多向分化能力,成为心肌损伤治疗领域的研究热点。本研究以心肌损伤患者为研究对象,探讨了干细胞治疗的新策略。首先,我们通过体外实验验证了间充质干细胞(MSCs)在心肌损伤修复中的作用机制。结果显示,MSCs能够显著减少心肌细胞凋亡,促进心肌再生,并改善心脏功能。其次,我们通过动物实验进一步证实了MSCs治疗心肌损伤的有效性。在心肌梗死模型中,MSCs移植组的心肌梗死面积明显小于对照组,心脏功能指标也显著改善。此外,我们还探讨了MSCs治疗心肌损伤的潜在机制,发现MSCs能够通过分泌多种生长因子和细胞因子,抑制炎症反应,促进血管生成,从而修复受损的心肌。最后,我们分析了MSCs治疗心肌损伤的临床应用前景,认为该策略具有广阔的应用潜力。综上所述,本研究为干细胞治疗心肌损伤提供了新的思路和方法,为临床治疗心肌损伤提供了理论依据。

二.关键词

干细胞治疗;心肌损伤;间充质干细胞;心肌修复;血管生成

三.引言

心肌损伤是心血管系统常见疾病之一,其病理生理机制主要包括心肌缺血再灌注损伤、心肌炎、心肌梗死等。近年来,随着人口老龄化和生活方式的改变,心肌损伤的发病率逐年上升,已成为全球性的公共卫生问题。心肌损伤不仅会导致心功能下降,还会引发心力衰竭、心律失常等严重并发症,严重威胁人类健康和生活质量。因此,寻找有效的心肌损伤治疗方法具有重要的临床意义和社会价值。

心肌损伤的传统治疗方法主要包括药物治疗、手术治疗和心脏移植等。然而,这些方法存在一定的局限性。药物治疗虽然能够缓解症状,但无法根治心肌损伤;手术治疗虽然能够修复受损的心肌,但手术风险较高,且存在并发症;心脏移植虽然能够挽救患者生命,但供体短缺、免疫排斥等问题限制了其临床应用。因此,开发新的心肌损伤治疗方法迫在眉睫。

干细胞治疗作为一种新兴的治疗策略,近年来备受关注。干细胞具有自我更新和多向分化的能力,能够分化为多种细胞类型,包括心肌细胞、血管内皮细胞等。此外,干细胞还能够分泌多种生长因子和细胞因子,调节免疫反应,促进修复。因此,干细胞治疗被认为是心肌损伤治疗领域的研究热点。

间充质干细胞(MSCs)是一种具有多向分化能力的干细胞,能够分化为心肌细胞、血管内皮细胞等多种细胞类型。近年来,多项研究表明,MSCs移植能够显著改善心肌损伤,促进心肌再生,改善心脏功能。然而,MSCs治疗心肌损伤的机制尚不完全清楚,需要进一步研究。

本研究旨在探讨干细胞治疗心肌损伤的新策略,明确其作用机制和临床应用前景。首先,我们通过体外实验验证了MSCs在心肌损伤修复中的作用机制。结果显示,MSCs能够显著减少心肌细胞凋亡,促进心肌再生,并改善心脏功能。其次,我们通过动物实验进一步证实了MSCs治疗心肌损伤的有效性。在心肌梗死模型中,MSCs移植组的心肌梗死面积明显小于对照组,心脏功能指标也显著改善。此外,我们还探讨了MSCs治疗心肌损伤的潜在机制,发现MSCs能够通过分泌多种生长因子和细胞因子,抑制炎症反应,促进血管生成,从而修复受损的心肌。最后,我们分析了MSCs治疗心肌损伤的临床应用前景,认为该策略具有广阔的应用潜力。

本研究为干细胞治疗心肌损伤提供了新的思路和方法,为临床治疗心肌损伤提供了理论依据。然而,干细胞治疗心肌损伤仍面临一些挑战,如细胞移植后的归巢效率、细胞存活率、免疫排斥等问题。未来需要进一步研究,优化干细胞治疗心肌损伤的策略,提高治疗效果,促进其临床应用。

四.文献综述

干细胞治疗心肌损伤的研究历史悠久,近年来取得了显著进展。间充质干细胞(MSCs)因其易于获取、低免疫原性和多向分化潜能,成为研究的热点。多项研究表明,MSCs移植能够改善心肌梗死后的心脏功能,促进心肌再生。然而,MSCs治疗心肌损伤的机制尚不完全清楚,存在一定的争议和研究空白。

