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文档简介
1、.,1,1.1 细胞的观察和测量,细胞的实际长度,=目镜测微尺格数每小格的长度,低倍镜高倍镜,光线,细胞数目,变暗,变少,细胞,变大,.,2,碘液,蓝紫色,班氏试剂 加热至沸腾,砖红色沉淀,双缩脲试剂(5%NaOH+1%CuSO4),紫色,苏丹染液,橘红色,2.1 食物中主要营养成分的鉴定,.,3,一、材料选择,1、新鲜,5、紫色外表皮,4、洋葱鳞叶表皮,2、植物细胞,3.1 探究植物细胞外界溶液浓度与质壁分离的关系,紫色洋葱鳞叶外表皮,活细胞,3、成熟,有大液泡,有细胞壁,一层细胞,观察质壁分离,四、质壁分离复原,三、质壁分离,30%蔗糖溶液引流,五、测量并计算B/A(%),A:细胞的长度,
2、B:原生质层长度,清水引流,.,4,一、制作颤藻和水绵临时装片,3.2 颤藻和水绵细胞的比较观察,二、碘液染色,细胞核,结论:颤藻细胞核不成形,是原核生物 水绵细胞核成形,是真核生物。,.,5,4.1 (一)探究酶的高效性,结论1:与无机催化剂相比,酶具有高效性,结论2:酶的活性易受温度影响,高温使酶失去活性,.,6,影响酶活性的因素,4.1 (二)探究影响酶活性的因素,温度、pH,唾液淀粉酶1ml,唾液淀粉酶1ml,唾液淀粉酶1ml,碘液1滴,碘液1滴,碘液1滴,碘液1滴,清水1ml,无反应,蓝紫色,蓝紫色,蓝紫色,.,7,一、色素的提取,4.3 叶绿体中色素的提取和分离,(一)材料,(色素
3、含量较高),(三)提取液,无水乙醇,(二)原理,色素不溶于水,溶于有机溶剂,(四)步骤,剪碎研磨过滤,2、加入少量碳酸钙,1、加入少量石英砂,帮助研磨,防止叶绿素被破坏,(分步加入,减少色素挥发),新鲜的绿色叶片,.,8,二、色素的分离,(一)原理,纸层析法,色素随层析液在滤纸上扩散的速度不同,在扩散过程中被分离出来,2、滤液细线要均匀、细、直,(三)滤液细线不能没及层析液,以免色素溶解在层析液中,无法扩散,避免色素在扩散时重叠,影响色素带的观察,(二)用毛细管画滤液细线,1、重复35次,保证色素含量,.,9,取材,制备滤纸条 (对称剪去两侧),5g除去主叶脉的叶片,剪碎,.,10,5.1 观
4、察牛蛙的脊髓反射现象,一、脊蛙的制备,去除蛙的上颌,去除脑的影响,证明此反射的神经中枢在脊髓,(一)曲腿反射和搔扒反射,证明反射弧完整,二、观察脊髓反射现象,(二)环割脚趾皮肤,反射弧不完整,证明脚趾皮肤中存在感受器,(三)破坏脊髓,反射弧不完整,证明脊髓中存在神经中枢,无曲腿反射,无曲腿反射和搔扒反射,.,11,6.1 DNA分子模型的搭建,一、搭4种脱氧核苷酸,二、搭建DNA分子的双螺旋结构,.,12,7.1 植物细胞有丝分裂的观察,1、解离,20%盐酸,8-10min,清水30s,3、染色,4、压片,(白色部分约2-3mm),(醋酸洋红或0.2%龙胆紫染液 1滴,1-2min后吸去),2
5、、漂洗,(使根尖细胞酥软,易于分散),(洗去解离液,便于染色),(使根尖成为一层均匀的细胞层),.,13,7.2 植物细胞分化的观察,切取1-2cm根尖,0.2龙胆紫染液或醋酸洋红1滴,1-2min后吸去,2层吸水纸,不研转,根冠,分生区,成熟区,伸长区,根毛,导管,.,14,摇动容器,记录字母组合,模拟生殖过程中,雌雄配子随机结合,生殖器官,8.1 性状分离比的模拟实验,保证A和a比例1:1,.,15,8.2 果蝇唾液腺细胞染色体观察,二、巨大染色体上的横纹数目和位置相对恒定,为基因在染色体上的定位提供便于观察的指标,一、巨大染色体的形成,DNA多次复制,细胞不分裂,.,16,一、选择样方,二、记录统计,统计样方内植物物种数和每一种植物的个体数,三、计算辛普森多样性指数,四、比较分析两个样方的辛普森多样性指数,随机取样,在样方的四
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