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文档简介
1、检验日期: 检验项目:HBV-DNA扩增仪中保存文件名 临床PCR佥验流程记录表 使用说明:严格按单一流向进行实验,即试剂准备区-标本制备区-扩增区,严禁逆向移动。本记录表的流向亦遵循此流程;各项 工作执行后在相应项目前的方框内打“V”;本记录表最后归档保存在 PCR实验室扩增区的专用文件夹中,以备查找。 实验前准备 试剂在有效期内扩增仪、加样器、金属浴、温湿度计等仪器在校准有效期内(校准之日起1年) 生物安全柜的滤膜在使用有效期内离心管、带滤芯吸头已经过质检合格 各区按消毒液配制 SOP配制500mg/L含氯消毒液、2000mg/L含氯消毒液和70%酒精,即用即配。 打开通风设备 操作者 试
2、剂准备区 实验前:更换专用工作服、戴口罩、帽子、鞋套实验台面清洁(500mg/L含氯消毒液、70%酒精或水擦拭) 冰箱温度:冷藏室(28C)C; 冷冻室(-20 2C)C 实验室温度C (允许范围:1530C);相对湿度:(允许范围:30%70%) PCR试剂来源:试剂厂家:口 深圳匹基生物工程有限公司批号: 检验项目:HBV-DNA 本次实验用量:人份;剩余量:人份 其他有关试剂配制: 仪器设备使用: 离心机:正常不正常;振荡器:正常 不正常; 生物安全柜:口正常 口不正常 实验后:口按实验室清洁消毒 SOP清洁实验室台面、地面、加样器和离心机,并进行紫外线照射30分钟以上。 按实验室废弃物
3、处理 SOP处理实验废弃物。 操作者 检验日期: 检验项目:HBV-DNA 样本处理区 实验前:更换专用工作服、戴口罩、帽子、鞋套实验台面清洁(500mg/L含氯消毒液、70%酒精或水擦拭) 冰箱温度:冷藏室(28C) C; 冷冻室(-20 2 C) C 实验室温度 C (允许范围:1530C);相对湿度: (允许范围:30%70%) HBV-DNA阳性室内质控物来源: 浓度及批号: 扩增位置: HBV-DNA阴性室内质控物来源: 批号: 扩增位置: 所处理的HBV-DNA标本(对应标本接收的唯一编号)及拟扩增位置: 核酸提取及加样过程:按乙型肝炎病毒 DNA荧光定量PCR操作程序SOP进行。
4、 仪器设备使用:生物安全柜:正常 不正常;恒温金属浴:C; 离心机:正常 不正常;振荡器:正常 不正常; 低温离心机:制冷:正常不正常; 离心:正常不正常 实验后: 口按实验室清洁消毒 SOP清洁实验室台面、地面、加样器和离心机,并进行紫外线照射30分钟以上。 按实验室废弃物处理 SOP处理实验废弃物。 口使用后标本冷冻保存 3个月,以备复查。 操作者 扩增及产物分析区 实验前:更换专用工作服、戴口罩、帽子、鞋套实验台面清洁(500mg/L含氯消毒液、70%酒精或水擦拭) 实验室温度 C (允许范围:1530C);相对湿度: (允许范围:30%70%) LightCycler扩增仪操作:开机自
5、检及运行正常;按LightCycler操作使用SOP进行编程、参数设定 HBV-DNA 标准曲线计算值:Slope 值: Intercept 值: r2 值: 室内质控结果:阴性质控物结果: ;阳性质控物结果: 口填写室内质控记录、质控图;是否失控:口否 口是 室内质控结果: 阴性质控物结果: ;阳性质控物结果: 口填写室内质控记录、质控图;是否失控:口否 口是 失控原因及分析:(失控判断标准及原因分析按室内质控SOP进行) 实验结果:见所附扩增仪打印结果 实验结果有效性判断:有效 无效(依据实验结果有效性判断SOP进行) 实验后: 口按实验室清洁消毒 SOP清洁实验室台面、地面、加样器和离心
6、机,并进行紫外线照射30分钟以上。 按实验室废弃物处理 SOP处理实验废弃物。 操作者 1. 操作步骤: 1.2.1取n个的灭菌离心管,作好标记。(n二样本数+1管HCV阴性对照+1管HCV强阳性 对照+1管HCV临界阳性对照) 1.2.2 向上述离心管中分别加入 25ul 蛋白酶溶液。 123分别加入待测样本、HCV阴性对照、HCV临界阳性对照和HCV强阳性对照各200ul. 124加入200ul新鲜配制的裂解液工作液,盖上盖子,振荡15秒,充分混匀。(注意: 不要把蛋白酶溶液直接加入裂解液工作液中) 。 1.2.5 56 摄氏度温浴 15 分钟。瞬时离心,以去除管盖上的滴液。 1.2.6
7、加入 250ul 无水乙醇,盖上盖子,彻底混匀(振荡 15秒) 。在室温下静置 5分钟 ( 15-25 摄氏度)。注意:如果环境温度超过 25 摄氏度,无水乙醇需预冷。瞬时离 心,以去除管盖上的滴液。 1.2.7将n个核酸提取柱放入收集管中,小心地将步骤1.2.6中的液体移入核酸提取柱中。 盖上盖子, 6000*g 离心 1 分钟。倒掉收集管中的废液,将提取柱重新放入收集管 中。(如果离心后核酸提取柱中仍有部分液体,以更高的速度再次离心,确保提取 柱中无残余的液体) 1.2.8小心的打开核酸提取柱的盖子,加入500ul洗液1,盖上盖子,6000*g离心1分钟, 倒掉收集管中的废液,将提取柱重新
