细胞工程试验报告

1、细胞工程实验报告专业一、实验目的1、了解动物细胞培养的相关实验器材以及实验前器材的清洗与消毒、无菌室灭菌与 消毒等基本方法，以建立起无菌操作的概念。2、了解和掌握动物细胞原代培养的基本方法，熟悉组织块法和消化法培养的基本操 作过程。初步掌握无菌操作技术。3、学习与了解细胞超低温冻存于复苏的基本原理，初步掌握培养细胞常规超低温冻 存于复苏以及玻璃化超低温冻存于复苏的方法。_ II4、 掌握ELISA测定抗体效价的方法，细胞的超低温冻存和复苏，及MTT法测定细胞 活性的方法。5、学习和掌握制备饲养层细胞的方法，为杂交瘤细胞的制备做准备。6、学习从脾脏组织制备免疫细胞的方法，从免疫脾脏中制备免疫细胞

2、悬液，用于杂 交瘤细胞的融合。7、学习和掌握动物细胞融合的基本方法，通过免疫脾细胞与骨髓瘤细胞融合制备杂 If )交瘤细胞，并进行选择。&学会细胞形态的观察和分析，细胞技术等细胞培养中常见的问题。二、实验原理1、原代培养原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织或器官，经体外培养后直 到第一次传代为止。原代培养首先用无菌操作的方法，从动物体内取出所需的组织 或器官，切成一定大小的组织块，直接或经消化分散成单个游离的细胞，在人工培 养条件下，使其不断地生长、繁殖。2、细胞活性测定一一MTT法MTT法是利用细胞线粒体呼吸链上的琥珀酸脱氢酶四氮唑蓝还原成难溶的蓝紫色 结晶一一甲瓒，经二甲

3、基亚砜（DMSO溶解后，在490nm处测吸收值，其吸收值可 间接反映细胞的活性状态及活细胞数量。3、培养细胞的超低温冻存于复苏为了保持细胞株（系）遗传的稳定性以及非连续使用细胞的长期保存，建 立了细胞超低温冻存于复苏技术。目前细胞超低温冻存技术主要有两种方法，即常 规超低温冻存和玻璃化超低温冻存。活细胞在超低温下克服了分子间的热运动，因而可长期保存而不影响活力。在 不加任何条件下直接冻存细胞时，细胞内和外环境中的水都会形成冰晶，能导致细 胞内发生机械损伤、电解质升高、渗透压改变、脱水、PH改变、蛋白变性等，能引'I X 1 I '起细胞死亡。如向培养液加入保护剂，可使冰点降低。

4、在缓慢的冻结条件下，能使厂 声细胞内水份在冻结前透出细胞。贮存在一 130C以下的低温中能减少冰晶的形成。4、饲养层细胞的制备'7 c i ；在体外培养细胞实验中，对于难养的细胞或者数量较少的细胞，常常需要预先在,-jI'培养瓶或培养板底部加入一些活的原代细胞或者静息的肿瘤细胞以辅助目的细胞的 生长，这就是饲养层细胞。它可能在饲养细胞的生长过程中会释放一些细胞生长刺 激因子或提供细胞接触的信号。5、免疫脾细胞的制备小鼠经抗原多次免疫后，可从脾脏组织细胞分裂和分化出较多能分泌相应抗体的 B淋巴细胞，脾脏内细胞连接不紧密可通过机械分离和过滤网筛选，将这些细胞制备成游离的单个细胞悬液

5、。6、杂交瘤细胞的制备（细胞融合）通过对免疫动物B细胞和某一个永久细胞系进行融合，杂交后代称之为杂交瘤。杂交瘤细胞可以将分泌特异性抗体 B细胞的遗传特性和骨髓瘤细胞系体外增殖的遗传特性合二为一。一种淋巴细胞克隆只产生一种特异性抗体；细胞融合技术产生的杂交瘤细胞可以保持亲代双方的特性；杂交瘤细胞的筛选，体外培养大量增殖，获得所需抗体。7、ELISA检测使抗原或抗体结合到某种固相载体表面， 并保持其免疫活性。使抗原或抗体与某种酶连接成酶 标抗原或抗体，这种酶标抗原或抗体既保留其免疫活性，又保留酶的活性。在测定时，把受检标本（测定其中的抗体或抗原）和酶标抗原或抗体按不同的步骤与固相载体表面的抗原或抗

6、体起反应。 用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与其他物质分开，最后结合在固相载体上的酶量与标本中受检物质的量成一定的比例。 加入酶反应的底物后，底物被酶催化变为有色产物，产物的 量与标本中受检物质的量直接相关， 故可根据颜色反应的深浅刊物定性或定量分析。 由于酶的催化 频率很高，故可极大地地放大反应效果，从而使测定方法达到很高的敏感度。三、实验内容1、动物细胞培养技术2、杂交瘤技术与单克隆抗体制备3、细胞工程相关技术1）动物细胞培养实验器材的准备无菌室：首次启用的无菌室一般可采用福尔马林熏蒸（56m2无菌室用KMnO4 50g I 厂/.气倒入100ml甲醛（用搪瓷盘），冒浓烟，24

