猪群健康监测之屠宰场病变评估(2012-11)

猪群健康监控：屠宰场病变评估系统的建立与应用猪群健康监控：屠宰场病变评估系统的建立与应用邹广彬1 周小兵1 曲向阳2 张聪洲3* （1.上海农场畜牧水产养殖公司，江苏 大丰，224151； 2. 美国礼来亚洲公司上海代表处，上海，200021； 3.台湾屏东科技大学临床兽医系，台湾屏东，912010）中图分类号： 文献标识码： 文章编号： 临床症状观察、猪群生产成绩监控与血清学监测是我国养猪业常用的猪群健康评估方法。根据临床症状与猪群生产成绩判断群体的健康状况比较直观，但准确性较差，对从业人员的临床经验要求较高。血清学监测与生物统计学方法的结合，可对猪群的健康状况进行快速而准确的判断，但目前血清学诊断主要用于猪瘟、伪狂犬、口蹄疫等几大重要病毒性疾病的监测，价格相对较贵，且无法全面反应猪群的健康状况。屠宰场病变评估是指根据上市猪屠宰后脏器的病变情况对生长育肥猪或种猪群的健康状况进行回顾性判断。目前我国多将此法用于食品安全检疫，但其也是猪群健康监控的有效措施，虽具有一定的滞后性，但可对生长育肥猪的慢性损耗性疾病（若：支原体肺炎、蛔虫病等）作直观判断，执行成本低，该法作为上述几种健康评估方法的有力补充，在多个国家已得到广泛应用。本文将对屠宰场病变评估系统进行介绍，以期帮助养猪同行更加全面的监控猪群健康状态。1.各系统病变评估标准的建立1.1 呼吸系统的病变评估萎缩性鼻炎、支气管肺炎（如：支原体肺炎或/和巴氏杆菌等感染）与胸膜炎等是生长育肥猪群常见的呼吸系统问题。但在当前规模化猪场，这些疾病的临床症状常不典型，多以亚临床形式存在。因此，美国、法国、丹麦等多年前已将屠宰场肺脏病变评估作为一种重要的慢性肺炎回顾性诊断方法1，用来评估生长育肥猪肺脏的健康状况及所用防控措施的有效性，特别在评估支原体肺炎的防控效果时被广泛应用。1.1.1 萎缩性鼻炎猪萎缩性鼻炎是由支气管败血波氏杆菌或/和产毒素多杀性巴氏杆菌共同感染所引致的一种慢性呼吸道传染病。其是猪呼吸道疾病综合征的重要诱因之一2。因该病可严重影响生长育肥猪的生长速度，对养猪业的经济效益影响巨大3。目前该病多以亚临床形式存在，病原分离易产生漏诊，故屠宰场病变评估已成为对萎缩性鼻炎感染状态与鼻甲骨萎缩严重程度进行持续性评估的重要手段。Done等人4建立了对鼻甲骨萎缩的严重程度进行评估的方法。简述如下:标记：利用手术刀在第一前臼齿前部对皮肤与皮下组织作环形切开；切割：利用钢锯沿标记线将鼻腔横向切开； 测量与评分：用尺子测量上下鼻甲骨萎缩后所留空隙的长度，并相加求和（见图1），对照表1 进行评分。得分为0级与1级的视为正常；2级与3级的定义为轻度或中等程度的萎缩性鼻炎；4级与5级的定义为严重萎缩性鼻炎。目前学术界已建立不同的鼻甲骨萎缩程度评估方法,但均具有一定主观性。Jolie 等5发展了利用计算机对鼻甲骨萎缩严重状况进行评估的方法，按鼻腔空洞面积占总截面的百分比来评估，结果更精确，但对设备的依赖性大，尚未广泛应用。 表1：鼻甲骨评分标准 病变等级双侧鼻甲骨空洞长度之和（mm）0361792101231316417205 21图1：屠宰场病变长度测量方法1.1.2 支气管肺炎 支气管肺炎是指支气管、细支气管粘膜及其肺泡的慢性非特异性炎症，常见于某个肺小叶或几个肺小叶,故又称为小叶性肺炎。其眼观病变部位主要在心叶、尖叶与膈叶的前下缘，病变为一侧性或双侧性，病变部位肺组织发生实变，呈灰红色（图2）。 常可从细支气管中挤压出脓性分泌物（图3）。支气管肺炎的诱因较复杂，饲养管理不当，环境粉尘较多，有害气体刺激等均可成为诱因。从病原学角度来看，支气管肺炎（肺实变）多因细菌性感染所导致，包括肺炎支原体、巴氏杆菌、链球菌等，以肺炎支原体最为常见。图2：两侧肺脏尖叶与心叶呈现实变图3：实变部位有脓液渗出目前针对支气管肺炎的屠宰场病变评估方法行业内尚未达成一致意见。常采用5分制6、24分制1、55分制、100分制6 等标准。现将100分制方法简述如下：如图4所示，根据各肺叶的体积占整个肺体积的比例对各个肺叶定义分数：左尖叶（5）、右尖叶（6）、左心叶（7）、右心叶（9）、左膈叶（32）、右膈叶（36）、副叶（5）。