8、放入收集管中。 1.2.9 小心的打开核酸提取柱的盖子, 加入 500ul 洗液 2,盖上盖子, 6000*g 离心 1 分钟, 倒掉收集管中的废液,将提取柱重新放入收集管中。 1.2.10 小心的打开核酸提取柱的盖子,加入 500ul 无水乙醇,盖上盖子, 6000*g 离心 1 分钟,丢弃收集管,将提取柱放入新的收集管中。 1.2.11 20000*g高速离心3分钟,彻底去除乙醇。 1.2.12 丢弃收集管,将核酸提取柱放入干净的离心管中,打开提取柱的盖子, 56摄氏度温浴3分钟,以彻底去除残余的液体。 将核酸提取柱放入另一干净的离心管中,小心打开提取柱的盖子,加入60ul洗脱液(请 将洗
9、脱液加到膜的中央),盖上盖子,室温静置5分钟。20000*g高速离心1分钟收 集滤出液,做好标记,4摄氏度保存备用。提取的病毒核酸应在 2小时内用于PCR 扩增,或在-70摄氏度下可以保存一个月 2. 扩增试剂准备(PCR前准备区) 从试剂盒中取出HCV RT-PC反应液、Enzyme Mix,在室温下融化后,2000*g离心5 秒。设所需要的PCR反应管数(玻璃毛细管)为n (n二样本数+1管空白对照+1管HCV 阴性对照+1管HCV强阳性对照+1管HCV临界阳性对照+4管HCV定量标准品),每个 测试反应体系配制如下表: 试剂 HCV RT-PC反 应液 En zyme Mix 用量 n
10、*13ul n *2ul 计算好各试剂的使用量,加入到一适当体积试管中,充分混匀均匀后2000*g离心10 秒,向各玻璃毛细管中分装15ul,转移至样本处理区。 3. 加样(样本处理区) 吸取10ul样本处理步骤1.2.13中收集得到的RNA溶液及HCV定量标准品分别加入到 上述反应管中(空白对照直接加入 10ul洗脱液),盖紧反应管管盖,连同Roche专用 金属反应管套放在离心机中,于2000*g离心10秒,将毛细管转移到检测区。将毛细 管排放好放入荧光PCR检测仪内,记录样本摆放顺序。 4. RT-PCRz应(检测区) 循环条件设置 Program Cycles Temperature I
11、n cubati on Temperature Acquisitio Anal 摄氏度 Time(mi n:sec) Tran siti on n ysis Rate( 摄氏度/sec) Mode Mod e 1 1 50 30:00 20 None Non e 2 1 95 15:00 20 None Non e 3 45 95 00:05 20 None Qua n tific ati on 50 00:30 20 Si ngle 72 00:20 10 None 反应体系为25ul.具体设置方法请参照各仪器使用说明书 4.2仪器检测通道选择 选择F1检测通道:HCV内对照(IC)选择F2
12、检测通道。 4.3样本的设定 在扩增开始前条件设定时,将 HCV定量标准品设为“ Standard”并输入试剂盒内给 定浓度值,待检样本和对照品设定为“ Unknown ”。 结果分析条件设定 1. 对HCV的曲线和HCV内对照(IC)的曲线进行分别分析。 2. 分析方式选择Fit Points,基线调整选择 Arithmetic,阈值(threshold )设定原则以阈 值线刚好超过正常HCV阴性对照曲线的最高点,且正常 HCV阴性对照病毒滴度为 ml为准。具体设置方法请参照各仪器使用说明书。 质控标准 1. 将HCV定量标准品1-4的浓度值输入,仪器将自动以HCV定量标准品的浓度值为横坐
13、标,以其实际测得的外标Ct值为纵坐标给出标准曲线,标准曲线的拟和度绝对值应大 于等于,四个HCV定量标准品的Ct值都应v,否则视为定量结果无效。 2. HCV阴性对照、空白对照HCV RNA应为ml; HCV强阳性对照HCV RNA应为+07IU/ml ; HCV临界阳性对照应为+05 IU/ml ;且HCV阴性对照、HCV临界阳性对照中HCV内对 照(IC)的Ct值都应小于等于33,否则此次实验视为无效。所有实验从样本处理开始 重做。 结果判断 1. 检测样本中+03 IU/ml小于等于HCV RNA小于等于+07 IU/ml,测定结果有效,可直接 报告相应的浓度值。 2. 检测样本中HCV RNA大于+07 IU/ml,可按实际测得值报告相应的病毒滴度,亦可将 该样本用正常人血浆按 10倍梯度稀释到本试剂盒定量检测线性范围内后重新测定, 测定结果应以稀释倍数进行校正。 3. 检测样本中ml小于HCV RNA小于+03 IU/ml,且HCV内对照(IC)的Ct
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