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文档简介
龙志敏 200930220121 09制药一班 实验二 绿豆芽的蛋白质含量测定 (考马斯亮蓝G-250比色法) 一、实验目的 1、了解考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的原理,掌握其测定方法。 2、熟练掌握分光光度计的使用技术。 二、实验原理 考马斯亮蓝G-250是一种染料,在游离状态下呈红色,当它与蛋白质结合后变为蓝色,该结合物在595nm波长下有最大光吸收。在一定的蛋白质浓度范围内(01000g/mL),其吸光度与蛋白质含量成正比,故可用于可溶性蛋白质的定量测定。 三、仪器、试剂和材料 1、仪器设备 分析天平、10mL塑料离心管、5mL移液管、研钵、量筒、50mL离心管、10mL容量瓶、离心机、722型分光光度计 2、试剂 (1)标准蛋白质原液:称取100mg牛血清白蛋白,溶于蒸馏水并定容至100mL,即为1mg/mL的标准蛋白质原液。 (2)考马斯亮蓝G-250试剂:称取100mg考马斯亮蓝G-250,溶于50mL 95%乙醇中,加入 85%(m/v)的磷酸100mL,最后用蒸馏水定容到1000mL。此溶液在常温下可放置一个月。 3、材料: 绿豆芽 四、操作步骤 (一)绿豆芽蛋白质样品的制备 1、准确称取新鲜绿豆芽下胚轴2g,放入研钵中,加入2mL蒸馏水研成匀浆,转移至50mL 离心管中,再用6mL蒸馏水充分洗涤研钵,洗涤液收集于同一量筒中,定容至10ml,混匀; 2、冰浴中放置10-20 min以充分提取; 3、从量筒中取1ml至离心管,12000rpm离心5min,将上清液倒入10mL量筒,以蒸馏水定容至10mL,即得绿豆芽蛋白质样品溶液。 (二)标准曲线制作 2、高浓度标准曲线的制作(01000g/mL) 取6 支1.5mL 的离心管,按表1.2 加入试剂,配制不同浓度的蛋白质标准液 试管号 0 1 2 3 4 5 1mg/mL 的标准蛋白质原液(mL) 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 蒸馏水(mL) 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0 蛋白质含量(g) 0 200 400 600 800 1000 OD595nm 0 0.196 0. 346 0.487 0.602 0.781另取6 支10 mL 的离心管,编号标记,从上述各管中分别吸取0.1mL 溶液,加入5 mL 考马斯亮蓝G-250 试剂,盖上离心管盖子,充分混匀,放置3min 后在595 nm 波长下比色测定(比色应在 l h 内完成),记录各管测定的光密度值OD595nm。以牛血清白蛋白含量(g)为横坐标,以吸光度为纵坐标,制作蛋白质浓度为01000g/mL的标准曲线如下:(三)绿豆芽蛋白质样品溶液浓度的测定 另取2 支10 mL 的离心管,分别加入0.l mL 绿豆芽蛋白质样品溶液,加入5 mL 考马斯亮蓝G-250 试剂,盖上离心管盖子,充分混匀,放置3min 后在595 nm 波长下比色,记录吸光度,如下表:试管号 1 2 绿豆芽蛋白质样品溶液(ml)0.10.1OD595nm 0.224 0.235计算吸光度平均值得:(0.224+0.235)/2=0.229五、结果与分析 所测样品提取液的吸光度为0.229,代进标准曲线方程:Y=0.0008X得其相应的蛋白质含量为286.25g 计算绿豆芽蛋白质含量=14.3g六、注意事项 1、蛋白质和考马斯亮蓝G-250结合的反应迅速,反应在2 min左右达到平衡,其结合物在室温下1h内保持稳定。因此,比色应在出现蓝色3 minl h内完成,不可放置太久。 2、考马斯亮蓝染色能力强,所用比色皿应及时清洗,否则会污染比色皿,影响吸光值测定。切不可使用石英比色皿测定。 3、高浓度的Tris 、EDTA、尿素、甘油、蔗糖、丙酮、硫酸铵和去污剂对测定有干扰。 七、思考题 1、做好本实验的关键问题有哪些? 答:研磨绿豆芽要充分;冰愈离心时间要足;比色应在出现蓝色3 minl h内完成2、如何正确使用分光光度计? 答:1.接通电源,打开仪器开关,掀开样品室暗箱盖,预热10分钟。 2.将灵敏度开关调至“1”档(若零点调节器调不到“0”时,需选用较高档。) 3.根据所需波长转动波长选择钮。 4.将空白液及测定液分别倒入比色杯3/4处,用擦镜纸擦清外壁,放入样品室内,使空白管对准光路。 5.在暗箱盖开启状态下调节零点调节器,使读数盘指针指向t=0处。
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