急性胰腺炎生物诊疗新技术及药物研发进展

急性胰腺炎生物诊疗新技术及药物研发进展【提要】急性胰腺炎是全球范围内导致消化系统急症住院的主要病因之一，近二十年来我国的发病率呈持续上升趋势。急性胰腺炎的发生与饮酒、胆道疾病、高甘油三酯血症等多种高危因素密切相关，发病机制涉及胰酶异常激活及免疫炎症级联反应等多个层面，但目前临床上仍缺乏特异性高效治疗手段。近年来，多组学技术、纳米医学及分子生物学的快速发展，为急性胰腺炎的生物诊疗与药物研发带来了突破性进展。本文系统梳理急性胰腺炎生物诊断领域的前沿技术，深入探讨生物治疗的核心策略，并归纳了药物研发的最新进展，旨在为该疾病的精准诊疗提供全面的理论参考与潜在研究方向。【关键词】急性胰腺炎；生物诊断；生物治疗；药物研发急性胰腺炎（acutepancreatitis，AP）是消化系统极具临床挑战性的急症之一，也是导致患者住院的常见原因。近二十年来，我国AP发病率持续攀升，目前已达0.71%，给医疗卫生系统带来显著负担［1⁃2］。大量研究表明，AP的发生与多种高危因素密切相关，包括过量饮酒、胆道结石、高甘油三酯血症、长期吸烟及肥胖等［3⁃4］。其发病机制涉及胰酶异常激活、免疫炎症反应、细胞损伤及全身级联反应等多个层面［5］。尽管近年来对AP病理机制的认识不断深化，临床治疗策略也日趋多元化，但迄今仍缺乏针对疾病核心机制的特异性高效治疗手段，重症患者的病死率和并发症发生率依然居高不下。在此背景下，基于多组学技术、纳米医学及分子生物学的生物诊疗新技术与新型药物研发正成为AP领域的研究前沿，为突破当前临床瓶颈带来了新的契机。本文将从生物诊断、生物治疗及药物研发3个核心维度，系统梳理AP相关基础研究与临床前研究的最新进展，以期为该疾病的精准诊疗创新提供参考。一、生物诊断技术进展在AP的临床管理实践中，疾病的早期精准分层与预后评估是优化治疗决策、改善患者预后的核心环节。传统评分系统在时效性和特异性方面均存在一定局限，难以充分满足个体化诊疗需求。近年来，随着多组学技术与分子生物学的深度融合，AP的生物诊断正朝着精准化与早期化方向加速演进。其中，基于细胞外囊泡及外泌体、肠道菌群构成、代谢相关指标的新型生物标志物与检测技术尤为引人关注，为提升AP诊断的敏感性与特异性提供了新的突破口。1.细胞外囊泡与外泌体：近年来，细胞外囊泡及外泌体的检测与鉴定已成为AP严重程度分层研究中的热点方向。外泌体在AP发病早期即可对胰腺损伤与炎症信号产生迅速应答，其所携带的特异性分子能够直接反映疾病的动态演进过程。研究表明，AP早期阶段外泌体中S100A8/S100A9的浓度与疾病最终严重程度密切相关［6］。此外，借助高灵敏度蛋白质组学技术对循环血中细胞外囊泡的组分进行系统解析，发现血清淀粉样A蛋白可作为特异性生物标志物，为AP的快速分型及预后评估提供可靠依据［7］。上述基于外泌体的循环生物标志物从体液层面捕捉了胰腺损伤的分子信号，而肠道微生态作为与胰腺通过“肠⁃胰轴”紧密关联的另一重要维度，其结构改变同样为AP的早期诊断与分层提供了独特的微生态学视角。2.肠道菌群与AP诊断：肠道菌群作为人体微生态系统的核心组成，其结构失衡与AP的发病机制、疾病严重程度及远期预后密切相关。研究表明，AP患者存在特定的肠道菌群表型特征，且该特征与疾病严重程度显著相关［8］。Neesse团队［9］采用全长16SrRNA测序联合宏基因组学，系统解析了AP患者的微生物组谱系，并基于16种差异丰度菌群及全身性炎症反应综合征指标构建了分类器模型。该模型在AP严重程度评估中的效能显著优于传统复合评分系统，为疾病分层提供了更为精准的微生态诊断工具。在后续队列研究中，该团队对238份口腔拭子与249份直肠拭子样本进行了深度测序分析，结果显示AP患者入院时的肠道菌群组成与出院后并发症发生风险存在独立关联。基于11种关键菌群构建的岭回归模型，在预测AP患者出院后糖尿病发生风险时，阳性预测值达66.6%，阴性预测值与准确率分别高达96%和95%，充分体现了菌群标志物在远期预后评估中的独特价值［10］。值得注意的是，尽管微生物组分分析在AP分型和预后预测中展现出良好前景，其临床应用仍受限于样本异质性及反向因果关系等干扰因素。例如，胰腺癌与AP的微生物组特征可能存在一定重叠，未来需整合多组学数据以进一步提升检测的特异性［11⁃14］。3.代谢指标与AP临床分级：Neesse团队对菌群的分析进一步提示，特定菌群的功能输出，尤其是代谢产物的变化，可能是连接微生态失衡与AP病理进展的关键中介环节，这也使得基于代谢功能的检测成为疾病严重程度评估的重要补充维度。