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文档简介
1、溶菌酶的制备、蛋白质的测定及该酶比活力的测定,Lysozyme preparation, protein determination and the determination of enzyme specific activity,生物制药工艺学期末考核讨论:,报告人:(0834110) 08届食品学院制药1班 2011.4.29,溶菌酶的来源:,1922年的一天,正在感冒的英国细菌学家Alexander Fleming发现,把一些鼻粘液加入细菌的培养基后会引起细胞的溶解。而这种存在于鼻粘液中的能杀死细菌的重要物质被认为是一种酶, Fleming命名其为溶菌酶( Lysozyme )。 那时
2、,溶菌酶不能证明有临床价值。但是在酶机制的研究学习方面,溶菌酶扮演了一个很重要的角色。,溶菌酶的结构,在1965年,David Phillips和他在牛津的同事以0.2nm分辨率的X射线晶体(X-ray crystallography)结构分析法阐明了溶菌酶的三维结构(tertiary structure)。,溶菌酶的作用机制:,溶菌酶是一种N-乙酰胞壁质聚糖水解酶,该酶可以催化水解细菌细胞壁N-乙酰胞壁酸和N-乙酰氨基葡萄糖之间的-1,4糖苷键,使细胞壁不溶性多糖分解成可溶性糖肽,导致细胞壁破裂,使内容物溢出而是细菌溶解,阻碍致病细菌的活性繁殖,并杀死细菌。,溶菌酶的制备,实验原理 实验材料
3、、试剂及仪器 实验步骤 实验看法,溶菌酶的制备,本实验主要是以鸡蛋清作为实验材料,采用D152型树脂柱层析法除去杂蛋白及等电点法提取溶菌酶的粗品,溶菌酶的制备:,鸡蛋清中约含有0.3的溶菌酶,分子量为14,000,等电点为11.1,最适溶菌温度为50,最适pH值为7。鸡蛋清溶菌酶化学性质非常稳定,当pH值在1.211.3范围内剧烈变化时,其结构仍稳定不变,遇热时该酶也很稳定,在pH47的范围内,100处理lmin,仍保持原酶活性。但在碱性环境中,该酶对热稳定性较差。其一级结构由129个氨基酸残基组成的一条多肽链,其稳定性主要与多级结构中的4对二硫键、氢键及疏水键相互作用。 人溶菌酶的溶菌活性比
4、鸡蛋清溶菌酶高3倍。,溶菌酶的制备,实验主要仪器、材料及试剂: (一)主要仪器: 高速冷冻离心机、恒流泵、部分收集器 (二)材料及仪器: D152大孔弱酸性阳离子交换树脂,新鲜鸡蛋,0.1mol/L磷酸盐缓冲剂,pH7.0 , 氯化钠,硫酸铵,0.5mol/L NaOH, 0.5mol/L HCl,层析柱(2.6cm*30cm), 无水乙醇 , 聚乙二醇,溶菌酶的制备,实验步骤: 蛋清样品的制备: 取出蛋清,加入1.5倍体积的0.1mol/L磷酸盐缓冲剂,搅拌均匀,将pH值调至8左右,然后用八层纱布过滤,去滤液,量取体积并记录。,溶菌酶的制备,实验步骤: 阳离子交换层析的制备: 1、D152树
5、脂的处理:将D152树脂先将蒸馏水洗去杂物,滤除,用1mol/L NaOH搅拌浸泡并搅拌48h,抽滤干NaOH,用蒸馏水洗近pH7.5左右,抽滤干,再用1mol/L HCl按上述方法处理树脂,知道全部转变为氢型,抽滤干HCl,用2mol/ L NaOH处理树脂,是指转变为钠型,pH值不低于6.5。吸干溶液,加0.02mol/L的磷酸盐缓冲剂(pH6.5)平衡树脂。 2、装柱:取直径为2.6cm,长度为30cm的层析柱,自顶部注入经处理过的上述树脂悬浮液,关闭层析柱出口,带树脂沉降后,放过量的溶液,再加上一些树脂,至树脂沉积至1520cm高度即可。与柱子顶部继续加入0.02mol/L的磷酸盐缓冲