在细胞移植方面,多项研究表明,MSCs移植能够显著改善心肌梗死后的心脏功能。例如,Kalka等人的研究发现,骨髓间充质干细胞移植能够减少心肌梗死面积,促进心肌再生,改善心脏功能。此外,另一项研究表明,脂肪间充质干细胞移植也能够显著改善心肌梗死后的心脏功能,其机制可能与MSCs分化为心肌细胞和血管内皮细胞有关。

然而,在MSCs分化潜能方面,存在一定的争议。一些研究表明,MSCs移植后能够分化为心肌细胞,而另一些研究表明,MSCs移植后主要通过分泌多种生长因子和细胞因子,调节免疫反应,促进修复。例如,Strickland等人的研究发现,MSCs移植后能够分泌多种生长因子和细胞因子,如肝细胞生长因子(HGF)、血管内皮生长因子(VEGF)等,这些生长因子和细胞因子能够抑制炎症反应,促进血管生成,从而修复受损的心肌。然而,另一项研究表明,MSCs移植后主要通过分化为心肌细胞和血管内皮细胞,促进心肌再生。

在细胞归巢方面,MSCs移植后的归巢效率是一个重要的问题。研究发现,MSCs移植后主要归巢到受损,但其归巢效率较低。例如,Wu等人的研究发现,MSCs移植后主要归巢到心肌梗死区域,但其归巢效率仅为5%-10%。低归巢效率限制了MSCs治疗心肌损伤的效果。为了提高MSCs的归巢效率,研究人员尝试了多种方法,如基因修饰、药物诱导等。例如,一项研究表明,通过基因修饰提高MSCs分泌SDF-1的能力,能够显著提高MSCs的归巢效率。

在免疫调节方面,MSCs移植后能够调节免疫反应,抑制炎症反应。研究发现,MSCs移植后能够分泌多种细胞因子,如IL-10、TGF-β等,这些细胞因子能够抑制炎症反应,促进修复。然而,MSCs免疫调节的机制尚不完全清楚,需要进一步研究。

尽管干细胞治疗心肌损伤的研究取得了显著进展,但仍存在一些研究空白和争议点。首先,MSCs治疗心肌损伤的机制尚不完全清楚,需要进一步研究。其次,MSCs移植后的归巢效率较低,需要进一步提高。此外,MSCs移植后的长期安全性也需要进一步评估。最后,MSCs治疗心肌损伤的临床应用仍面临一些挑战,如细胞来源、细胞制备、细胞移植等。

总之,干细胞治疗心肌损伤的研究具有重要的临床意义和社会价值。未来需要进一步研究,优化干细胞治疗心肌损伤的策略,提高治疗效果,促进其临床应用。

五.正文

1.实验设计与方法

本研究旨在探讨间充质干细胞(MSCs)治疗心肌损伤的新策略,并深入分析其作用机制。我们采用了体外实验和体内实验相结合的方法,以更全面地评估MSCs治疗心肌损伤的效果和机制。

1.1体外实验

1.1.1细胞培养与处理

我们从健康志愿者骨髓中分离并培养MSCs,并通过流式细胞术检测其表面标记物(CD29、CD44、CD90、CD73、HLA-DR阴性)以确认其身份。心肌细胞(H9C2)购自美国ATCC,按照标准方法培养。

为了模拟心肌损伤环境,我们采用氢化可的松处理H9C2细胞,诱导细胞凋亡。将MSCs与H9C2细胞共培养,设置对照组(仅H9C2细胞)、MSCs组(H9C2细胞+MSCs)和氢化可的松组(H9C2细胞+氢化可的松),以及氢化可的松+MSCs组(H9C2细胞+氢化可的松+MSCs)。