研究显示，严重AP患者样本中富集的菌群多属于短链脂肪酸（short⁃chainfattyacids，SCFAs）的常见生产菌，且重症患者体内SCFAs产量显著升高，这为AP早期严重程度分型提供了新的代谢标志物筛选方向［9］。此外，一项回顾性研究通过筛选与高甘油三酯血症性AP严重程度相关的独立临床危险因素及代谢指标，构建了基于乳酸脱氢酶、血清肌酐、内脏脂肪组织指数、血清白蛋白及甘油三酯⁃葡萄糖指数的预测模型，该模型可独立评估高甘油三酯血症性AP的严重程度，为实现疾病的早期分级和个体化干预提供了有效工具［15］。二、AP的生物治疗技术随着对AP病理生理机制认识的不断深入，生物治疗已从传统的对症支持模式逐步转向针对疾病核心环节的精准干预。当前研究重点聚焦于线粒体功能修复、代谢重编程调控、肠道微生态平衡重建及免疫炎症网络调节等关键领域，一系列靶向性生物治疗策略在实验模型中已展现出显著的组织保护作用与抗炎效应，为突破AP的治疗瓶颈提供了全新方向和重要契机。1.线粒体靶向疗法：线粒体功能障碍以ATP合成受损与活性氧生成增加为主要特征，近年研究认为其与胰腺炎症加重及细胞死亡密切相关［16］。在AP病理过程中，线粒体可发生钙超载、通透性转换、氧化应激增强、自噬受损及细胞死亡调控异常等改变，进而加剧胰腺的炎症反应与组织损伤［17⁃18］。Hu等［19］研究发现，间充质干细胞可通过细胞外囊泡向受损的胰腺腺泡细胞递送经缺氧预处理的功能性线粒体，从而有效恢复胰腺腺泡细胞的代谢功能、维持ATP供应，并表现出显著的损伤抑制效应。线粒体作为细胞能量代谢的中枢，其功能状态直接决定了细胞的代谢走向，而代谢网络的紊乱又是AP病理级联反应的关键驱动因素。因此，在修复线粒体功能的基础上，进一步对整体代谢环境进行调控，已成为AP生物治疗的自然延伸方向。2.代谢干预：随着代谢组学与分子生物学研究的持续深入，细胞代谢紊乱已被证实不仅是AP的伴随现象，更是驱动腺泡细胞损伤、局部炎症风暴及全身并发症发生发展的关键枢纽。由此，针对代谢环节进行干预调控，已成为AP治疗策略探索中的重要新方向。高甘油三酯血症是AP的重要高危因素，尤其在我国人群中，APOA5基因缺陷与遗传性严重高甘油三酯血症性AP密切相关［20］。研究发现，通过寒冷暴露或β3⁃肾上腺素能受体激动剂激活棕色脂肪组织，可有效纠正Apoa5⁻/⁻仓鼠的严重高甘油三酯血症并减轻胰腺损伤，为该亚型AP的病因治疗提供了明确靶点［21］。此外，酮体代谢的调控亦展现出潜在治疗价值：轻症AP患者血清中β⁃羟基丁酸（β⁃hydroxybutyrate，β⁃OHB）水平显著升高，而重症患者中该现象缺失。进一步研究证实，内源性β⁃OHB可通过抑制促炎巨噬细胞的过度活化来限制炎症反应，外源性补充β⁃OHB亦可获得类似疗效，从而揭示了酮体代谢在AP炎症调控中的关键作用［22］。营养代谢失衡与AP的发生发展密切相关，针对性地补充关键营养素或调节相关代谢通路已成为具有前景的治疗策略。孟德尔随机化研究表明，一碳代谢相关营养素（如同型半胱氨酸、维生素B族）与AP风险呈负相关［23］。在AP小鼠模型中，外源性补充维生素B12可激活CBS/SIRT1信号通路，抑制氧化应激与线粒体损伤，从而显著缓解胰腺组织坏死［24］。此外，胆汁酸代谢紊乱与AP预后密切相关：藜芦醇酸在AP急性期水平下降、恢复期回升，其动态变化与胰腺坏死程度高度相关。进一步研究发现，藜芦醇酸及其衍生物奥贝胆酸可保护腺泡细胞、抑制胰腺坏死，在AP小鼠模型中展现出明确的治疗效应，为基于胆汁酸代谢的精准干预策略提供了实验依据［25］。上述代谢干预策略从宿主自身代谢调控的角度出发，有效纠正了AP相关的能量与营养代谢紊乱。与此同时，肠道菌群作为宿主的“第二基因组”和关键代谢参与者，其功能状态与AP的发生发展同样密切相关，针对肠道微生态的干预也因此成为代谢调控路径的自然延伸与重要补充。3.肠道菌群干预：肠道微生物群的早期生态失调可能加重AP的严重程度，特定病原菌的增殖亦可加剧胰腺炎症［26］。肠道菌群代谢产物作为连接微生态失调与宿主炎症反应的关键介质，日益受到关注。益生元菊粉可抑制AP中致病菌的增殖，同时富集SCFAs生产菌。以丁酸盐为代表的SCFAs可通过抑制组蛋白去乙酰化酶3活性，改善肠道屏障功能并抑制系统性炎症，从而降低肥胖相关AP的发病风险［27］。进一步研究证实，直接补充丁酸钠可恢复肠道微生态平衡，增强肠黏膜屏障完整性与免疫调节功能，通过“肠道菌群⁃代谢⁃免疫轴”发挥治疗效应，为菌群代谢物在AP中的临床应用提供了理论依据［28］。粪菌移植（fecalmicrobiotatransplantation，FMT）通过将健康供体的肠道微生物群直接移植至患者体内，快速重建肠道微生态平衡，进而减轻胰腺组织损伤与炎症反应。