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肝癌组织高迁移率族蛋白B1(HMGB1)的表达及其与临床病理因素的关系摘要:目的 探讨HMGB1蛋白在原发性肝细胞癌中的表达及对原发性肝细胞癌的诊断价值。方法 应用免疫组化及计算机图像分析方法测定30例原发性肝细胞癌及癌旁组织标本(自身配对组织)HMGB1蛋白表达,及其与原发性肝细胞癌临床病理因素的关系。结果 HMGB1在肝癌组织呈过表达,其表达高于肝癌旁组织(P0.05);HMGB1在包膜不完整、有淋巴结转移肝癌中的表达分别高于包膜完整及无淋巴结转移者(均P0.05),随着Edmondson病理学分级增加,HMGB1表达增高(P0.05)。而HMGB1表达与肿瘤患者年龄、性别、肿瘤大小无明显相关(均P0.05)。结论 HMGB1可能在原发性肝细胞癌的发生、发展,浸润及转移中发挥重要的作用。HMGB1可能是原发性肝细胞癌的一种新的潜在的肿瘤特异性标志物。关键词:肝细胞癌;HMGB1 ;免疫组织化学 ;计算机图像分析 高迁移率族蛋白B1(high-mobility group box-B1,HMGB1)是高度保守的非组蛋白DNA结合蛋白,哺乳动物中HMGB1具有99%的同源性质,HMGB1作为一种核蛋白,在DNA结构、基因转录、重组、细胞存活等方面发挥重要的调控作用1,2。最新研究发现HMGB1与原发性肝细胞癌有关,由于其在原发性肝细胞癌中的表达特异性升高而引起研究者3-5的注意。因此,我们采用免疫组织化学及计算机图像分析技术方法分析HMGB1蛋白在原发性肝细胞癌中的表达及与其临床病理因素的关系,为进一步探讨HMGB1与原发性肝细胞癌的发生、发展,浸润、转移的关系,寻找新的生物学标记物及治疗靶点奠定基础。材料与方法一、一般资料材料:标本来自2008年1月-2011年3月昆明市第一人民医院肝胆外科的原发性肝癌患者,以距癌灶边缘5cm为分界分别留取肝癌癌灶组织,非癌组织各30例。其中男24 例,女6 例,年龄36-75 岁,平均年龄59.610.5 岁。瘤体5 cm 16例,瘤体5 cm 14例,所有标本均经病理组织学证实为原发性肝细胞肝癌。二、方法1.免疫组织化学法 兔抗人HMGB1多克隆抗体及S-P免疫组化试剂盒分别购自美国PTG公司,北京中杉金桥生物技术有限公司。肝癌及癌旁组织免疫组化以经典的S-P法进行(HMGB1工作浓度1:100,每片滴加HMGB1一抗,4冰箱过夜)DAB显色,以PBS液代替一抗作为阴性对照,以已证实HMGB1染色阳性的肝癌标本作阳性对照。2.计算机图像分析 应用HPIAS1000 高清晰度病理图文分析系统对免疫组化结果进行定量分析。(详细操作步骤参照HPIAS1000型图像分析仪使用手册。)3. 结果判断: (1)免疫组化 细胞核和/或细胞浆出现棕黄色或棕褐色染色颗粒为阳性细胞。每张切片在高倍镜下(X200)随机观察5个视野,计数200个细胞/视野,阳性细胞数15%为表达阴性(-),阳性细胞数15%-50%为表达弱阳性(+),阳性细胞数51%-75%为表达中等强度阳性(+),阳性细胞数75%为表达强阳性(+),其中阳性细胞数大于50%为过表达。(2)计算机图像分析 每组标本均在400放大倍数下按照无偏采样原则取5个视野,每个视野均按照无偏采样原则取5个细胞进行测定。根据阳性单位(PU)结果来判断免疫组化染色强度的差异。PU值用均值+标准差()表示。4 统计学分析应用SPSS13.0统计软件分析处理。多样本和两样本半定量积分的阳性表达比较均采用Kruskal-Wallis秩和检验,蛋白表达强度差异PU值()进行单因素方差分析后行LSD-t检验。(检验水准=0.05,P0.05具有统计学意义。)三 结果1.免疫组化染色 癌旁组织中HMGB1蛋白表达较低,表现为少数胞核和(或)胞浆微弱着色。HMGB1蛋白在肝癌组织中呈过表达,阳性颗粒主要位于细胞核中,细胞浆也有微弱着色(图14)。肝细胞癌组织中HMGB1阳性表达率为80%,与癌旁组织30%相比,差异有统计学意义(P0.05)。肝细胞癌组织、-、级中HMGB1蛋白阳性表达率逐渐增加,分别为62.5%、83%、90%,(均P0.05)。随着肝细胞癌淋巴结的转移,HMGB1蛋白的阳性表达率增加,分别为76.2%、89%,包膜不完整肿瘤的HMGB1阳性率(81.8%)高于包膜完整者(78.9%),其差异均有统计学意义(P0.05)。而HMGB1蛋白与肝细胞癌患者年龄、性别及肿瘤大小无关(均P0.05)。计算机图像分析结果与免疫组化结果一致(详见表12)。