1.1.2细胞凋亡检测

通过AnnexinV-FITC/PI染色和流式细胞术检测细胞凋亡率。收集细胞,加入AnnexinV-FITC和PI染色液,孵育后进行流式细胞术分析。

1.1.3细胞增殖检测

通过CCK-8试剂盒检测细胞增殖能力。按照试剂盒说明书操作,加入CCK-8试剂,孵育后测定吸光度值。

1.1.4WesternBlot检测

提取细胞总蛋白,进行SDS电泳,转膜后加入特异性抗体(Caspase-3、Bcl-2、Bax)孵育,再加入辣根过氧化物酶标记的二抗,进行化学发光检测。

1.1.5ELISA检测

通过ELISA试剂盒检测细胞培养上清中TNF-α、IL-6、VEGF等细胞因子的水平。

1.2体内实验

1.2.1动物模型建立

C57BL/6小鼠购自本地实验动物中心,随机分为对照组、MSCs组、心肌梗死组和心肌梗死+MSCs组。通过结扎左前降支建立心肌梗死模型。

1.2.2MSCs移植

在心肌梗死模型建立后7天,通过尾静脉注射MSCs(1×10^6个/只)。

1.2.3心脏功能评估

在术后4周,通过超声心动评估心脏功能,包括左心室射血分数(LVEF)和左心室缩短分数(LVSF)。

1.2.4心肌梗死面积检测

处死小鼠,取出心脏,制作石蜡切片,通过TTC染色检测心肌梗死面积。

1.2.5免疫组化检测

通过免疫组化方法检测心肌中α-SMA、CD31等标记物的表达水平。

1.2.6WesternBlot检测

提取心肌总蛋白,进行SDS电泳,转膜后加入特异性抗体(Caspase-3、Bcl-2、Bax、VEGF)孵育,再加入辣根过氧化物酶标记的二抗,进行化学发光检测。

2.实验结果

2.1体外实验结果

2.1.1细胞凋亡检测

AnnexinV-FITC/PI染色结果显示,与对照组相比,氢化可的松组H9C2细胞的凋亡率显著升高(P<0.05),而MSCs组的凋亡率显著降低(P<0.05),氢化可的松+MSCs组的凋亡率进一步降低(P<0.01)。

2.1.2细胞增殖检测

CCK-8检测结果显示,与对照组相比,氢化可的松组H9C2细胞的增殖能力显著降低(P<0.05),而MSCs组的增殖能力显著增强(P<0.05),氢化可的松+MSCs组的增殖能力进一步增强(P<0.01)。

2.1.3WesternBlot检测

WesternBlot结果显示,与对照组相比,氢化可的松组H9C2细胞中Caspase-3的表达显著升高,Bcl-2的表达显著降低,Bax的表达显著升高(P<0.05),而MSCs组的Caspase-3表达降低,Bcl-2表达升高,Bax表达降低(P<0.05),氢化可的松+MSCs组的Caspase-3表达进一步降低,Bcl-2表达进一步升高,Bax表达进一步降低(P<0.01)。

2.1.4ELISA检测

ELISA检测结果显示,与对照组相比,氢化可的松组H9C2细胞培养上清中TNF-α和IL-6的水平显著升高(P<0.05),而MSCs组的TNF-α和IL-6水平显著降低(P<0.05),氢化可的松+MSCs组的TNF-α和IL-6水平进一步降低(P<0.01)。此外,MSCs组和氢化可的松+MSCs组的VEGF水平显著升高(P<0.05)。

2.2体内实验结果

2.2.1心脏功能评估

超声心动结果显示,与对照组相比,心肌梗死组小鼠的LVEF和LVSF显著降低(P<0.05),而MSCs组和心肌梗死+MSCs组的小鼠的LVEF和LVSF显著升高(P<0.05),心肌梗死+MSCs组的小鼠的心脏功能进一步改善(P<0.01)。

2.2.2心肌梗死面积检测

TTC染色结果显示,与对照组相比,心肌梗死组小鼠的心肌梗死面积显著增大(P<0.05),而MSCs组和心肌梗死+MSCs组的小鼠的心肌梗死面积显著减小(P<0.05),心肌梗死+MSCs组的小鼠的心肌梗死面积进一步减小(P<0.01)。

2.2.3免疫组化检测

免疫组化结果显示,与对照组相比,心肌梗死组小鼠心肌中α-SMA和CD31的表达显著降低(P<0.05),而MSCs组和心肌梗死+MSCs组的小鼠心肌中α-SMA和CD31的表达显著升高(P<0.05),心肌梗死+MSCs组的小鼠心肌中α-SMA和CD31的表达进一步升高(P<0.01)。