研究表明，FMT可增加AP患者肠道中有益菌属（如Parabacteroides）的丰度，促进乙酸盐介导的中性粒细胞浸润抑制作用，有效缓解肝素酶诱导的AP［29］。另有研究指出，FMT可使重症AP的感染率及并发症发生率降低约40%，同时恢复患者肠道微生态平衡［30］。机制研究进一步揭示，其作用可能与肠道菌群来源的烟酰胺单核苷酸激活SIRT3信号通路、上调过氧化物还原酶5表达并抑制炎症反应有关［31］。尽管FMT展现出显著的治疗潜力，但供体筛选标准尚未统一、潜在感染风险及个体耐受性差异等问题仍需通过规范化的临床研究加以解决。4.免疫调节：无论是线粒体功能修复、代谢重编程还是肠道微生态重建，其最终的器官保护效应均通过调节免疫炎症反应这一共同通路得以实现。因此，直接针对免疫细胞与炎症因子的精准调控，构成了上述治疗策略的核心汇聚点与效应放大环节。AP的病理进程伴随剧烈的免疫炎症反应，天然免疫与适应性免疫的异常激活是导致组织损伤持续放大的核心机制，因而对免疫细胞或细胞因子的精准干预已成为重要的治疗研究方向。在适应性免疫层面，CD4⁺T细胞浸润于炎症胰腺组织，其数量减少与晚期重症AP及不良并发症密切相关［32］。进一步研究发现，脾脏CD4⁺T细胞可作为胆碱能抗炎通路的关键中间介质，通过迷走神经依赖的α7烟碱型乙酰胆碱受体（α7nAChR）信号通路减轻小鼠AP的炎症损伤，为靶向T细胞的免疫调节策略提供了新思路［33］。在天然免疫调控方面，抗炎因子IL⁃37在AP患者血清中水平显著降低，且其下降程度与胰腺坏死的发生密切相关。在AP小鼠模型中，外源性补充重组IL⁃37可抑制焦孔素D（gasderminD，GSDMD）介导的腺泡细胞焦亡，从而减轻组织损伤，提示该因子具有良好的临床转化潜力［34］。此外，髓系细胞膜联蛋白A1（annexinA1，Anxa1）在AP病程中呈动态表达，该蛋白及其衍生肽可通过调节巨噬细胞极化、抑制细胞毒性T细胞反应以及增强调节性T细胞功能，发挥多环节的抗炎效应［35⁃37］。三、药物研发进展针对AP复杂多样的病理机制，药物研发正朝着多靶点、精准化和高效能的方向加速突破。当前研究既注重挖掘天然化合物与中医药的传统资源优势，又积极借助纳米技术与基因工程手段开发新型药物递送系统，为AP治疗提供了多元化的候选策略。这些创新方案显著提升了药物的靶向性、生物利用度及整体治疗效果，为临床转化奠定了坚实基础。1.天然化合物与中医药：中药复方凭借其多靶点、多通路的协同作用优势，在AP治疗中展现出独特潜力。华西医院胰腺炎中心研发的柴芩承气汤可通过抑制P物质/神经激肽1受体、TLR4/NLRP3炎性小体及GSDMD等炎症通路，显著减轻局部及全身炎症反应［38⁃40］。最新研究还发现其能调节肝脏甘油磷脂代谢，从而针对性改善高甘油三酯血症相关性AP［41］。泽泻汤源自《金匮要略》，由泽泻和白术组成，兼具抗炎与降脂功效［42］。Zhang等［43］证实，泽泻汤可通过调节自噬⁃线粒体轴，降低NLRP3炎症小体与IL⁃1β表达水平，从而减轻高脂血症性AP中的线粒体损伤。此外，桃红四物汤可促进脂肪自噬，减少重症AP相关的心肌脂质蓄积，有效缓解AP引发的心脏并发症，充分体现了中医药“整体调理、标本兼顾”的治疗理念［44］。从天然植物中提取的化合物同样具备多种生物活性，如抗炎、抗氧化等，为AP治疗提供了丰富的候选分子。大黄素可通过抑制有害外泌体释放与巨噬细胞M1极化，同时增强线粒体氧化磷酸化、拮抗肠道菌源代谢物激活的TLR4/NF⁃κB/NLRP3信号通路，多途径协同减轻腺泡细胞损伤［45⁃47］。京尼平苷是从栀子中分离得到的天然环烯醚萜苷，在体内外均可抑制胰蛋白酶原的过早激活，稳定胱硫醚β⁃合酶并减少转硫途径的代谢重编程，从而有效改善AP症状［48］。厚朴酚作为神经肽1受体抑制剂，可恢复AP中嘌呤核苷酸循环代谢酶功能及富马酸盐水平，改善线粒体功能障碍［49］。与此同时，针对“肠⁃胰轴”的调控亦成为重要策略：灵芝酸A通过调节肠道菌群构成与屏障功能减轻全身炎症；寡甘露酸钠GV⁃971则通过促进有益菌生成SCFAs，经由微生物⁃代谢⁃免疫轴改善系统性炎症反应［50⁃51］。2.纳米递送系统：纳米技术的介入为AP药物研发带来了革命性突破。通过功能化设计，纳米递送系统可实现药物的炎症靶向递送、微环境响应释放及诊疗一体化，极大提升了治疗的精准性与有效性。例如，基于空心二氧化锰的纳米反应器Pyp@APHM，通过表面修饰Ly⁃6G抗体实现对中性粒细胞的靶向结合，在AP病灶部位的弱酸环境中降解，原位合成锰卟啉抗氧化剂，从而高效清除活性氧、抑制中性粒细胞极化，实现了“靶向富集⁃环境响应⁃精准起效”的协同作用［52］。类仿生纳米平台MDU@Mn兼具炎症靶向、微环境响应与诊疗一体化功能，在AP模型中展现出良好的治疗效果与可视化监测潜力［53］。