6、剂(pH6.5)平衡树脂。最终是流出液pH为6.5为止,关闭柱子出口,保持页面高出树脂表面1cm。,溶菌酶的制备,装柱吸附:将上述蛋清液仔细加入到树脂顶部,打开出口使其缓慢流如注内,流速为1ml/min。 去杂蛋白:取出树脂,用柱平衡液洗去树脂上可能有的杂蛋白。在手机洗脱液的过程中,逐管用紫外分光光度计检测杂蛋白的洗脱情况,当基线开始走平后,改用含1.0mol/L NaCl的pH值6.5、浓度为0.02mol/L 磷酸钠缓冲液洗脱收集洗脱液! 聚乙二醇浓缩:将上诉洗脱液合并装入透析袋内,至容器外,外面附以聚乙二醇,容器加盖。酶液中的水分很快就透析到膜外,被聚乙二醇所吸收。然后所得浓缩液之后的透
7、析袋用蒸馏水洗去透析袋膜外的聚乙二醇!小心取的浓缩版的溶菌酶溶液,实验看法:,与教科书P488页制备方法不同的是:教材所选用的吸附方法使用磁力搅拌器搅拌蛋清液和树脂,个人觉得此方法可以用于样品较小的情况下,大约在300毫升以下!,溶菌酶活力、蛋白浓度的测定,实验原理 实验仪器、材料及试剂 试剂配制 实验步骤,溶菌酶活力、蛋白浓度的测定,实验仪器、材料及试剂: (一)仪器:721分光光度计 (二) 材料及试剂: 溶菌酶,磷酸氢二钠,磷酸二氢钠,溶壁微球菌干粉,氯化钠,考马斯亮蓝G-250, 95%乙醇,85%磷酸,牛血清蛋白(BSA),溶菌酶蛋白浓度的测定,实验原理: 棕红色的染料考马斯亮蓝G-
8、250与蛋白质结合后,形成蓝色的复合物最大吸光度由465nm变为595nm。在一定蛋白浓度范围内,蛋白和染料的结合符合比尔定律。通过测定595nm处的光吸收值的增加量,可对蛋白质浓度进行定量测定。,溶菌酶活力、蛋白浓度的测定,试剂的配制: 1、测活缓冲液:含30mmol/L NaCl的0.1mol/L磷酸盐缓冲液,pH6.2。 2、底物浓度:40mg溶壁微球菌干粉,荣誉100mL测活缓冲液中。 3、考马斯亮蓝G-250试剂;考马斯亮蓝G-250 100mL 95%乙醇中,加入100mL 85%盐酸,用蒸馏水稀释至1000mL,滤纸过滤。 4、标准蛋白质溶液,用含有0.1mol/L磷酸盐缓冲液,
9、pH7.0(缓冲液A)配制1mg/mL牛血清蛋白溶液。 5、溶菌酶液配制:取上述实验中所获得的溶菌酶粗品液,荣誉100mL的测活缓冲液。,溶菌酶蛋白浓度的测定,实验步骤 标准曲线的测定: 取14支试管按下表,分两组进行平行操作:,溶菌酶蛋白浓度的测定,按上表的数据,以A595为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标,绘制标准曲线。 测定未知样品的蛋白质浓度:测定方法同上。去合适的未知样品提及,使其测定值在标准曲线的线性范围内。根据所测定的A595值,在标准曲线上查处相当于标准蛋白的Laing,从而计算出未知样品的蛋白质浓度(mg/mL),溶菌酶蛋白浓度的测定,实验备注: 若样品浓度超出了标准曲线的线性范围,则适当加以稀释,稀释至标准曲线的线性范围之内的浓度!,溶菌酶活力的测定,实验原理: 本实验以溶壁微球菌为底物,通过测定细菌悬液浊度的变化(OD600)来测定溶菌酶的活性,溶菌酶活力的测定,酶活力的测定: 在室温下,取2个试管,分别在1号管中加入3.0mL测活缓冲液,2.5mL底物浓度;2号管中加入2.5mL测活缓冲液,2.5mL酶液。以2号管为对照,根据不同反应时间内在721分光光度计上每隔30s测定1号650nm处的吸光值。按下列表格记录是按结果:,溶菌酶活力的测定,实验数据处理 酶活力单位(
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