中呈阳性表达 100 中呈阳性表达 4002 计算机图像分析结果 表1 HMGB1与肝细胞癌及癌旁组织的关系表2 HMGB1与原发性肝细胞性肝癌临床病理因素的关系组别 例数 阳性单位(PU) () P值性别男 25 13.67 0.35 0.517女 5 11.11 1.08 年龄/岁 50 6 9.83 0.96 0.180 50 24 14.30 0.10肿瘤大小/cm 5 16 12.17 0.43 0.432 5 14 14.47 1.23肿瘤包膜 完整 19 11.13 0.59 0.041 不完整 11 16.89 8.80 Edmondson分级级(高分化) 8 6.57 0.45 0.041-级(中分化) 12 12.51 0.18 0.001 级(低分化) 10 18.95 1.12 0.034 淋巴结转移无 21 10.99 0.01 0.014有 9 18.48 1.23四 讨论 高迁移率蛋白B1(high-mobility group box-B1,HMGB1)基因于1973年首先由Sanders等6,7 在小牛胸腺中发现,人HMGB1定位于13q12带,编码含215个氨基酸的单链多肽,HMGB1由3个功能区组成:两个含正电荷区域(A盒和B盒)和一个呈负电荷的羧基端。HMGB1作为一种重要的晚期炎性介质,与脓毒症、神经轴突生长、免疫性疾病、恶性肿瘤、缺血再灌注损伤等疾病相关。而HMGB1在肿瘤中的作用为现今研究的热点,作为一种潜在的多功能“晚期”炎性介质,HMGB1被坏死肿瘤细胞释放道微环境中,而细胞外的HMGB1可导致慢性炎症/修复性反应,可导致肿瘤细胞的存活、进展及转移8。 迄今为止,研究发现9,10多种肿瘤组织和患者血清中均有HMGB1的高表达(如结直肠癌、乳腺癌、前列腺癌、胰腺癌、黑色素瘤、头颈部鳞癌、膀胱癌、宫颈癌),且其配体RAGE在不同的肿瘤细胞中也有表达。给予HMGB1或RAGE抑制剂,可以明显抑制肿瘤细胞增殖13。HMGB1并与肿瘤分期、浸润深度、淋巴结转移、肿瘤大小及预后明显相关3,9。而HMGB1在肿瘤发生发展中的作用机制目前有以下两种说法12,13:HMGB1的过表达可致肿瘤表型基因的表达异常,而引起肿瘤;HMGB1 的过表达可使获得肿瘤表型的细胞免于凋亡,继续生长,导致肿瘤。原发部位肿瘤细胞分泌HMGB1到达区域淋巴结,通过减少巨噬细胞数量削弱淋巴组织的抗转移潜能。HMGB1通过与其配体RAGE 结合, 激活了细胞内JNK 、NF-B p65、和p42/ p44 、Rac1/Cdc42等,进而激活MAPK s, PI3K/Akt, Rho GTP酶,Jak/STAT, and Src family kinases(沉降红细胞家族激酶)等14-16信号传导通路,引起明胶酶A ( MM P-2) 和明胶酶B( MMP-9) 的激活,引起纤维蛋白溶酶等系统激活, 使细胞外基质降解, 抑制肿瘤细胞的凋亡,促进肿瘤细胞浸润、转移。 迄今为止,关于HMGB1与肝癌相关研究的报道少见。Sakuraoka Y4,17等检测结果显示肝癌细胞株HepG2中有RAGE mRNA及其蛋白的表达,说明HMGB1能刺激人肝癌细胞株HepG2的生长、增殖。Cheng等3,18研究发现, 肝细胞癌患者HMGB1的血清水平比慢性肝炎及肝硬化患者明显升高, 血清HMGB1的表达与肝癌的TNM分期、病理学分级及淋巴结转移密切相关,由此可见血清HMGB1与肝细胞癌的发生、发展有关。而HMGB1在原发性肝细胞癌组织中的发生、发展有着怎样的作用,及HMGBI与肝细胞癌临床病理特征的具体关系正是我们研究的目的。 本研究使用免疫组化及计算机图像分析结果显示,HMGB1蛋白在肝癌组织中呈过表达,其检测结果与冯华国16的研究一致,提示HMGB1在原发性肝细胞癌的发病过程中起着关键性的作用。随着肝细胞癌Edmondson病理学分级增加,HMGB1蛋白阳性表达增加,有淋巴结转移肝癌患者比无转移者HMGB1表达增加,肿瘤包膜不完整比包膜完整者HMGB1表达增加。笔者认为HMGB1在不同病理阶段其在机体含量不同,对肿瘤细胞的促增殖作用不同。而HMGB1蛋白表达与肝细胞癌患者年龄、性别及肿瘤大小无相关。本研究首次揭示了HMGB1蛋白表达与人肝细胞癌组织Edmondson病理学分级、包膜完整、淋巴结转移密切相关。提示HMGB1在原发性肝细胞癌的发生、发展、浸润和转移中可能发挥了重要作用。HMGB1可能是原发性肝细胞癌的一种新的潜在的肿瘤特异性标志物。为肝细胞癌分子靶向治疗提供了依据。参考文献:1Stros M. HMGB proteins interactions with DNA and chromatin. Biochim Biophys Acta.2010,1799:101-113.2Increased expression of HMGB1 is associated with poor prognosis in human bladder cancer.Yang GL, Zhang LH, Bo JJ, et al.J Surg Oncol. 