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文档简介

微生物标本的采集与运送,1,在临床微生物检验工作中,标本的正确选择、采集和运送是保证检验质量的重要环节,是实验室工作准确和有效的基本前提。,早期、无菌、合格,2,标本,规范化采集,不符合要求,污染的标本,提供重要临床感染信息,结果无意义,误导临床,3,常见标本的分类,4,一、血液标本的采集,5,1、不明原因的发热(大于38或低于36)2、寒战、休克、僵直3、严重的局部感染(脑膜炎、心内膜炎、肺炎、肾盂肾炎、腹部术后感染等)4、白细胞增多(特别是核左移,未成熟或杆状核)5、粒细胞减少、血小板减少6、皮肤粘膜出血、多器官衰竭等7、CRP、PCT升高,(一)采集指征,6,1、抗生素治疗之前若已使用抗生素者,应在下次用药前或血药浓度最低时采集标本。2、患者寒战时3、发热初期或高峰时超过发热峰值后,病原菌会逐渐被机体免疫系统清除,从而减低检出率。,(二)采集时间:,发热要做血培养,双侧双瓶少漏网;何时采血要记清,寒战前后菌量深;,7,采集前非常关键的一步:皮肤和瓶子的消毒,特别提示:,8,1、需氧瓶+厌氧瓶为一套注意:每一套血培养应当从身体的不同部位采集2、成人:810ml/瓶儿童:35ml/瓶婴幼儿:12ml/瓶注意:采集静脉血,(三)采集血量:,9,1、急性感染:分别从两臂采血,每臂采1套。2、急性心内膜炎:在抗生素治疗前1-2h内,于3个不同部位采集3套3、亚急性心内膜炎,第1天24h内,相隔1h分3个不同部位,连续采集3套血培养标本,若24-48h全部阴性,再采集2-3套血培养标本,(四)采集频率,通常情况,10,4、对于已进行抗生素治疗的心内膜炎患者,每日采集2套血液标本,连续3天5、不明原因发热,于发热期内多次采血,如果24h培养为阴性结果,应继续采集2-3套或更多套血培养标本。,11,血循环中的细菌有“暂时性”、“持续性”一过性的菌血症,细菌仅在外周血中持续数秒共生菌、复数菌提高检出率、减少漏检、判断病原,为何要多次采血,?,?,?,12,采血套数与检出率JClinMicrobiol.2007;45:3546-3548,13,标本不够时,先满足需氧瓶,(五)采集顺序:,需氧瓶,厌氧瓶,采血试管,14,1、已采集的血培养标本必须立即送检,2、如不能立即送检,可室温放置,但不超过2小时,不可放冰箱。,(六)运送要求:,取后不能及时送,常温放置忌冰冻。,15,二、尿液标本的采集,16,1、中段尿2、导管尿(不能取尿袋内的尿液)3、膀胱穿刺尿常用:中段尿(晨尿或在膀胱内停留4h以上的尿液),(一)尿标本种类:,17,1、采集:采样前,应先清洁外阴及尿道口周围,自然排尿,不间停,截留中段尿,置于无菌尿杯中,一般留取10ml左右2、运送:常温下2小时内送达微生物室,4保存不超过24h,(二)中段尿的留取:,尿液培养要计算,清洗外阴留中段;培养长出多种菌,辨清污染重新送。,18,三、粪便标本的采集,19,1、腹泄、大便3次,粪便性状异常,如稀便、水样便、脓血便、血便,可伴恶心、呕吐、食欲不振、发热、腹痛及全身不适等。尽量在用药前采集2、伤寒患者于发病2周后采集粪便3、怀疑霍乱时立即采集粪便送检。4、粪便涂片镜检WBC5个/HP,(一)采集指征,20,1、自然排便法:自然排便后,挑取脓血、黏液便2-3g作常规性病原菌培养;液状粪便取絮状物2-3ml,直接放入无菌杯内送检。2、直肠拭子法难以获得粪便、排便困难者及幼儿用此法,(二)采集方法与送检:,21,直肠拭子法:将无菌拭子用无菌生理盐水湿润后插入肛门2-4cm,柔和地旋转拭子采集粪便标本。