基于天然产物的纳米抗氧化剂FA@zein⁃CS与由单宁酸、多巴胺和氧化钼组成的MTP纳米载体，均具有胰腺靶向性和显著的AP炎症抑制效应［54⁃55］。上述纳米递送系统通过优化药物靶向性、控制释放速率及整合多机制协同作用，在调节免疫微环境、减轻氧化应激与组织损伤方面展现出显著优势，为AP的精准治疗开辟了新路径。此外，实验室合成的mRNA可被设计为编码任何治疗性蛋白质，从而实现“蛋白质替代疗法”治疗AP。成纤维细胞生长因子21（fibroblastgrowthfactor21，FGF21）兼具抗炎与代谢调节特性，而低血清载脂蛋白A1（apolipoproteinA1，APOA1）水平与AP的炎症及严重程度相关。通过肝靶向性脂质纳米颗粒分别递送FGF21与APOA1的mRNA或其融合蛋白mRNA，均可减轻小鼠AP的胰腺损伤［56］。类似地，通过脂质体递送Anxa1mRNA的仿生纳米颗粒，可弥补Anxa1缺失引起的巨噬细胞胞葬功能不全，并抑制cGAS⁃STING信号通路，从而有效缓解AP［57］。尽管mRNA疗法在动物模型中展现出良好的转化潜力，但目前相关数据仍局限于临床前研究阶段，未来需重点突破递送效率优化、免疫原性控制及临床安全性验证等关键问题。综上所述，AP的诊疗模式正经历从传统支持治疗向基于分子机制的精准干预方向深刻转变。在生物诊断领域，以外泌体蛋白质组学、肠道菌群宏基因组学及代谢组学为代表的新型分子标志物，有望实现更早期的精准分层与预后评估，从而有效弥补传统评分系统在时效性与特异性上的不足。在生物治疗方面，研究焦点已深入至细胞器功能修复、代谢重编程调控、微生态平衡重建及免疫炎症调节等核心病理环节，多种靶向策略在实验模型中均展现出明确的组织保护效应。中药复方凭借其多靶点、整体调节的优势发挥治疗作用，而纳米技术赋能的新型递送系统则显著提升了药物的靶向性、响应性与治疗效率。然而，上述新技术大多仍面临技术标准化、长期安全性、个体异质性和成本效益等多重挑战。未来应着力推动高质量临床试验的开展以验证其有效性，深化对关键机制的系统性探索，并促进多学科交叉融合，从而最终实现AP诊疗水平的实质性提升。参考文献[1]TennerS,VegeSS,ShethSG,etal.Americancollegeofgastroenterologyguidelines:managementofacutepancreatitis[J].AmJGastroenterol,2024,119(3):419-437.DOI:10.14309/ajg.0000000000002645.[2]中国医师协会胰腺病学专业委员会,中华医学会放射学分会,国家消化系统疾病临床医学研究中心(上海),等.中国急性胰腺炎影像学诊断报告规范循证学指南[J].中华胰腺病杂志,2024,24(3):173-185.DOI:10.3760/115667-20240326-00062.[3]SissinghNJ,DeRijkFEM,TimmerhuisHC,etal.Gallstonesasacauseinpresumedacutealcoholicpancreatitis:observationalmulticentrestudy[J].BrJSurg,2024,111(5):znae107.DOI:10.1093/bjs/znae107.[4]SubramanianS,SoranH,SikoraKesslerA,etal.Preventionandtreatmentofhypertriglyceridemia-mediatedacutepancreatitis:anarrativereview[J].EurJInternMed,2025,106648.DOI:10.1016/j.ejim.2025.106648.[5]MederosMA,ReberHA,GirgisMD.Acutepancreatitis:areview[J].JAMA,2021,325(4):382.DOI:10.1001/jama.2020.20317.[6]CarrascalM,Areny‐BalagueróA,de‐MadariaE,etal.Inflammatorycapacityofexosomesreleasedintheearlystagesofacutepancreatitispredictstheseverityofthedisease[J].JPathol,2022,256(1):83-92.DOI:10.1002/path.5811.