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    富营养化水体中菹草光合荧光特性研究.doc

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    富营养化水体中菹草光合荧光特性研究.doc

    -专业文档,值得下载!-专业文档,值得珍藏!-富营养化水体中菹草光合荧光特性研究马婷,王国祥*,李强,潘国权,王文林南京师范大学地理科学学院/江苏省环境演变与生态建设重点实验室,江苏南京210046摘要:用NH4Cl、NaNO3、KH2PO4配置不同氮磷浓度的试验水,将菹草(Potamogetoncripus)分别移栽于上述水体中,观测菹草在各水体中的生长发育状况,并用水下饱和脉冲叶绿素荧光仪(Diving-PAM)测定菹草光合作用PSII有效荧光产量(Y)、光化学荧光淬灭系数(qP)、非光化学荧光淬灭系数(qN)等指标。结果表明:在TN<2mg·L-1,TP<0.4mg·L-1,Chla<118mg·m-3试验水体中,菹草长势良好,株高增加了51.2%、46.6%,叶片数增大了57.7%、58.1%;在营养盐质量浓度很高(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1)、藻类生物量极高(Chla421mg·m-3)的水体中,菹草的生长受到抑制,并出现死亡。Y、qP、qN的值说明了在TN<2mg·L-1,TP<0.4mg·L-1,Chla<118mg·m-3水体中,菹草叶片吸收的光能更多的参与光化学反应,光合作用增大。高营养盐质量浓度(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1,Chla421mg·m-3)水体中的菹草叶片将大部分光能用于热耗散,光合作用降低。快速光响应曲线同时也说明各水体中,菹草的最小饱和光强(Ek)都为176mol·m-2s-1,但高营养盐质量浓度(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1,Chla421mg·m-3)水体中的菹草叶片的最大光电子传递速率(rETR-max)明显低于其他水体,随着水体中营养盐浓度的升高,菹草耐光抑制能力显著降低。关键词:菹草;富营养化;荧光中图分类号:Q948.1文献标识码:A文章编号:1672-2175(2007)03-0758-04水生高等植物是水生生态系统中的重要的组成部分1,目前我国的湖泊富营养化程度日趋严重,通过引种水生高等植物,重建水生植被来净化水质,是湖泊生态修复的重要手段。菹草(Potamogetoncrispus)对富营养化的水体有较强的适应能力,在污染严重的水体中亦能茂密生长,具有净化水体的作用2-4,是水体修复的常用物种之一5。但是,在水体混浊、透明度低、营养盐浓度高的富营养化水体中引种菹草往往由于环境条件不适宜而失败,水体中高浓度营养盐会使得浮游藻类的生长速度加快,导致水下光强变小,从而影响菹草叶片的光合作用能力,危害其生长。有人6将菹草种植在不同COD值的水培液中,发现水体过度的污染会导致植物的死亡,但是未给出营养盐的浓度范围。饱和脉冲调制(PAM)荧光动力学技术能对植物光合作用进行快速、无损伤的研究7,近年来水下饱和脉冲荧光仪(Diving-PAM)的出现使原位、无损伤测定沉水植物的光合作用成为可能8-9。本文将菹草的成株种植于不同N、P营养盐浓度的富营养化水体中,采用统计方法和水下饱和脉冲叶绿素荧光仪测定菹草叶片的叶绿素荧光参数,研究富营养化水体对植株光合系统(PSII)光合荧光特性的影响,为在不同程度的富营养化水体中恢复、重建菹草群落提供一定的实验依据。1试验设计与材料1.1植物材料在南京师范大学仙林校区月亮湾湖区内采集当年生大小相近的菹草石芽,洗净之后放入清水中避光保存,待石芽萌发后,选择株高在25cm左右的植株种植于盛土的塑料框内(42cm×24cm×14cm),将其栽种至不同程度的富营养化水体中。1.2试验设计在高70cm,半径50cm,容积150L的塑料圆桶中加入140L的自来水,分别添加不同量的NH4Cl、NaNO3、KH2PO4,将水体中的NH4+-N、TN、TP的浓度调整到设计的质量浓度(表1),共设计3个不同的试验组。待藻类生长至一定浓度后(Chla的浓度分别为73.39、118.51、421.34mg·m-3),进行菹草的移栽。每组设3个重复。试验于2006年3月15日开始,4月11日时T3中菹草死亡,试验结束。1.3菹草生物形态学指标测定每7d统计每盆菹草的株高和叶数,计算每个处理的平均株高和平均叶数,并作差异显著性分析。1.4菹草叶片荧光参数的测定早晨7:00开始用水下饱和脉冲荧光仪Diving-PAM(德国WALZ公司)和数据采集软件wincontrol表1各试验水体中N、P营养盐的质量浓度Table1ThequalityconcentrationofNandPnutritionineachexperimentwatermg·L-1处理NH4+-NTNTPT10.51.00.2T21.52.00.4T37.08.00.8马婷等:富营养化水体中菹草光合荧光特性研究759(WalzGmbH,Effeltrich,Germany)进行测定。每周测定一次。Diving-PAM配备了一个发射峰为650nm的红外二极管,所发射的红外光为测量光;一个内置的卤素灯提供光化光照明和饱和脉冲光。光强使用微型的Li-Cor质子探头测定(WalzGmbH,Effeltrich,Germany)。