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文档简介
倒置荧光显微镜操作规程Olympus IX5厦门大学医学院中心实验室黄静茹2016年10月说明:透射光主开关;汞灯高压电源开关;透射光光强控制钮;滤色片架;光路选择杆;X轴和Y轴调节钮;物镜转盘;粗/微调焦旋钮;双目观察筒;屈光度调节环;聚光镜高度调节钮;聚光镜对中旋钮;视场光阑调节杆;孔径光阑调节杆;聚光镜转盘;荧光光闸(SHUTTER);荧光激发块转盘;荧光减光阀一、开机1、 打开透射光源(白光)主开关;2、 打开荧光光源(汞灯高压电源);3、 打开电脑,进入 cellSens Standard工作站; 备注:标本为HE染色、免疫组化时,不需要打开荧光光源;标本为荧光染料染色时,一般也不需要打开白光光源。二、明场观察(Bright Field BF)1、正确放置标本,BF主要用于HE染色、免疫组化标本;2、转动荧光激发块转盘到“6”的位置;3、转动聚光镜转盘到“BF”位置,直到听到咔嗒声;4、将光路选择杆推进去( 选择目镜观察光路);5、转动物镜转盘,选用合适的物镜,调节白光光强控制钮至合适的强度, 调 节粗/细调焦旋钮聚焦观察,根据需要调节瞳间距和屈光度;三、相衬观察(Phase contrast PH)1、正确放置标本,PH主要用于没有任何染色的、较透明的标本;2、转动荧光激发块转盘到“6”的位置;3、转动物镜转盘,选用合适的物镜;4、转动聚光镜转盘,使相衬光学元件与所用物镜相匹配(见表1);5、将光路选择杆推进去( 选择目镜观察光路);6、调节光强控制钮直至合适的强度,调节粗/细调焦旋钮进行聚焦观察,根 据需要调节瞳间距和屈光度。 表1: 物镜、相差元件匹配表物镜4X10X、20X40X相差元件PHLPH 1(PH C)PH 2四、荧光观察1、如果需要,可先用明场观察对标本定位,再转入荧光观察;2、如果不再需要BF观察,可关闭白光电源;或将白光光强调节钮逆时针旋 至最低,将孔径光阑向右拨至最小;3、转动荧光激发块转盘,根据所用的荧光染料选择匹配的荧光激发块; 表2:荧光激发块序号激发块名称激发光(nm)发射光(nm)滤掉光(nm)1WU330-3854204002WB450-4805155003WG510-5505905704WBV400-4404754555WIY545-5806106006BF明场、相差4、打开荧光光闸(SHUTTER),使其置于“O”位置; 5、将光路选择杆推进去( 选择目镜观察光路);6、转动物镜转盘,选用合适的物镜,调节粗/细调焦旋钮聚焦观察,根据荧 光强度选择合适的ND滤镜(荧光减光阀)进入光路。(第一个ND100:100% 的荧光强度进入光路;第二个ND6:6%的荧光强度进入光路,第三个ND25: 25% 的荧光强度进入光路)。五、CCD成像1、cellSens Standard工作站中,,点击右侧摄像控制中的实时观察;2、将光路选择杆拉出(,CCD成像光路),调节粗/细调焦旋钮进行聚焦;3、曝光:可先选择自动曝光,参照自动曝光时间,再通过手动调节曝光时间使 图像更清晰;4、背景校准:进行明场和相差成像时执行白平衡 ,荧光成像时执行黑平 衡, 在样品空白背景处画一个小区域,软件自动以该处为背景对整幅 图像进行调整,使所选区域显示为白色或黑色;5、各成像参数设定完毕后,点击拍照 ,仪器自动成像;6、右键文档工具栏窗口或在文件处进行保存(TIF或JPG格式)。六、关机1、实验完毕,先退出工作站;2、将透射光光强调节钮逆时针旋至最低,关闭透射光主开关(TH4);3、确认汞灯开启超过0.5h,方能关闭汞灯高压电源;4、用无水乙醇擦拭镜头,并将物镜转盘转至空位,清理载物台及桌面;5、刻录数据:放入全新光盘,将数据发送至光盘,电脑右下角出现刻录提示, 点击该提示进入,确认待刻录数据,点击“刻录到光盘”-下一步,刻录 完毕,光盘自动退出。6、关电脑及显示器。七、图像处理1、标尺:在工具栏上选择正确的物镜倍数,点击“视图”-标尺,软件自动将 标尺加在图像上,再点击“图像”-印入信息,保存即可。2、测量:点击“测量”-测量工具,软件左侧显示出测量工具栏,点击选择 所需的测量工具,在图像上画目标区域,右键点击结束测量即可显示结果。 测 量结果可导出Excel:点击测量工具栏图标 。3、图像叠加:打开拟叠加的图,“图像”-组合彩色图像-“可用图像”中 选择拟叠加的图-合并层-确认。4、图像拼接:按一定顺序 拍摄图像,相邻两张图像的边缘要部分重叠, 所有图像拍摄完毕后,选择视图-工具-画廊-全选拟拼接的图像,选择 运算-图像拼接-设置水平方向图像数量-根据拍摄顺序摆好图像位置 -确定;预览后视情况选择“裁剪边缘”-确定。八、注意事项1、汞灯开启后必须至少使用0.5h才能关闭!汞灯关闭后若还需使用,必须等 0.5h后才能再次开启!2、
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