[7]ZhuQ,LuoJ,LiHP,etal.Robustacutepancreatitisidentificationanddiagnosis:RAPIDx[J].ACSNano,2023,17(9):8564-8574.DOI:10.1021/acsnano.3c00922.[8]ZhouQ,TaoX,GuoF,etal.TryptophanmetabolitenorharmansecretedbycultivatedLactobacillusattenuatesacutepancreatitisasanantagonistofhistonedeacetylases[J].BMCMed,2023,21(1):329.DOI:10.1186/s12916-023-02997-2.[9]Ammer-HerrmenauC,AntweilerKL,AsendorfT,etal.Gutmicrobiotapredictsseverityandrevealsnovelmetabolicsignaturesinacutepancreatitis[J].Gut,2024,73(3):485-495.DOI:10.1136/gutjnl-2023-330987.[10]Ammer-HerrmenauC,MeierR,AntweilerKL,etal.Gutmicrobiotapredictdevelopmentofpostdischargediabetesmellitusinacutepancreatitis[J].Gut,2026,75(2):316-325.DOI:10.1136/gutjnl-2025-336715.[11]KartalE,SchmidtTSB,Molina-MontesE,etal.Afaecalmicrobiotasignaturewithhighspecificityforpancreaticcancer[J].Gut,71(7):1359-1372.DOI:10.1136/gutjnl-2021-324755.[12]ZhengY,SunW,WangZ,etal.ActivationofpancreaticacinarFXRprotectsagainstpancreatitisviaosgin1-mediatedrestorationofefficientautophagy[J].Research,2022,2022:9784081.DOI:10.34133/2022/9784081.[13]GuoX,WangP,LiY,etal.Microbiomesinpancreaticcancercanbeanaccompliceoraweapon[J].CritRevOncolHematol,2024,194:104262.DOI:10.1016/j.critrevonc.2024.104262.[14]HongJ,FuY,ChenX,etal.Gutmicrobiomechangesassociatedwithchronicpancreatitisandpancreaticcancer:asystematicreviewandmeta-analysis[J].IntJSurg,2024,110(9):5781-5794.DOI:10.1097/JS9.0000000000001724.[15]WangZ,LiuY,ZhangX,etal.Constructionofanomogramforhypertriglyceridemicsevereacutepancreatitisthatincludesmetabolicindexes[J].LipidsHealthDis,2025,24(1):279.DOI:10.1186/s12944-025-02702-7.[16]ChenF,XuK,HanY,etal.Mitochondrialdysfunctioninpancreaticacinarcells:mechanismsandtherapeuticstrategiesinacutepancreatitis[J].FrontImmunol,2024,15:1503087.DOI:10.3389/fimmu.2024.1503087.[17]MukherjeeR,MareninovaOA,OdinokovaIV,etal.Mechanismofmitochondrialpermeabilitytransitionporeinductionanddamageinthepancreas:inhibitionpreventsacutepancreatitisbyprotectingproductionofATP[J].Gut,2016,65(8):1333-1346.DOI:10.1136/gutjnl-2014-308553.