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文档简介

CCSC23HNSBSXH海南省博士协会团体标准Determinationof8Mogrosides——highperformanceliquidchromatography-tandemmassspectrometry(HPLC-MS/MS)2025-12-15发布T/HNSBSXH07-2025 2规范性引用文件 3术语和定义 3.1罗汉果皂苷Mogrosides 4符号 错误!未定义书签。 6试剂和材料 6.1试剂 6.2试剂配制 26.3标准品 26.4标准溶液配制 27仪器设备 28试样制备 38.1试样制备 38.2试样提取 39测定 39.1超高效液相色谱参考条件 39.2质谱参考条件 39.3供试样品的测定 49.4定性测量 49.5定量测量 49.6结果计算 410精密度 410.1重复性 510.2再现性 5 6 7参考文献 9T/HNSBSXH07-2025本文件按照GB/T1.1-2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定起草。本文件由广西壮族自治区农业科学院提出。本文件由海南省博士协会归口。本文件起草单位:广西壮族自治区农业科学院、中国医学科学院药用植物研究所、湖南华诚生物资源股份有限公司、湖南农业大学、广西壮族自治区药用植物园、三亚中国农业科学院国家南繁研究院。本文件主要起草人:梁任繁、莫长明、罗祖良、王崇楠、马小军、黄华学、唐其、潘丽梅、苏家贤、藏艺玫、谢蕾、潘浪浪。T/HNSBSXH07-2025罗汉果为葫芦科植物罗汉果Siraitiagrosvenorii(Swingle)C.JeffreyexA.M.LuetZ.Y.Zhang的果实,药用历史有数百年,是卫生部首批公布的药食两用名贵中药材。罗汉果是我国特有的药食两用珍稀物种,分布于广西、广东等地,成熟果实具有清热润肺、止咳平喘等功效,被列入卫生部首批药食两用中药材。除直接药用外,还用于生产冲剂、胶囊等多种中成药。罗汉果皂苷是以罗汉果醇为母核经糖基化修饰后形成的一系列葫芦烷型四环三萜皂苷化合物。属于零热量高甜度天然甜味物质,可作为蔗糖的理想替代品。目前已从罗汉果中分离出90余种罗汉果皂苷,不同皂苷因糖基连接方式和位置不同,甜味差异显著。例如,罗汉果皂苷Ⅴ甜度约为蔗糖的300倍,是果实中含量最高、最主要的甜味与药用成分;其他如罗汉果皂苷Ⅳ、赛门苷Ⅰ、异罗汉果皂苷Ⅴ、11-O-罗汉果皂苷Ⅴ和罗汉果皂苷Ⅵ等也是重要的甜味物质。罗汉果果实在不同生长阶段罗汉果皂苷的组成和含量存在差异。前期研究表明,未成熟果实中含有苦味的罗汉果皂苷Ⅱe及罗汉果皂苷Ⅲ等低糖苷。成熟果实中罗汉果皂苷Ⅱe及罗汉果皂苷Ⅲ转化为高糖苷,主要含有罗汉果皂苷V、异罗汉果皂苷Ⅴ、11-O-罗汉果皂苷Ⅴ和赛门苷Ⅰ等甜味成分,而判断果实的成熟度主要依据授粉时间及经验,采收果实质量缺乏统一控制标准。不同授粉时间和气候区域果实成熟时间差异大,还有秋季降温会导致果实无法成熟,统一采收果实导致果实质量参差不齐,这严重影响罗汉果及其产品的药效、甜度及口感。当前,高效液相色谱法和液相色谱-串联质谱法是罗汉果皂苷分析的主要方法,但由于罗汉果成分复杂多样,且罗汉果皂苷类成分紫外吸收弱,导致使用高效液相色谱法测定受到其他强紫外吸收化合物的严重干扰,且对色谱分离要求较高,检测方法灵敏度低。而液相色谱-串联质谱法具有溶剂消耗少、灵敏度高、选择性好等优点,是测定罗汉果中多种罗汉果皂苷成分的有效工具。且编制工作组前期建立了一种液相色谱-串联质谱法同时测定罗汉果及其产品中8种甜苷的方法,并对其进行了验证,可以在此基础上优化完善形成多种罗汉果皂苷成分同时检测的技术标准,将有助于完善罗汉果质量控制体系,推动产业高质量发展。1T/HNSBSXH07-2025罗汉果中8种罗汉果皂苷的含量测定液相色谱-串联质谱法本文件规定了罗汉果中8种罗汉果皂苷含量的液相色谱-串联质谱测定方法。本文件适用于罗汉果中罗汉果皂苷Ⅱe、罗汉果皂苷Ⅲ、罗汉果皂苷Ⅳ、罗汉果皂苷Ⅳa、赛门苷Ⅰ、罗汉果皂苷Ⅴ、异罗汉果皂苷Ⅴ和11-O-罗汉果皂苷Ⅴ等8种罗汉果皂苷含量的测定,其他罗汉果产品可参考执行。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法3术语和定义下列术语和定义适用于本文件。