然后依据各肺叶肉眼所见的实变组织的表面积占该肺叶表面积的比例计算该肺炎的得分。例如：右尖叶（总分为6）有50的表面积出现实变，那右尖叶的实变评分为3；然后将各个肺叶的实变得分相加求和，并根据 表2 的判断标准进行评级。 表2：支气管肺炎病变比例与等级判定病变比例病变等级505 15115 25225 35335 454 455 图4：支气管肺炎评估中各肺叶所占的比重根据以下计算公式计算具有肺实变的猪只比例、严重肺实变的猪只比例及肺部实变平均得分等三个参数，以评估支气管肺炎在该猪群中的严重程度。具有肺实变的猪只比例肺脏具有实变的猪只数目 / 被评估猪的总数；严重肺实变的猪只比例实变评级在4级与5级的猪只数量 / 被评估猪的总数；平均肺评级所有猪肺评级数的总和 / 被评估猪的总数;1.1.3 胸膜炎胸膜炎是致病因素(如：细菌或病毒等)刺激胸膜所致的胸膜炎症，胸腔内有液体积聚（渗出性胸膜炎）或无液体积聚（干性胸膜炎）。而引致胸膜炎的因素可因发生部位与形态的不同而有所不同7，一般认为，尖叶与心叶间的粘连较轻微，多由肺炎支原体或/和巴氏杆菌等感染所致，对肺脏的呼吸功能的影响较轻微，而膈叶的胸膜炎病变多因传染性胸膜肺炎的感染引致，偶尔也由副猪嗜血杆菌、链球菌等感染引致，对肺的呼吸功能影响也较严重7。胸膜炎的评价方法6：依照Vincent所述的屠宰场胸膜炎评估系统（Slaughterhouse Pleurisy Evaluation System SEPS ）方法进行。依据胸膜炎粘连是否存在，存在的位置、范围及严重程度对其评分，分为04个等级（参照表3）。表3：胸膜炎的病变等级判定胸膜炎粘连发生位置、范围及严重程度病变等级无病变0尖叶与心叶间发生粘连或肺隔叶的腹侧缘发生粘连1单侧肺膈叶呈现轻微的局灶性粘连2双侧肺膈叶均有轻微的局灶性粘连或单侧肺膈叶呈现严重的广泛性粘连3双侧肺呈现严重的粘连（两侧的肺膈叶1/3发生粘连）41.2 消化系统的病变评估1.2.1 肠道：增生性肠炎与内寄生虫 增生性肠炎、内寄生虫病（蛔虫病与鞭虫病等）是生长育肥猪最常见的消化道问题，也是屠宰场病变评估的重点内容。 增生性肠炎是由胞内劳森氏菌感染所引致的一种慢性消耗性疾病。常见于保育后期猪与生长育肥猪，屠宰场病变评估时可发现，回肠、盲肠与结肠粘膜肥厚如水管状结构，粘膜褶皱深，呈脑回状（图5）。发病猪常无典型的临床症状，可在屠宰场中发现肠道出现相应的病变，并依据病变的发生率来判断增生性肠炎危害的程度。但目前行业内尚未形成针对增生性肠炎的统一病变评估标准。 猪蛔虫病是猪蛔虫寄生于猪小肠而引起的寄生虫病，是最常见的猪消化道寄生虫病。成虫常寄生于小肠，竞争宿主的营养，干扰其营养物质的吸收，甚至堵塞小肠肠管。蛔虫的幼虫在肝脏中移行时，可引致出血性病灶，结缔组织增生等，从而在肝脏形成“乳斑”样病灶（图6）。之前的研究表明，猪乳斑肝的发生率与小肠内猪蛔虫的检出率成正相关8，目前已利用肝脏“乳斑肝”屠宰场病变评估来判断猪蛔虫的发生率及蛔虫控制方案的有效性。图5：增生性肠炎，回肠、盲肠与结肠增厚（图3） 图6：蛔虫幼虫移行形成的“乳斑肝”。1.2.3 胃：胃溃疡 胃溃疡主要指胃食道区溃疡，发生于胃贲门与食道相连的无腺体区，可侵害各种日龄的猪只，但以生长育肥猪、种猪群为主9 。虽然胃溃疡确切的致病因素还没有完全弄清楚，但是已掌握了许多与该病相关的危害因素，如：饲料颗粒的大小，各种应激等。图7：胃无腺体区出现新鲜的溃疡灶 在现代化的养殖模式下，胃溃疡的发生是非常普遍的，对猪群的生长速度影响较大，但早期的胃溃疡不会表现出临床症状。据调查，世界各国的上市猪胃溃疡的发生率在131009，淘汰的经产母猪中1015患有胃溃疡10，屠宰场检疫发现经产母猪胃贲门周围常有广泛的疤痕组织(图7)。目前很多国家已将胃损伤的解剖病变列入屠宰场的监测项目。为了检查食道区，可沿着胃大弯切开胃并外翻，倒空内容物。检查前洗胃将有助于提高检查的准确性，人们已尝试用各种分类方法来对屠宰猪的胃损伤程度进行评级11，如表4所示：表4：屠宰场胃溃疡损伤程度评级表严重程度病变描述0 级正常、有光泽、白色、整个食管区表面闪光1 级有角化不全症状，如增厚粗糙的表皮呈波状，黄色2 级上皮出现糜烂，尤其是靠近贲门处3 级有溃疡和疤痕2. 