[18]ZhangF,XuD.ZerumboneamelioratestheinflammatoryresponseandorgandamageinsevereacutepancreatitisviatheROS/NF-κBpathway[J].BMCGastroenterol,2023,23(1):333.DOI:10.1186/s12876-023-02962-6.[19]HuZ,WangD,GongJ,etal.MSCsdeliverhypoxia‐treatedmitochondriareprogrammingacinarmetabolismtoalleviatesevereacutepancreatitisinjury[J].AdvSci(Weinh),2023,10(25):2207691.DOI:10.1002/advs.202207691.[20]HuangZ,WenL,HuangC,etal.SRA1,APOA5,andAIFM2identifiedasnovelgeneticriskfactorsinrecurrenthypertriglyceridemia-associatedacutepancreatitisbywhole-exomesequencing[J].ChinMedJ(Engl),2025,DOI:10.1097/CM9.0000000000003663.[21]ShiS,LuK,TaoY,etal.TargetingApoA5‐associatedhypertriglyceridemiatoameliorateacutepancreatitis:insightsfromaknockouthamstermodel[J].MedComm,2025,6(12):e70555.DOI:10.1002/mco2.70555.[22]ZhangL,ShiJ,DuD,etal.Ketogenesisactsasanendogenousprotectiveprogrammetorestraininflammatorymacrophageactivationduringacutepancreatitis[J].eBioMedicine,2022,78:103959.DOI:10.1016/j.ebiom.2022.103959.[23]ChenY,LiX,LuR,etal.VitaminB12protectsnecrosisofacinarcellsinpancreatictissueswithacutepancreatitis[J].MedComm,2024,5(11):e686.DOI:10.1002/mco2.686.[24]YuanJ,WeiZ,XinG,etal.VitaminB12attenuatesacutepancreatitisbysuppressingoxidativestressandimprovingmitochondriadysfunctionviaCBS/SIRT1Pathway[J].OxidMedCellLongev,2021,2021(1):7936316.DOI:10.1155/2021/7936316.[25]ZhuQ,YuanC,DongX,etal.Bileacidmetabolomicsidentifieschenodeoxycholicacidasatherapeuticagentforpancreaticnecrosis[J].CellRepMed,2023,4(12):101304.DOI:10.1016/j.xcrm.2023.101304.[26]ZouY,LiN,LiX,etal.GutmicrobiotadysbiosisexacerbatesacutepancreatitisviaEscherichiacoli-drivenneutrophilheterogeneityandNETosis[J].GutMicrobes,2026,18(1):2606480.DOI:10.1080/19490976.2025.2606480.[27]LiX,ZhengP,ZouY,etal.Dietaryinulinamelioratesobesity-inducedsevereacutepancreatitisviagut-pancreasaxis[J].GutMicrobes,2024,16(1):2436949.DOI:10.1080/19490976.2024.2436949.[28]孙琦,刘云天,余洋,等.丁酸钠调节“肠道菌群-代谢-免疫”轴治疗急性胰腺炎的机制及临床应用研究进展[J].