酶免疫分析技术在生物药物分析中的应用ppt课件

1、1,第四节 酶免疫分析技术在生物药物分析中的应用,其应用主要包括以下几个方面： 药物含量（活性）测定 宿主蛋白残留检测 抗生素残留检测 杂质检测 污染物检测 药物原材料检测 药物掺假检测,2,一、GLP-1活性检测,Cyclic Adenosine Monophosphate (cAMP) ELISA Kit,3,GLP-1,GLP-1是已发现的促胰岛素分泌作用最强的肠肽类激素，它通过与GLP-1受体(GLP-1R)结合发挥作用 1）GLP-1可通过刺激胰岛素分泌、抑制胰高血糖素分泌及胃排空来降低血糖 2）GLP-1还有减缓细胞凋亡，促进其再生的独特作用 3）GLP-1还能减慢胃排空速度，通过

2、作用下丘脑，抑制食欲,4,GLP-1结合GLP-1R后，激活细胞膜内环腺苷酸(cAMP)和丝裂原激活蛋白激酶(MAPK)通路 胰岛成熟细胞的GLP-1受体偶联Gs，活化腺苷酰环化酶，产生cAMP，后者与葡萄糖协同刺激胰岛素合成和分泌，刺激胰岛素基因转录和胰岛素原生物合成，可降低胰高血糖素浓度并抑制胰高血糖素分泌，增强细胞对胰岛素的敏感性，刺激胰岛素依赖性糖原合成，降低餐后血糖浓度,5,报告基因检测原理,6,试验原理,采用直接竞争ELISA方法，在酶标板微孔条上预包被cAMP特异性抗体，样品中cAMP将和标准HRP-cAMP竞争结合微孔条上cAMP特异性抗体，用TMB底物显色，吸光值与样品中cA

3、MP的含量成负相关。 以吸光值为纵坐标，样品浓度为横坐标，按四参数法回归拟合对照品和供试品的量效曲线，得出半效量浓度，求得供试品相对生物活性,7,操作程序,1、取微孔板条，加入cAMP特异性抗体，50ul/孔，室温1 h; 2、洗涤后，向不同孔中分别cAMP、对照或细胞裂解上清品（样品），100ul/孔； 3、向孔中加入HRP-cAMP，50 ul/孔，室温作用2h； 4、洗涤后，向孔中加入TMB溶液， 200 ul/孔，室温作用30min； 5、向孔中加入终止液，100 ul/孔，测定OD450nm/570nm,8,数据与结果,1. 标准曲线的绘制： （1）测定各浓度梯度下各孔对照品和供试品

4、相应的吸光值，并分别计算平均值； （2）以吸光值为纵坐标，样品浓度为横坐标，按四参数法回归拟合对照品和供试品的量效曲线，得出半效量浓度； 对照品EC50；测试样EC50 2. 数据处理： 供试品相对生物活性（%）=对照品EC50/供试品EC50100% 其中：对照品和供试品的EC50分别表示对照品和测试样的半效量的浓度。四参数方程中的C值即相当于半效量的浓度(EC50,9,典型的测定结果及回归曲线,10,11,二、宿主蛋白（HCP）残留检测,CygnusF550CHOHCPELISAKit,12,宿主细胞蛋白污染物,CHO宿主蛋白残留 E-coli宿主蛋白残留 酵母菌宿主蛋白残留 HEK293

5、宿主蛋白残留,13,2D分离CHO、酵母、大肠杆菌等细胞系的全蛋白谱 将2D Gel上的全蛋白转移至膜上，用多克隆抗体孵育后进行Western Blot化学发光检测，以确认多克隆抗体能够与哪些宿主细胞蛋白结合 通过Western Blot检测结果（多抗能检测到的HCP数量）与2D膜上检测结果（总HCP数量）的比较，得出用于评价检测的多克隆抗体特异性及适用性的Match Rate,评估HCP定量用多克隆抗体的特异性,14,15,试验原理,采用双位点酶联免疫检测法，在酶标板微孔条上预包被抗CHO CHP多抗，免疫反应构成为夹层式结构：固相抗体-HCP-酶标记抗体。反应结束后清洗酶标板去除未结合反应