屠宰场病变评估的执行及对疫病防控的指导屠宰场病变评估作为评价生长育肥猪慢性消耗性疾病发生状况的方法，可对现有的血清学与临床诊断学方法形成有利的补充。猪场可按照以下三种形式执行：（1）可根据屠宰人员对上市猪脏器病变状况的反馈情况，派兽医技术人员到屠宰场进行病变评估；（2）每月定期派兽医技术人员到屠宰场中进行病变评估；（3）当更改支原体、回肠炎、萎缩性鼻炎等慢性消耗性疾病的防控策略后，到屠宰场做病变评估工作，以作为判断防控策略成功与否的标准。由于目前行业内尚未形成屠宰场病变评估的统一方法，现行方法多具有一定的主观性，故兽医技术人员在进行病变评估前必须接受专业的培训，每次尽量派遣相同的技术人员进行病变的评估工作，以确保评估标准的一致性与评估结果的可比较性。目前已有多国的学者在研究猪只病变的严重程度与猪群经济效益之间的关系。依据屠宰场病变评估的结果，可及时的发现猪场可能存在的慢性消耗性疾病，并及时采取或修正防控措施，实现猪群经济效益最大化。参考文献1 Philippe Leneveu, Nathalie Robert, Alassane Keta et al.Lung lesions in pigs at slaughter:a 2-year epidemiological studying in FranceJ. Journal of applied research in veterinary medicine. 2005,3:259-269. 2 Barbara E Straw, Jeffery J Zimmerman, David J Taylor. 猪病学M.赵德明，张仲秋，沈建忠译.第九版.北京:中国农业出版社，2008:649668.3 Glattleider L, Laval A, Espeisse O. Horizontal transmission of atrophic rhinitis M. Proceeding of International Pig Veterinary Society.1996,14: 251. 4Done JT, Upcott DH, Frewin DC, et al. Atrophic rhinitis: Snout morphometry for quantitative assessment of conchal atrophy. Vet Rec.1984,113:33.5Jolie R, Thacker B. Diagnosis of atrophic rhinitis by computerized tomography: A preliminary report J. Vet Rec.1990,126:591-594.6Jess Mara Bollo, Rut Menjn, Enrique Calvo. Review of the”0 to 5 scoring method” for enzootic pneumonia slaughterhouse lesions. Proceeding of 20th IPVS.2008,(2):5.7 Vincent ter Beek. A new approach for pleurisy detectionJ. Pig Progress. 2007,23:26-27. 8Theresa M. Bernardo.A critical assessment of abattoir surveillance as a screening test for swine ascariasisJ. Can J Vet Res 1990; 54:274-277.9 Barbara E Straw, Jeffery J Zimmerman, David J Taylor. 猪病学M.赵德明，张仲秋，沈建忠译.第九版.北京:中国农业出版社，2008:10141019.10 OSullivan T,Friendship RM,Ball RO,Ayles H.Prevalence of lesions of the pars oesophageal region of the stomach o