2012 Jan 11. doi: 10.1002/jso.23040. Epub ahead of print。3Cheng BQ, Jia C Q, Liu CT, et al. Serum high mobility group box chromosomal protein 1 is associated with clinicopathologic features in patients with hepatocellular carcinomaJ. Dig Liver Dis.2008, 40: 446 -452.4 Sakuraoka Y, Sawada T,et al. MK615 decreases RAGE expression and inhibits TAGE-induced proliferation in hepatocellular carcinoma cellsJ.World J Gastroenterol. 2010,16(42):5334-5341.5高保华,汪雯,牛春燕等. HMGB1在肝癌及癌旁组织中的表达及意义J. 肝胆胰肿瘤.2011,27(8):850-853.6Haque A, Kunimoto F, Narahara H, et al. High mobility group box 1 levels in on and off-pump cardiac surgery patients J . Int Heart J. 2011,52(3):170-174.7 Kew RR, Penzo M, Habiel DM, et al. The IKK-Dependent NF-B p52/RelB Noncanonical Pathway Is Essential To Sustain a CXCL12 Autocrine Loop in Cells Migrating in Response to HMGB1 J . J Immunol. 2012 Jan 27. Epub ahead of print8 Dong Xda E, Ito N, Lotze M T, et al. High mobility group box I( HMGB1) release from tumor cells after treatm ent: implications for development of targeted chemoimm unotherapy J. J Immunother, 2007,30( 6)?:596-606.9 Ellerman JE, Brown CK, de Vera M, Zeh HJ, Billiar T, et al. Masquerader: high mobility group box-1 and cancerJ.Clin Cancer Res. 2007.13:2836-2848.10 Kostova N, Zlateva S,Ugrinova I, Pasheva E. The expression of HMGB1 protein and its receptor RAGE in human malignant tumorsJ.Mol Cell Biochem. 2010,337 (1-2):251-258.11 Taguchi A,BloodDC,del ToroG,et alBlockade of RAGE-ampho- terinsignalling suppresses tumour growth and metastasisJNature,2000,405(6784):354-36012Muller S,Ronfnai L, Blan chi M E. Regulated expression and subcellular localization of H M GB1, a chromatin protein w ith acytokine functionJ. J Intern M ed, 2004, 255: 332 -343.13Hiwatashi,k,at a1A novel function of the receptor for advanced glycation end-products(RAGE) in association with tumorigenesis and tumor differentiation of HCCJAnnSurg Oncol,2008,15(3):923-93314 Palumbo R, De Marchis F,

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