6、物，添加TMB底物显色，吸光值与样品中CHO宿主蛋白的含量成正相关,16,检测步骤,1）于每个反应孔中，加入100 L抗CHO HCP多抗-HRP； （2）从标准蛋白液、对照和样品中吸取50 L 上清加入到已标记好的反应孔中；180rpm下室温、振荡培养2h； （3）弃去孔内溶液，每孔加350 L 洗涤液，重复洗涤4次； （4）于每个反应孔中，加入100 L TMB底物溶液，于室温孵育30min； （5）于每个反应孔中，加入100 L终止液；依序读取OD450/650 nm吸收值(空白对照孔调零)。 （6）数据处理：根据测定每孔标准液吸光值绘制四参数逻辑曲线，然后根据样品吸光值计算出样品中HC

7、P浓度,17,18,19,20,21,22,ELISA法研究药物作用靶点（GPb/a受体,实验原理 根据ELISA实验原理，先在96孔板上包被纤维蛋白原，然后同时加入GPIIb/IIIa受体和待测样品，再加酶标抗体与GPIIb/IIIa受体结合，最后加入底物，酶作用于底物显色，在405nm测得OD值，OD值与GPIIb/IIIa受体量成正比。如果样品与GPIIb/IIIa 受体结合，就会降低纤维蛋白原与受体的结合，导致所测的OD值降低,23,实验步骤： 首先将纤维蛋白原（10 g/ml）用buffer A（0.1 M Na2CO3, PH 9.5）包被于96孔板上（100 l/well）（空白

8、对照: 不包被纤维蛋白原），4C孵育过夜； TACTS（0.02M Tris- HCl, PH 7.5，0.15M NaCl，1mM CaCl2,0.02% NaN3,0.05% Tween 20）冲洗一次，每孔200l，3min；用含1% BSA 的TACTS 在37C封闭1h（200 l/well）,TACTS洗三次； 整合素IIb3（20 g/ml、50 L/well）加一定浓度的待测样品50 l作为样品组；加孵育液做阴性对照组；37C下孵育2h； TACTS 洗三次；加一抗（鼠抗人CD61抗体，含0.5%BSA ,TACTS稀释，1:2000(体积比)，100L /孔）37C下孵育1h

9、,24,TACTS 洗三次；加二抗（碱性磷酸酶标记的山羊抗鼠IgG，含0.5%BSA ,TACTS稀释，1:1000，100L /孔），37C下孵育1h； TACTS洗三次，加底物（对硝基苯磷酸二钠溶液(PNPP)1mg/ml，用buffer B溶解，200L/well），37下孵育30min；加入50L 3M NaOH(称0.6g加5ml蒸馏水)终止反应；5min内405nm波长下检测吸光度,25,数据处理 通过以下公式计算抑制率：(XY)/(X-Z)100%。X代表生理盐水组OD值；Y代表样品组OD值；Z代表空白对照组OD值。实验结果都用均数标准差（ s）表示，采用t检验进行单因素方差分析

10、。p0.05界定为具有统计学意义，所有数据处理均使用GraphPad Prism 6软件(GraphPad Software，美国,26,溶液配制及注意事项（60 well大概用量） 1. buffer A：0.1M Na2CO3 50ml：取固体0.53g溶液50ml蒸馏水中，调PH 9.5. 2. TACTS洗脱液（需300ml）：定容100ml，pH 7.5， Tris-HCl：0.2423g；NaCl：0.8766g；NaN3：200L；Tween 20:50L；CaCl2:0.0222g。 孵育液（50ml）：TACTS加0.5%BSA 封闭液（20ml）：TACTS加1%BSA 3

11、. 受体b3（4ml）：配制1.63mg/ml母液,受体使用的终浓度为20g/ml。 4. 一抗（8ml）：1:2000；二抗（8ml）：1:1000 5. 样品配制：不溶的样品加DMSO全溶，终浓度不超0.5% 6. 受体，抗体，样品均用孵育液稀释,27,7. buffer B（底物缓冲液）：定容100ml，PH 9.5, 二乙醇胺：105l；MgCl2：10.175mg 8. PNPP对光敏感，现配现用，用buffer B溶解 9. 配制的纤维蛋白原浓度越高储存越稳定，37水浴锅加热包被液溶解，储存Fg1mg/ml时较稳定,28,三、卡那霉素残留检测,卡那霉素检测试剂盒,29,2015年版