3.1罗汉果皂苷Mogrosides罗汉果皂苷是以罗汉果醇为母核经糖基化修饰后形成的一系列葫芦烷型四环三萜皂苷化合物,包括罗汉果皂苷Ⅱe、罗汉果皂苷Ⅲ、罗汉果皂苷Ⅳ、罗汉果皂苷Ⅳa、赛门苷Ⅰ、罗汉果皂苷Ⅴ、异罗汉果皂苷Ⅴ和11-O-罗汉果皂苷Ⅴ等。3.2液相色谱-串联质谱法HPLC-MS/MS是一种将液相色谱的高效分离能力与串联质谱的高灵敏度、高选择性检测能力相结合的分析技术。4原理罗汉果样品中的罗汉果皂苷类化合物用甲醇水溶液超声提取,采用高效液相色谱-串联质谱仪测定,外标法定量。5试剂和材料除非另有规定,所有试剂均为分析纯。5.1试剂5.1.1水:GB/T6682,一级。5.1.2甲醇(CH4O):色谱纯。2T/HNSBSXH07-20255.1.4甲酸(CH2O2):色谱纯。5.2试剂配制5.2.180%甲醇溶液:取80mL甲醇,加水定容至100mL,混匀。5.3标准品罗汉果皂苷类化合物标准品:相关信息见表1,纯度不低于98%。表1罗汉果皂苷类化合物标准品基本信息表序号中文名称英文名称分子量CAS号1罗汉果皂苷IIeMogrosideIIe801.0188901-38-62罗汉果皂苷IIIMogrosideIII963.15130567-83-83赛门苷ISiamenosideI1125.30126105-12-24罗汉果皂苷IVMogrosideIV1125.3089590-95-45罗汉果皂苷IVaMogrosideIVa1125.3088901-41-16罗汉果皂苷VMogrosideV1287.4388901-36-4711-O-罗汉果皂苷V11-oxo-mogrosideV1285.42126105-11-18异罗汉果皂苷VIsomogrosideV1287.431126032-65-25.4标准溶液配制5.4.1罗汉果皂苷类化合物标准储备:分别准确称取8种(表1)待测物质的标准品各10.0mg,加入80%甲醇溶液定容至100mL,制成0.1mg/mL的单标储备液。避光2~4℃下保存,备用。5.4.2罗汉果皂苷类化合物混合标准溶液:用80%甲醇溶液对0.1mg/mL的单标储备液稀释配成10、5、2、1、0.5、0.2μg/mL的系列混合标准溶液用于绘制标准曲线。混合标准溶液应现用现配。6仪器设备6.1超高效液相色谱-串联质谱仪:配有电喷雾离子源(ESI)。6.2电热鼓风干燥箱:温度50℃~330℃,功率3.1kW。6.3超声波清洗器:超声输人功率300W。6.4离心机:转速不低于7500r/min。6.5不锈钢粉碎机:细度50目~300目,功率1.4kW。6.6天平:感量0.001g和0.0001g。3T/HNSBSXH07-20257试样制备7.1试样制备将罗汉果样品混合均匀,分出0.5kg作为试样,用粉碎机粉碎并通过孔径20目筛。混匀密封,并做标记。7.2试样提取称取罗汉果粉末0.5g(精确至0.0001g),置于50mL离心管中,加人25mL80%甲醇溶液,室温下超声提取30min。于7500r/min离心5min,将上清液转移至100mL容量瓶中。沉淀物再用80%甲醇溶液重复提取一次,在相同条件下离心5min,合并上清液,80%甲醇溶液定容至100mL。上样前,采用0.22μm有机相滤膜过滤。8测定8.1超高效液相色谱参考条件8.1.1色谱柱:AgilentPoroshell120SBC18(100mm×2.1mm,2.7μm)或性能相当者。8.1.2流动相A:0.1%甲酸水溶液,取0.1mL甲酸(5.1.3)加水(5.1.1)定容至100mL,混匀。8.1.3流动相B:乙腈。8.1.4柱温:室温。8.1.5流速:0.2mL/min。8.1.6进样量:2μL。8.1.7流动相:梯度洗脱程序见表2。表2流动相及梯度洗脱程序步骤运行时间/min流动相水相/%流动相乙腈/%00.08013.025.036040480522.0808.2质谱参考条件8.2.1扫描方式:负离子扫描:8.2.2离子化电压:4500V。8.2.3离子源温度:550℃。8.2.4气帘气:氮气(纯度为97%以上),压力为20psi。4T/HNSBSXH07-20258.2.5雾化气:氮气(纯度为97%以上),气压为55psi。8.2.6辅助气:氮气(纯度为97%以上),气压为45psi。8.2.7检测方式:多反应监测(MRM)。8.2.8罗汉果皂苷类化合物保留时间和监测离子对信息见附录A。