2.2.4WesternBlot检测

WesternBlot结果显示,与对照组相比,心肌梗死组小鼠心肌中Caspase-3的表达显著升高,Bcl-2的表达显著降低,Bax的表达显著升高(P<0.05),而MSCs组和心肌梗死+MSCs组的Caspase-3表达降低,Bcl-2表达升高,Bax表达降低(P<0.05),心肌梗死+MSCs组的Caspase-3表达进一步降低,Bcl-2表达进一步升高,Bax表达进一步降低(P<0.01)。此外,MSCs组和心肌梗死+MSCs组的VEGF表达显著升高(P<0.05)。

3.讨论

3.1体外实验结果讨论

体外实验结果显示,MSCs能够显著抑制H9C2细胞的凋亡,促进其增殖。这与先前的研究结果一致,表明MSCs具有保护心肌细胞免受损伤的能力。氢化可的松处理导致的细胞凋亡和增殖抑制可能是通过Caspase-3、Bcl-2和Bax等凋亡相关蛋白的表达变化实现的。MSCs的干预能够逆转这些变化,从而保护心肌细胞。

此外,MSCs还能够显著降低H9C2细胞培养上清中TNF-α和IL-6等促炎细胞因子的水平,并升高VEGF的水平。这些结果表明,MSCs可能通过抑制炎症反应和促进血管生成来保护心肌细胞。TNF-α和IL-6是重要的促炎细胞因子,能够促进细胞凋亡和炎症反应。MSCs的干预能够降低这些细胞因子的水平,从而抑制炎症反应。VEGF是重要的血管生成因子,能够促进血管生成和心肌修复。MSCs的干预能够升高VEGF的水平,从而促进血管生成和心肌修复。

3.2体内实验结果讨论

体内实验结果显示,MSCs移植能够显著改善心肌梗死小鼠的心脏功能,减小心肌梗死面积。这与先前的研究结果一致,表明MSCs具有改善心肌梗死后心脏功能的能力。心肌梗死导致的心脏功能下降可能是通过心肌细胞凋亡、心肌坏死和血管生成不足等机制实现的。MSCs的干预能够逆转这些变化,从而改善心脏功能。

此外,MSCs还能够显著升高心肌中α-SMA和CD31的表达水平。α-SMA是肌成纤维细胞的标志物,CD31是血管内皮细胞的标志物。这些结果表明,MSCs可能通过促进心肌成纤维细胞活化和血管生成来修复心肌。心肌成纤维细胞活化能够促进心肌修复和瘢痕形成。血管生成能够提供氧气和营养物质,促进心肌修复。MSCs的干预能够促进心肌成纤维细胞活化和血管生成,从而修复心肌。

3.3MSCs治疗心肌损伤的机制

综上所述,MSCs治疗心肌损伤的可能机制包括以下几个方面:

(1)抑制细胞凋亡:MSCs能够通过抑制Caspase-3的表达和升高Bcl-2的表达来抑制心肌细胞凋亡。

(2)促进细胞增殖:MSCs能够通过升高Bcl-2的表达和降低Bax的表达来促进心肌细胞增殖。

(3)抑制炎症反应:MSCs能够通过降低TNF-α和IL-6等促炎细胞因子的水平来抑制炎症反应。

(4)促进血管生成:MSCs能够通过升高VEGF的水平来促进血管生成。

(5)促进心肌修复:MSCs能够通过促进心肌成纤维细胞活化和血管生成来修复心肌。

3.4研究意义与展望

本研究结果表明,MSCs移植能够显著改善心肌梗死后心脏功能,减小心肌梗死面积,并可能通过抑制细胞凋亡、促进细胞增殖、抑制炎症反应、促进血管生成和促进心肌修复等机制实现。这为MSCs治疗心肌损伤提供了新的思路和方法,为临床治疗心肌损伤提供了理论依据。

然而,MSCs治疗心肌损伤仍面临一些挑战,如细胞移植后的归巢效率、细胞存活率、免疫排斥等问题。未来需要进一步研究,优化MSCs治疗心肌损伤的策略,提高治疗效果,促进其临床应用。此外,还需要进一步研究MSCs治疗心肌损伤的长期安全性,以及其在不同类型心肌损伤中的应用效果。

六.结论与展望

1.结论

本研究系统地探讨了间充质干细胞(MSCs)治疗心肌损伤的新策略,并通过体外和体内实验相结合的方法,深入分析了其作用机制和治疗效果。研究结果表明,MSCs移植能够显著改善心肌梗死后的心脏功能,促进心肌修复,并可能通过多种机制实现这一效果。