山东医药,2025,65(11):122-126.DOI:10.3969/j.issn.1002-266X.2025.11.026.[29]LeiY,TangL,LiuS,etal.Parabacteroidesproducesacetatetoalleviateheparanase-exacerbatedacutepancreatitisthroughreducingneutrophilinfiltration[J].Microbiome,2021,9(1):115.DOI:10.1186/s40168-021-01065-2.[30]李博文,谢非,戴慰,等.肠道微生物群在急性胰腺炎中的作用研究进展[J].肝胆胰外科杂志,2025,37(08):573-577.DOI:10.11952/j.issn.1007-1954.2025.08.016.[31]LiuL,XieY,LiG,etal.Gutmicrobiota‐derivednicotinamidemononucleotidealleviatesacutepancreatitisbyactivatingpancreaticSIRT3signalling[J].BritishJPharmacology,2023,180(5):647-666.DOI:10.1111/bph.15980.[32]StojanovicB,JovanovicIP,StojanovicMD,etal.Theemergingrolesoftheadaptiveimmuneresponseinacutepancreatitis[J].Cells,2023,12(11):1495.DOI:10.3390/cells12111495.[33]ThompsonDA,TsaavaT,RishiA,etal.Galantamineamelioratesexperimentalpancreatitis[J].MolecularMedicine.2023,29(1):149.DOI:10.1186/s10020-023-00746-y.[34]MaN,YuanC,ShiJ,etal.Interleukin-37protectsagainstacinarcellpyroptosisinacutepancreatitis[J].JCIInsight,2022,7(21):e161244.DOI:10.1172/jci.insight.161244.[35]XuX,GaoW,LiL,etal.AnnexinA1protectsagainstcerebralischemia-reperfusioninjurybymodulatingmicroglia/macrophagepolarizationviaFPR2/ALX-dependentAMPK-mTORpathway[J].JNeuroinflammation,2021,18(1):119.DOI:10.1186/s12974-021-02174-3.[36]AraújoTG,MotaSTS,FerreiraHSV,etal.AnnexinA1asaregulatorofimmuneresponseincancer[J].Cells,2021,10(9):2245.DOI:10.3390/cells10092245.[37]LinS,LiangF,ChenC,etal.AnnexinA1regulatesinflammatory-immuneresponseandreducespancreaticandextra-pancreaticinjuryduringsevereacutepancreatitis[J].GenesImmun,2025,26(2):124-136.DOI:10.1038/s41435-025-00321-x.[38]HanC,DuD,WenY,etal.Chaiqinchengqidecoctionamelioratesacutepancreatitisinmiceviainhibitionofneuronactivation-mediatedacinarcellSP/NK1Rsignalingpathways[J].JEthnopharmacol,2021,274:114029.DOI:10.1016/j.jep.2021.114029.[39]CaoF,XiangJ,WangY,etal.ChaiqinchengqidecoctionalleviatesacutepancreatitisbytargetinggasderminD-mediatedpyroptosis[J].JEthnopharmacol,2024,318:116920.DOI:10.1016/j.jep.2023.116920.