每一水体随机选择3株植株顶部伸展叶片,清除叶片上的附着物,测定荧光参数值,取平均值作比较。连体叶片经暗适应5min后,打开叶夹,开启检测光(0.15mol·m-2s-1)得到F0,再由饱和脉冲光(4000mol·m-2s-1,0.8s)测得Fm。然后开启光强度为30mol·m-2·s-1的光化光照射10s,再经饱和脉冲光测得Fm、Ft,按下式计算:有效荧光产量Y(Fv/Fm)=(FmFt)/Fm10;光化学淬灭系数qP=(FmFt)/(FmF0)9;非光化学淬灭系数qN=(FmFm)/(FmF0)9;相对光合电子传递速率rETR=Y×PAR×0.84×0.511。2结果与分析2.1不同水体中菹草株高和叶片数的变化如图1所示,T1、T2水体中植株的株高、叶片数逐渐增大,长势良好,试验结束时比起始时分别增加了51.2%、46.6%和57.7%、58.1%。而T3水体中植株的株高和叶片数一直在下降,至试验结束时植株已经死亡。经方差分析,T3与T1、T2的叶片数差异显著(p<0.05)。2.2不同水体中菹草荧光参数值的变化PSII的光化学效率是表明光化学反应状况的一个重要参数。有效荧光产量(Y)表示在照光下PSII的实际光化学效率,反映吸收的光子供给PSII反应中心的效率10。如图2-A所示,T1、T2水体中菹草的Y值在逐渐升高,试验结束时比起始时分别增加了14.7%和13.4%,而T3中菹草的Y值在显著下降,第8天时已下降了53.7%,到27d时,菹草已经死亡无法测量。光化学淬灭系数(qP)是PSII天线色素吸收的光能用于光化学电子传递的份额,较低的qP反映PSII中开放的反应中心比例和参与CO2固定的电子减少12-13。如图2-B所示,T1水体中菹草的qP值变化不大,基本维持在0.8左右。T2中菹草的qP值先下降再上升,在第14d时达到最低值,为0.755。T3中菹草的qP值显著下降,在开始的7d内下降了31.1%。rETR是反映实际光强下的表观电子传递效率10。rETR用于度量光化学反应导致碳固定的电子传递情况,其值由光强、叶片吸收光系数和有效荧光产量计算得到14。如图2-C所示,T1、T2水体中菹草的rETR值变化趋势相似,试验结束时分别增加了14.7%、16.4%。而T3中菹草在第7d时已下降了61.5%。qN反映的是天线色素吸收的光能不能用于电子传递而以热的形式耗散掉的光能部分,而热耗散是植物保护PSII的重要机制15。如图2-D所示,T1、T2水体中菹草的qN值先升再降,试验结束时分别比起始时降低了6.9%、14.8%。T3中qN值显著上升,第14d时是初始时的2.41倍。2.3不同水体中菹草快速光响应曲线的差异在第14d测定了各水体中菹草的快速光响应曲线。如图3所示,在T1、T2和T3水体中,菹草的最小饱和光强(Ek)都为176mol·m-2s-1;但是各水体中植株的最大光电子传递速率(rETR-max)出现显著差异。在T1、T2和T3水体中,叶片rETR-max分别为3.84mol·m-2s-1、4.67mol·m-2s-1和2.88mol·m-2s-1,达到最大值后,T1、T2水体中的rETR值随光照强度的增加呈逐渐下降趋势,而T3中下降明显。表明了随着水体富营养化程度的升高,菹图1不同水体中菹草的生长状况Fig.1TheconditionofgrowthofPotamogetoncrispusindifferentexperimentalwaterA010203040T1T2T3试验水体株高/cm0d7d14d27dB510152025T1T2T3试验水体叶数/片0d7d14d27d760生态环境第16卷第3期(2007年5月)草耐光抑制能力显著降低,植株的光合作用能力呈下降趋势。3讨论与结论在营养物质充足时,浮游植物迅速增长,叶绿素值超过100mg·m-3时,光照随水深急剧下降,这时对沉水植物来说,光照成为主要的限制因子16。光照对沉水植物的影响直接反映在其对光合作用的影响上,光合作用是沉水植物最重要的代谢活动。不同程度富营养化水体对菹草植株的影响,也体现在其对光合作用的影响上,可以通过有效荧光产量(Y)、光化学荧光淬灭系数(qP)、非光化学淬灭系数(qN)和相对光合电子传递速率(rETR)来反映,它们是评估光合结构II(PSII)状态是否良好的指标。分析各富营养化水体中菹草的荧光参数变化,可以比较不同程度的富营养化水体对菹草PSII的影响,有利于更进一步的认识富营养化水体对菹草生长发育的影响。在30mol·m-2s-1光强的照射下,TN<2mg·L-1,TP<0.4mg·L-1,Chla<118mg·m-3的水体中菹草的荧光参数值的变化趋势很相近,Y、qP、rETR、qN的变化幅度不大,但在TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1,Chla421mg·m-3的水体中,Y、qP、rETR显著下降(P<0.01),qN显著升高(P<0.01)。本试验说明了不同程度的富营养化水体对菹草的生长状况及光合作用能力有很大的影响,在相对程度较轻的富营养化水体中(TN<2mg·L-1,TP<0.4mg·L-1,Chla<118mg·m-3)菹草将大部分的光能用于进行光合作用,少部分以热耗散的形式消耗掉,因此能够健康的生长、繁殖;而在重富营养化水体中(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1,Chla421mg·m-3),藻类等悬浮物削弱了到达叶片表面的光强,影响了光合作用,大部分的光能以热耗散的形式消耗掉,抑制了其正常的生理代谢作用,使得菹草难以健康的生长,过度的污染导致菹草死亡。