一般不推荐使用拭子做腹泻病菌的培养。3、送检:1小时内送达,志贺菌30分钟内送达怀疑弧菌,立即送检。,大便要取脓血处,志贺沙门需关注。,22,四、呼吸道标本的采集,23,1、咽拭子采样:患者先用清水漱口,将患者的舌头向外轻拉,用无菌拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧(肉眼可见的红肿或白膜部位)反复涂抹数次,拭子要避免接触到口腔和舌黏膜。2、鼻拭子采样:用无菌拭子伸入鼻腔至少深1cm在鼻内病灶边缘部分,先用力旋转拭子,停留10-15s后取出,插入无菌管中。3、口腔溃疡:先用一个拭子拭去溃疡或创面浅表分泌物,再用第二个拭子采集溃疡边缘或底部的标本。,(一)上呼吸道标本:,24,咳出痰、诱导痰、吸出痰、支气管肺泡灌洗液、支气管保护性毛刷、肺穿刺组织下面仅介绍:咳出痰1、抗生素使用前,一般以晨痰为好。,(二)下呼吸道标本,25,2、告知患者在留痰前,先用冷开水或无菌生理盐水反复漱口,然后再用力咳出深处痰液(可轻拍背部),吐入无菌痰杯中送检。3、常规细菌培养标本两小时内送检,疑为流感嗜血杆菌、肺炎链球菌时立即送检注意:标本内切勿混入唾液及鼻咽分泌物,26,4、合格的痰液标本:平均每低倍视野鳞状上皮细胞数10个对于不合格痰标本,检验科应在拒收系统中注明原因,并且打电话临床科室,重新采样,痰液培养杂菌多,清晨漱口要深咯,涂片合格继续做,正常致病必掌握。,27,(一)体液标本包括:心包液、关节液、胸水、腹水、羊膜液、后穹隆等穿刺液(二)容器:可直接注入血培养瓶,以提高阳性率,可同时用需氧和厌氧瓶。(三)标本量:1ml,尽量不使用引流液(四)运送:室温,15分钟内运送至实验室,五、体液标本的采集,28,(一)采集时间:使用抗生素前(二)采集方法:采用腰椎穿刺术无菌采集(三)采集量与容器:12ml,直接注入血培养(四)运送:常温下立即送检,一般是15min内送至实验室。若培养脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌等苛养菌时,应35保温送检或床旁接种。,六、脑脊液标本的采集,胸水腹水脑脊液,放入血瓶阳性多,条件限制无血瓶,接种平皿亦认可。,29,(一)常用女性生殖道标本:阴道后穹隆、盆腔穿刺液、阴道拭子、子宫颈拭子、前庭大腺吸出液(二)常用男性生殖道标本:阴囊穿刺液、前列腺按摩液、水疱液、尿道分泌物以上标本均由专科医师采集,2小时内送检,七、生殖道标本,30,1、结膜标本:湿拭子,滚动采集2、眼角膜标本:在麻醉下,刮取3、耳部拭子:外耳炎4、穿刺液:鼓膜穿孔,穿刺抽取深部分泌物以上标本由专科医师采集,2小时内送检,室温保存不超过24小时。,八、眼耳标本,31,(一)标本采集1、开放性伤口:先以无菌生理盐水或75%乙醇冲洗擦去表面渗出物,用拭子采集深部伤口或溃疡基底部分泌物,或剪取深部病损边缘组织。烧伤创面,多部位取样。,九、伤口、脓液及组织标本,32,2、封闭性脓肿:消毒脓肿局部皮肤或黏膜表面后,用注射器穿刺抽取脓液3-10ml注入无菌试管内送检。3、组织:经穿刺或手术活检获得标本,穿刺组织可放入1.5ml无菌离心管中;,33,4、体表伤口可接收细菌培养的条件:鳞状上皮细胞数10个/低倍视野,并有多形核白细胞存在(二)送检:立即送检,建议不超过1小时送达,34,(一)导管头:采用无菌性技术,获取插入患者体内最远端的导管段约5cm,置于无菌容器送检;不能置于生理盐水或转运培养基中运送。但,单独导管头培养意义不大,通常送检导管头

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