12、药典凡例十六：（3）生产过程中，应尽可能避免使用抗生素，必须使用时，应选择安全性风险相对较低抗生素，使用抗生素种类不得超过1种，且产品后继工艺应保证可有效去除制品中抗生素，去除工艺应该验证。 （4）生产过程中使用抗生素时，成品鉴定中应检测抗生素残留量，并规定残留量限制。上述的生产过程包括种子培养活化，发酵，纯化等所有的步骤，所以种子活化阶段是算在生产过程中的,30,试验原理,采用间接竞争ELISA方法，在酶标板微孔条上预包被偶联抗原，样本中残留的卡那霉素将和微孔条上预包被的偶联抗原竞争抗卡那霉素抗体，加入酶标二抗后，用TMB底物显色，样本吸光值与残留物卡那霉素的含量成负相关，与标准曲线比较再乘

13、以其对应的稀释倍数，即可得出样品中卡那霉素的含量,31,操作步骤,1、将所需试剂从冷藏环境中取出，置于室温(20-25)平衡30min以上，注意每种液体试剂使用前均须摇匀。 2、取出需要数量的微孔板，将不用的微孔板放入自封袋，保存于2-8。 3、洗涤工作液在使用前也需回温。 4、编号：将样本和标准品对应微孔按序编号，每个样本和标准品做2孔平行，并记录标准孔和样本孔所在的位置,32,5、加标准品/样本：加入标准品/样本20ml 到对应的微孔中，加入酶标二抗50ml/孔，再加入抗体工作液80ml/孔，轻轻振荡混匀，用盖板膜盖板后置25避光环境中反应40min。 6、洗板：小心揭开盖板膜，将孔内液体

14、甩干，用洗涤工作液250ml/孔，充分洗涤45次，每次间隔10s，用吸水纸拍干。 7、显色：加入底物液A液50ml/孔，再加底物液B液50ml/孔，轻轻振荡混匀，用盖板膜盖板后置25避光环境中避光反应15min。 8、测定：加入终止液50ml/孔，轻轻振荡混匀，设定酶标仪于450nm处（建议用双波长450/630nm检测，在5min内读完数据），测定每孔OD值,33,定量分析,1）百分吸光率的计算 标准品或样本的百分吸光率等于标准品或样本的百分吸光度值的平均值（双孔）除以第一个标准（0标准）的吸光度值，再乘以100%，即 百分吸光度值（%）B/B0100% B标准溶液或样本溶液的平均吸光度值

15、B00ppb标准溶液的平均吸光度值 （2）标准曲线的绘制与计算 以标准品百分吸光率为纵坐标，以卡那霉素标准品浓度（ppb）的半对数为横坐标，绘制标准曲线图。将样本的百分吸光率代入标准曲线中，从标准曲线上读出样本所对应的浓度，乘以其对应的稀释倍数即为样本中卡那霉素实际残留量,34,卡那霉素测定方法验证,检测方法和标准曲线,竞争ELISA法测定药盒卡那霉素标准品,35,卡那霉素在样品溶液中的回收率,卡那霉素在样品稀释液中的回收率(n=6,36,精密度试验,卡那霉素稀释样本竞争ELISA法分析精密度试验结果(n=6,37,四、人胰岛素原残留检测,Mercodia Proinsulin ELISA k

16、it,38,目前重组人胰岛素生产主要以E.coli表达人胰岛素原，初步纯化后变复性，经胰蛋白酶(trypsin)和羧肽酶B(carboxypeptidase B)协同酶切，去掉前导肽和C-肽，形成有活性的胰岛素，并进一步纯化精制而成。 上述工艺制备所得人胰岛素产品中可能残留人胰岛素原、C-肽等人胰岛素相关杂质，其残留的存在可能影响人胰岛素的药效,39,Insulin conversion formation process and structure diagram,40,试验原理,采用双单抗夹心ELISA法，在酶标板微孔条上预包被抗胰岛素原C-肽特异性抗体，样品中胰岛素原结合微孔条上的特异性抗体，然后加入HRP标记的抗胰岛素特异性抗体，用TMB底物显色，吸光值与样品中胰岛素原的含量成正相关,41,操作步骤,1、加样：加待检样品，100 l/孔，37 2 h，同上洗涤； 2、加酶标抗体：酶标抗体稀释液稀释HRP-13A4至工作浓度，100 l/孔，37 1h，同上洗涤； 3、显色和中止反应：加新鲜配制的底物100l/孔，37避光作用20 min；加中止液50l/孔终止反应，测定每孔OD450/630nm值。 4、数据处理：以标准品浓度的对数lo