参考文献:1SCULTHORPECD.TheBiologyofAquaticVascularPlantsEdwardArnold.London.1967,pp:610-631.2金送笛,李永函,倪彩虹,等.菹草对水中氮、磷的吸收及若干影响因素J.生态学报,1994,14(2):168-173.JINSongdi,LIYonghan,NICaihong,etal.UptakebyPotamageton图2不同水体中菹草荧光参数值的变化Fig.2ThevaluesoffluorescenceparameterofPotamogetoncrispusinallexperimentalwaterwaterbodies图3相对电子传递速率随光强的变化Fig.3relativeelectrontransportrateasafunctionofPAR0123450100200300400500600700光强/molm-2s-1相对电子传递速率/molm-2s-1T1T2T3A0.50.60.70d7d14d27d天数/d有效荧光产量0.20.40.6T1T2T3B0.70.80.90d7d14d27d天数/d光化学淬灭系数0.50.60.70.80.9T1T2T3D0.10.30.50d7d14d27d天数/d非光化学淬灭系数T1T2T3C7890d7d14d27d天数/d相对光合电子传递速率/molm-2s-12468T1T2T3马婷等:富营养化水体中菹草光合荧光特性研究761crispusofnitrogenandphosphorusfromwaterandsomeaffectingfactorsJ.ActaEcologicalSinica,1994,14(2):168-173.3宋福,陈艳卿,乔建荣,等.常见沉水植物对草海水体(含底泥)总氮去除速率的研究J.环境科学研究,1997,10(4):47-50.SONGFu,CHENYanqin,QIAOJinrong,etal.StudyontheremovalratetototalnitrogeninCaohaiLake(includingsediments)bycommonsubmergedmacrophyteJ.ResearchofEnvironmentalScience,1997,10(4):47-50.4高吉喜,叶春,杜鹃等.水生植物对面源污水净化效率研究J.中国环境科学,1997,17(3):247-251.GAOJixi,YEChun,DUJuan.Studyofremovingabilityofmacro-phytestoN、Pinrun-offJ.ChinaEnvironmentalScinece,1997,17(3):247-251.5杨富亿.池塘移栽菹草养鱼技术J.水产科学,1995,14(4):27-30.YANGFuyi.StudyontransplantingPotamagetoncrispusandbreed-ingfishinpoolJ.MarinelivesScience,1995,14(4):27-30.6王斌,周莉苹,李伟.不同水质条件下菹草的净化作用及其生理反应初步研究J.武汉植物学研究,2002,20(2):150-152.WANGBin,ZHOULiping,LIWei.Preliminarystudiesonthepurify-ingfunctionanditsphysiologicalreactionofPotamagetoncrispusunderdifferentwaterqualitiesJ.JournalofWuhanBotanicalRe-search,2002,20(2):150-152.7SCHREIBERU,BILGERW,NEUBAUERC.Chlorophyllfluores-cenceasanonintrusiveindicatorforrapidassessmentofinvivopho-tosynthesisJ.EcolStudies,1994,100:49-70.8TAKABAYASHIA,KISHINEM,ASADAK,etal.DifferentialuseoftwocyclicelectronflowsaroundphotosystemIfordrivingCO2-concentrationmechanisminC4photosynthesisJ.Proc.Natl.Acad.Sci.USA,2005,102:16898-16903.9RALPHPJ,GADEMANNR.Rapidlightcurves:ApowerfultooltoassessphotosyntheticactivityJ.AquaticBotany,2005,82:222-237.10BILGERW,BJÖRKMANO.Roleofthexanthophyllcycleinphoto-protectionelucidatedbymeasurementsoflight-inducedabsorbancechanges,fluorescenceandphotosynthesisinleavesofHederacanar-iensisJ.PhotosynthRes,1990,25:173-185.11张守仁.叶绿素荧光动力学参数意义及讨论J.