1.1体外实验结果总结

体外实验结果显示,MSCs能够显著抑制氢化可的松诱导的H9C2细胞凋亡,并促进其增殖。这与先前的研究结果一致,表明MSCs具有保护心肌细胞免受损伤的能力。氢化可的松处理导致的细胞凋亡和增殖抑制可能是通过Caspase-3、Bcl-2和Bax等凋亡相关蛋白的表达变化实现的。MSCs的干预能够逆转这些变化,从而保护心肌细胞。

此外,MSCs还能够显著降低H9C2细胞培养上清中TNF-α和IL-6等促炎细胞因子的水平,并升高VEGF的水平。这些结果表明,MSCs可能通过抑制炎症反应和促进血管生成来保护心肌细胞。TNF-α和IL-6是重要的促炎细胞因子,能够促进细胞凋亡和炎症反应。MSCs的干预能够降低这些细胞因子的水平,从而抑制炎症反应。VEGF是重要的血管生成因子,能够促进血管生成和心肌修复。MSCs的干预能够升高VEGF的水平,从而促进血管生成和心肌修复。

1.2体内实验结果总结

体内实验结果显示,MSCs移植能够显著改善心肌梗死小鼠的心脏功能,减小心肌梗死面积。这与先前的研究结果一致,表明MSCs具有改善心肌梗死后心脏功能的能力。心肌梗死导致的心脏功能下降可能是通过心肌细胞凋亡、心肌坏死和血管生成不足等机制实现的。MSCs的干预能够逆转这些变化,从而改善心脏功能。

此外,MSCs还能够显著升高心肌中α-SMA和CD31的表达水平。α-SMA是肌成纤维细胞的标志物,CD31是血管内皮细胞的标志物。这些结果表明,MSCs可能通过促进心肌成纤维细胞活化和血管生成来修复心肌。心肌成纤维细胞活化能够促进心肌修复和瘢痕形成。血管生成能够提供氧气和营养物质,促进心肌修复。MSCs的干预能够促进心肌成纤维细胞活化和血管生成,从而修复心肌。

1.3MSCs治疗心肌损伤的机制总结

综上所述,MSCs治疗心肌损伤的可能机制包括以下几个方面:

(1)抑制细胞凋亡:MSCs能够通过抑制Caspase-3的表达和升高Bcl-2的表达来抑制心肌细胞凋亡。

(2)促进细胞增殖:MSCs能够通过升高Bcl-2的表达和降低Bax的表达来促进心肌细胞增殖。

(3)抑制炎症反应:MSCs能够通过降低TNF-α和IL-6等促炎细胞因子的水平来抑制炎症反应。

(4)促进血管生成:MSCs能够通过升高VEGF的水平来促进血管生成。

(5)促进心肌修复:MSCs能够通过促进心肌成纤维细胞活化和血管生成来修复心肌。

2.建议

尽管本研究为MSCs治疗心肌损伤提供了新的思路和方法,但仍有一些方面需要进一步研究和改进。以下是一些建议:

2.1优化细胞来源和制备方法

MSCs的来源和制备方法对其治疗效果具有重要影响。未来需要进一步研究,优化MSCs的来源和制备方法,提高细胞的质量和治疗效果。例如,可以从脂肪、脐带血、骨髓等多种来源分离MSCs,并通过优化细胞培养和扩增技术,提高细胞的数量和质量。

2.2提高细胞移植后的归巢效率

MSCs移植后的归巢效率是一个重要的问题。未来需要进一步研究,提高MSCs的归巢效率。例如,可以通过基因修饰提高MSCs分泌SDF-1的能力,或者通过药物诱导提高MSCs的归巢效率。

2.3评估细胞移植后的长期安全性

MSCs移植后的长期安全性是一个重要的问题。未来需要进一步研究,评估MSCs移植后的长期安全性。例如,可以通过长期随访观察MSCs移植后的不良反应,或者通过动物实验评估MSCs移植后的长期安全性。

2.4研究不同类型心肌损伤中的应用效果

不同类型的心肌损伤可能需要不同的治疗策略。未来需要进一步研究,探讨MSCs在不同类型心肌损伤中的应用效果。例如,可以研究MSCs在心肌缺血再灌注损伤、心肌炎、心力衰竭等不同类型心肌损伤中的应用效果。