8.3供试样品的测定在仪器的最佳条件下,分别取罗汉果皂苷类化合物混合标准溶液与罗汉果样品上机测定。混合标准溶液中8种罗汉果皂苷总离子色谱图和各组分离子色谱图见附录B。8.4定性测量在相同试验条件下测定试样和混合标准溶液,若样品溶液中检出色谱峰的保留时间与基质标准溶液中目标物色谱峰的保留时间一致(变化范围在±2.5%),且样品溶液的质谱离子对相对丰度与浓度相当基质标准溶液的质谱离子对相对丰度相比较,相对离子丰度的相对偏差不超过表3规定的范围,则可判定样品中存在该组分。混合标准溶液中各罗汉果皂苷离子色谱图见附录B。表3定性测定时相对离子丰度的最大允许误差相对离子丰度,%>50>20~50>10~20允许的相对偏差,%8.5定量测量以不同浓度混合标准溶液的浓度为横坐标,色谱峰面积(响应值)为纵坐标,绘制标准曲线,标准曲线的相关系数应不低于0.99。试样溶液与标准溶液中待测物的响应值均应在仪器检测的线性范围内。如超出线性范围,应重新试验或将试样溶液和基质匹配混合标准系列溶液作相应稀释后重新测定。单点校准定量时,试样溶液中待测物的浓度与溶剂混合标准溶液的浓度相差不超过30%。8.6结果计算用液相色谱-质谱数据处理软件或者按照公式计算试样中检测目标物量,按公式(1)计式中:W—试样中罗汉果皂苷类化合物的含量的数值,单位为毫克每千克(mg/kg);A—样品中罗汉果皂苷类化合物的峰面积;ρi—标准溶液浓度的数值,单位为毫克每升(mg/L);V—定容体积的数值,单位为毫升(mL);f—稀释倍数;Ai—标样中罗汉果皂苷类化合物的峰面积;m—最终溶液所代表的试样质量的数值,单位为克(g)。注:计算结果应扣除空白值,测定结果用平行测定的算术平均值表示,保留3位有效数字。9精密度5T/HNSBSXH07-20259.1重复性在重复性条件下获得的2次独立的测定结果的绝对差值不大于这2个测定值的算术平均值的15%。9.2再现性在再现性条件下获得的2次独立的测试结果的绝对差值不大于2个测定值的算术平均值6T/HNSBSXH07-2025(资料性附录)罗汉果皂苷类化合物保留时间、监测离子对信息罗汉果皂苷类化合物保留时间和监测离子对信息见表A.1.表A.1罗汉果皂苷类化合物保留时间和监测离子对信息中文名称保留时间min前体离子m/z碎片离子m/z去簇电压碰撞电压罗汉果皂苷IIe13.86799.5-170-65罗汉果皂苷III12.04961.6-170-70赛门苷I10.171123.6-220-75罗汉果皂苷IV11.221123.6-220-75罗汉果皂苷IVa10.641123.6-220-75罗汉果皂苷V8.431285.8-220-9011-O-罗汉果皂苷V6.321283.7-220-85异罗汉果皂苷V9.511285.8-220-90注:q为定量离子。7T/HNSBSXH07-2025(规范性附录)8种罗汉果皂苷类化合物总离子流图和各组分离子色谱图混合标准溶液中8种罗汉果皂苷类化合物总离子色谱图见图B.1,混合标准溶液中8种罗汉果皂苷类化合物各组分离子色谱图见图B.2。B.1混合标准溶液中8种罗汉果皂苷类化合物总离子色谱图图B.1混合标准溶液中8种罗汉果皂苷类化合物总离子色谱图8T/HNSBSXH07-2025B.2混合标准溶液中8种罗汉果皂苷类化合物各组分离子色谱图图B.2混合标准溶液中8种罗汉果皂苷类化合物提取离子色谱图9T/HNSBSXH07-2025参考文献[1]国家药典委员会.中华人民共和国药典(第一部)[M].北京:中国医药科技出版社,2015,212.[2]马小军,莫长明.药用甜料植物罗汉果遗传资源的挖掘与创新[M].人民卫生出版社,2024.[3]LeeC.IntensesweetenerfromLoHanKuo(Momordicagrosvenori)[J].Experientia,1975,31(5):533-534.[4]KasaiR,MatsumotoK,NieRL,etal.GlycosidesfromChinesemedicinalplant,Hemsleyapanacis-scandens,andstructure-tasterelationshipofcucurbitanglycoside[J].Chemical&pharmaceuticalbulletin,

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