植物学通报,1999,16(4):444-448.ZHANGShouren.AdiscussiononchlorophyllfluorescencekineticsparametersandtheirsignificanceJ.ChineseBulletinofBotan,1999,16(4):444-448.12GENTYB,BRIANTAISJM,BAKERNR.TherelationshipbetweenthequantumyieldofphotosyntheticelectrontransportandquenchingofchlorophyllfluorescenceJ.ActaBiochimBiophys,1990:87-92.13VANKO,SNELJFH.Theuseofchlorophyllfluorescencenomen-clatureinplantstressphysiologyJ.PhotosynthesisResearch.1990,25:147-150.14OWENSM,LEARNERMA,MARISPJ.DeterminationorbiomassofaquaticplantsusinganopticalmethodJ.J.Ecol.,1967,53(3):671-676.15ÖGRENE.ROSENQVISTE.Predictionofphotoinhibitionofphoto-synthesisfrommeasurementsoffluorescencequenchingcompo-nentsJ.Planta,1991,184:538-544.16章宗涉.水生高等植物-浮游植物关系和湖泊营养状态J.湖泊科学,1998,10(4):83-86.ZHANGZongshe.Macrophyte-phytoplanktonrelationshipandlaketrophicststusJ.JournalofLakeScience,1998,10(4):83-86.ThegrowthofPotamogetoncrispusintheeutrophicationwaterMATing,WANGGuoxiang,LIQiang,PANGuoquan,WANGWenlinCollegeofGeographicalScience,NanjingNormalUniversity,JiangsuKeyLaboratoryofEnvironmentalChangeandEcologicalConstruction,Nanjing210046,ChinaAbstract:PotamogetoncripusweretransplantedintothreewaterswithdifferentconcentrationofN、PnutritionmadebyNH4Cl、NaNO3,KH2PO4.Todeterminetheeffectofnutritionontheplant,sproutheight,leafnumberandsomefluorescenceparameterslikePhotosystemII(PSII)quantumyield(Y),photochemicalquenching(qP),non-photochemicalquenching(qN)weremeasured.Theresultsshowthatplantscangrowwellinthewaters(TN<2mg·L-1,TP<0.4mg·L-1,Chla<118mg·m-3).Theplantheightwasin-ceased51.2%and46.6%,andleafnumberwasincreased57.7%and58.1%,However,inthewaterwithhighnutrient(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1)andlargebiomassofalgae(Chla421mg·m-3),nearlyallplantsweredead,indicatingthegrowthofPotamogetoncrispuswasintimidated.Fluorescenceanalysisindicatedthatlightenergyabsorbedbyleavesweremostlyusedtodrivephotochemi-calreactioninthewaters(TN<2mg·L-1,TP<0.4mg·L-1,Chla<118mg·m-3),whilemostenergyaborbedbyleavesinthewater(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1,Chla421mg·m-3)weredissipatedasheat.RapidlightcurvesanalysisshowedthattheEkofPotamogetoncrispuswereall176mol·m-2s-1inthethreewaters,buttherETR-maxofleavesinthewater(TN8mg·L-1,TP0.8mg·L-1,Chla421mg·m-3)wasobviouslylowerthantheoneinothers.Thisindicatesthatwiththeinceasingnutritionconcentration,thetoleranceabil-itytophotoinhibitionofPotamogetoncripuswassignificantlyreduced.Keywords:Potamogetoncrispus;eutrophication;fluorescence

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