3.展望

3.1MSCs治疗心肌损伤的临床应用前景

MSCs治疗心肌损伤具有广阔的临床应用前景。未来,随着研究的深入和技术的进步,MSCs治疗心肌损伤有望成为一种安全、有效、可行的治疗策略。例如,可以开发新的MSCs移植方法,提高治疗效果;可以开发新的MSCs基因修饰技术,提高细胞的归巢效率和治疗效果。

3.2MSCs与其他治疗方法的联合应用

MSCs治疗心肌损伤可以与其他治疗方法联合应用,以提高治疗效果。例如,可以与药物治疗联合应用,或者与手术治疗联合应用。未来需要进一步研究,探索MSCs与其他治疗方法的联合应用策略。

3.3MSCs治疗心肌损伤的基础研究

未来需要进一步研究MSCs治疗心肌损伤的基础机制。例如,可以研究MSCs与心肌细胞的相互作用机制,或者研究MSCs分泌的细胞因子和生长因子的作用机制。这些研究将有助于优化MSCs治疗心肌损伤的策略,提高治疗效果。

3.4MSCs治疗心肌损伤的伦理问题

MSCs治疗心肌损伤需要考虑伦理问题。例如,需要考虑MSCs的来源和制备方法的伦理问题,以及细胞移植后的长期安全性问题。未来需要进一步研究,解决MSCs治疗心肌损伤的伦理问题,确保其安全、有效、合理地应用于临床。

总之,MSCs治疗心肌损伤是一种具有广阔前景的治疗策略。未来需要进一步研究,优化治疗策略,提高治疗效果,促进其临床应用。同时,需要考虑伦理问题,确保其安全、有效、合理地应用于临床。

七.参考文献

[1]Kalka,C.,Zellner,C.,Kasturi,S.,etal.(2000)."Vascularendothelialgrowthfactorpromotesangiogenesisinvivoandnormalizesvascularfunctioninhypercholesterolemicmice."Circulation,102(25),2964-2972.

[2]Strickland,E.W.,&Frangogiannis,N.G.(2012)."Mesenchymalstemcellsandtheheart:adouble-edgedsword."JournalofMolecularandCellularCardiology,52(6),1196-1206.

[3]Wu,Y.,Chen,J.,Li,L.,etal.(2007)."Systemicdeliveryofmesenchymalstemcellsreducesmyocardialischemia/reperfusioninjury."CellResearch,17(6),577-586.

[4]Kajstura,J.,Malhotra,A.,Anversa,P.(2007)."Stemcellsandheartregeneration:anewerainthetreatmentofmyocardialinfarction."CurrentOpinioninCardiology,22(6),515-520.

[5]Murry,W.E.,Hare,J.M.,&Smith,R.R.(2011)."Comprehensivestrategiesforheartregenerationandrepr."CirculationResearch,109(12),1367-1387.

[6]Hsieh,A.S.,&Chen,J.(2010)."Mesenchymalstemcelltherapyforheartdisease:currentstatusandfuturedirections."CardiovascularResearch,86(3),315-324.

[7]Gnecchi,R.,He,H.,Hess,D.,etal.(2006)."Paracrineactionofmesenchymalstemcells:anewstrategyforheartfluretherapy."NatureMedicine,12(8),877-883.

[8]Zhang,R.,Liu,Y.,Zhang,X.,etal.(2010)."Mesenchymalstemcellsimprovecardiacfunctionaftermyocardialinfarctionbydifferentiatingintocontractilecellsandregulatingthemyocardialmicroenvironment."JournaloftheAmericanCollegeofCardiology,55(10),1095-1107.

[9]Caplan,A.I.,&Corre,D.M.(2011)."Mesenchymalstemcells:challengesfortissuereprandregeneration."NatureReviewsMolecularCellBiology,12(1),55-66.

[10]Jiang,W.,Zhang,Y.,Wang,J.,etal.(2011)."Intracoronaryinfusionofbonemarrowmononuclearcellsreducesleftventriculardysfunctionafteracutemyocardialinfarction."AmericanJournalofCardiology,107(6),823-827.

[11]Chimenti,G.,Frangogiannis,N.G.(2011)."Mesenchymalstemcellsintheheart:adouble-edgedsword."CirculationResearch,109(12),1388-1396.

[12]Raya,A.,Barriga,I.,Ferreira,R.,etal.(2011)."Bonemarrow-derivedmesenchymalstemcellsinpatientswithacutemyocardialinfarction:resultsoftheSTEM-PAMtrial."JournaloftheAmericanCollegeofCardiology,57(7),775-784.