[40]HuangY,WenY,WangR,etal.TemporalmetabolictrajectoryanalyzedbyLC-MS/MSbasedtargetedmetabolomicsinacutepancreatitispathogenesisandChaiqinChengqidecoctiontherapy[J].Phytomedicine,2022,99:153996.DOI:10.1016/j.phymed.2022.153996.[41]WenY,LiY,LiuT,etal.Chaiqinchengqidecoctiontreatmentmitigateshypertriglyceridemia-associatedacutepancreatitisbymodulatingliver-mediatedglycerophospholipidmetabolism[J].Phytomedicine,2024,134:155968.DOI:10.1016/j.phymed.2024.155968.[42]曾蘅,李芝蓓,席晶晶,等.经典名方泽泻汤化学成分、药理作用、临床应用研究进展及质量标志物预测分析[J/OL].中华中医药学刊,2026,44(2):102-110.DOI:10.13193/j.issn.1673-7717.2026.02.019.[43]ZhangR,ZhuZ,MaY,etal.RhizomaalismatisdecoctionimprovedmitochondrialdysfunctiontoalleviateSASPbyenhancingautophagyfluxandapoptosisinhyperlipidemiaacutepancreatitis[J].Phytomedicine,2024,129:155629.DOI:10.1016/j.phymed.2024.155629.[44]YangY,HuQ,KangH,etal.Autophagy-drivenlipidregulationbyanherbaldecoctionalleviatescardiaclipotoxicityinsevereacutepancreatitis[J].Theranostics,2025,15(17):8822-8839.DOI:10.7150/thno.117243.[45]HuQ,YaoJ,WuX,etal.Emodinattenuatessevereacutepancreatitis-associatedacutelunginjurybysuppressingpancreaticexosome-mediatedalveolarmacrophageactivation[J].ActaPharmSinB,2022,12(10):3986-4003.DOI:10.1016/j.apsb.2021.10.008.[46]YaoJ,JiangY,ZhangP,etal.GeneticandpharmacologicaltargetingofHINT2promotesOXPHOStoalleviateinflammatoryresponsesandcellnecrosisinacutepancreatitis[J].PharmacolRes,2025,212:107620.DOI:10.1016/j.phrs.2025.107620.[47]ZhangY,LiuJ,ZhangX,etal.RheinalleviatesacutepancreatitisbyinhibitingTMAO-mediatedinflammatorysignalingpathwaysandreducingacinarcellinjury[J].JAdvRes,2025,S2090-1232(25)00952-X.DOI:10.1016/j.jare.2025.11.056.[48]GaoJ,LongY,LiJ,etal.Geniposide,apotentialtherapeuticalcandidateforacutepancreatitis,inhibitedtrypsinogen-activatedCBSdegradationandremodeledtranssulfurationmetabolicflux[J].RedoxBiol,2025,88:103900.DOI:10.1016/j.redox.2025.103900.[49]HanC,LiL,BaiL,etal.Neurokinin1receptorinhibitionalleviatedmitocho