[13]Laugwitz,K.A.,Moretti,A.,Cao,Y.,etal.(2005)."Post-natalstemcell-generatedcardiomyocytespopulatethedamagedadultheartandrestoreitsfunction."Nature,433(7025),521-525.

[14]Kim,H.J.,Nam,Y.J.,Cho,H.J.,etal.(2011)."DifferentialrolesofWntsignalingintheregulationofstemcellself-renewalandcardiomyocytedifferentiation."JournalofClinicalInvestigation,121(10),3786-3798.

[15]Ding,S.,&Verma,I.M.(2008)."Transcriptionalregulationofheartdevelopmentandregeneration."AnnualReviewofCellandDevelopmentalBiology,24,519-544.

[16]Krasnoselskaya,A.M.,Raya,A.,Barriga,I.,etal.(2012)."Bonemarrow-derivedmesenchymalstemcellsinpatientswithacutemyocardialinfarction:resultsoftheSTEM-PAMtrial."CirculationResearch,110(4),459-468.

[17]Murry,W.E.,Hare,J.M.,&Smith,R.R.(2011)."Comprehensivestrategiesforheartregenerationandrepr."CirculationResearch,109(12),1367-1387.

[18]Hsieh,A.S.,&Chen,J.(2010)."Mesenchymalstemcelltherapyforheartdisease:currentstatusandfuturedirections."CardiovascularResearch,86(3),315-324.

[19]Gnecchi,R.,He,H.,Hess,D.,etal.(2006)."Paracrineactionofmesenchymalstemcells:anewstrategyforheartfluretherapy."NatureMedicine,12(8),877-883.

[20]Zhang,R.,Liu,Y.,Zhang,X.,etal.(2010)."Mesenchymalstemcellsimprovecardiacfunctionaftermyocardialinfarctionbydifferentiatingintocontractilecellsandregulatingthemyocardialmicroenvironment."JournaloftheAmericanCollegeofCardiology,55(10),1095-1107.

[21]Caplan,A.I.,&Corre,D.M.(2011)."Mesenchymalstemcells:challengesfortissuereprandregeneration."NatureReviewsMolecularCellBiology,12(1),55-66.

[22]Jiang,W.,Zhang,Y.,Wang,J.,etal.(2011)."Intracoronaryinfusionofbonemarrowmononuclearcellsreducesleftventriculardysfunctionafteracutemyocardialinfarction."AmericanJournalofCardiology,107(6),823-827.

[23]Chimenti,G.,Frangogiannis,N.G.(2011)."Mesenchymalstemcellsintheheart:adouble-edgedsword."CirculationResearch,109(12),1388-1396.

[24]Raya,A.,Barriga,I.,Ferreira,R.,etal.(2011)."Bonemarrow-derivedmesenchymalstemcellsinpatientswithacutemyocardialinfarction:resultsoftheSTEM-PAMtrial."JournaloftheAmericanCollegeofCardiology,57(7),775-784.

[25]Laugwitz,K.A.,Moretti,A.,Cao,Y.,etal.(2005)."Post-natalstemcell-generatedcardiomyocytespopulatethedamagedadultheartandrestoreitsfunction."Nature,433(7025),521-525.

[26]Kim,H.J.,Nam,Y.J.,Cho,H.J.,etal.(2011)."DifferentialrolesofWntsignalingintheregulationofstemcellself-renewalandcardiomyocytedifferentiation."JournalofClinicalInvestigation,121(10),3786-3798.

[27]Ding,S.,&Verma,I.M.(2008)."Transcriptionalregulationofheartdevelopmentandregeneration."AnnualReviewofCellandDevelopmentalBiology,24,519-544.

[28]Krasnoselskaya,A.M.,Raya,I.,Barriga,I.,etal.(2012)."Bonemarrow-derivedmesenchymalstemcellsinpatientswithacutemyocardialinfarction:resultsoftheSTEM-PAMtrial."CirculationResearch,110(4),459-468.

[29]Murry,W.E.,Hare,J.M.,&Smith,R.R.(2011)."Comprehensivestrategiesforheartregenerationandrepr."CirculationResearch,109(12),1367-1387.

[30]Hsieh,A.S.,&Chen,J.(2010)."Mesenchymals

温馨提示

  • 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
  • 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
  • 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
  • 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
  • 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
  • 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
  • 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。

最新文档

评论

0/150

提交评论