7、hr，氨水中和至无甲醛味），经常使用的无菌室在每次实验前必须开启紫外灯照射 0.5至l小时，然后避光0.5至l小时后 方可进入操作。培养器材的消毒：干热灭菌法：玻璃器皿、金属器具等的消毒方法，140150C，23小时；湿热灭菌法：橡胶制品、无菌衣、帽和口罩以及除菌过滤器的清毒，高压蒸 汽灭菌15磅2030分钟；紫外线照射灭菌：多孔培养板的灭菌- 30分钟。抽滤除 菌：培养基等（培养基通过 0.22过滤装置除菌）2）杂交瘤技术与单克隆抗体制备1、小鼠的免疫方法：脾脏直接注射：一般免疫后 34天即可制备抗体。?其它途径注射：一般采用间隔免疫的方法，分3次，间隔23周进行免疫。步骤：取绵羊静脉血0.

8、2mL （加肝素或枸橼酸钠抗凝）? 用0.9 % NaCI或PBS 1000 1500rpm离心5分钟涤洗3次，收集血细胞。?血球计数板计数，用0.9 %NaCI或PBS调整细胞浓度至4X 107个/ml （10个/小格）。?向小鼠腹腔注射血细胞悬液0.5ml。每隔15天重复注射作加强免疫，共重复 2次，第2次加强免疫后10天，检测血清效价，若血清效价低则要继续免疫。?小鼠处死前23天加强免疫1次，以活化B淋巴细胞。注：细胞计数：一个大方格被分成 16个中方格。每一个大方格边长为1mm盖上盖j-J 玻片后，载玻片与盖玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积为 0.1mm3 个大方格被分成1

9、6个中方格。每一个大方格边长为1mm盖上盖玻片后，载玻片与盖7丁 玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积为 0.1mm3细胞浓度（个/ml）二细胞,-jI'数/体积即：细胞浓度（个/ml ）= 一个大格的细胞数x 104。打入的免疫红细胞数要 在一定范围内，细胞数量太多会免疫耐受；太少得到的免疫细胞数少。2、小鼠血清的制备取五只没有免疫过的小鼠-每只小鼠眼球取血0.5mL以上于1mLEP管中-小鼠短颈处死后，放于装有75%酒精的烧杯中消毒灭菌，带入无菌室备用一一取出血清放于37C水浴保温 30min 2000转离心10min 取上清于干净的离心管中，作为ELISA的阴性对照取五只

10、免疫过的小鼠一一同上操作一一取血清作为ELISA的阳性对照3、单克隆抗体的制备流程4、骨髓瘤细胞的培养1、选择生长旺盛，形态良好的细胞?2、将上清倒入离心管内，剩余贴壁的细胞用0.02 % EDTA消化液消化细胞5分钟后倒入同一离心管，10001500rpm离心5分钟，收集细胞。?3、加6mL含10%小牛血清的DME培养液悬浮细胞，分装于两个细胞培养瓶，5%CO2培养箱37 C培养。5、饲养层细胞的制备1、每组1只小鼠，断颈处死后浸泡在 75%乙醇消毒5分钟。? 2、在无菌室内小心剪开小鼠腹部皮肤，暴露腹腔，用注射器腹腔注射34ml 1640培养液，按摩片刻。' | X 1 CX i&

11、#39;?3、左手用镊子夹起腹腔肌肉，右手用剪刀剪开一个小口，小心用吸管吸出腹腔液厂.丿丿体于离心管。? 4、低速离心洗涤细胞一次后，用1215ml 1640培养液悬浮细胞（5X104），取'7 ci100200 ?1滴96孔板（一般用吸管滴23滴）。,-jI'5、免疫脾细胞的制备1. 将免疫过并取完血清后的浸泡在 75%乙醇中的小鼠带入无菌室。2. 小心剪开腹腔，取出脾脏。3. 用一次性注射器将脾脏刺几个洞，再吸 34mLPB液吹打脾脏。4. 收集吹打的细胞悬液，经低速离心洗涤后将细胞悬浮在培养液。6、杂交瘤细胞的制备（细胞融合）1. 将骨髓瘤细胞（2 X 107）与脾细胞按

12、1:10的比例混合，低速离心后弃上清，用手指弹匀细胞。2将1mL5%的PEG在 1分钟内缓缓加到混合的细胞内，注意边滴加 PEGi摇动离心管。3. PEG作用1分钟后，迅速滴加培养液终止 PEG乍用，低速离心洗涤细胞。4. 用10mLDEM培养液悬浮融合细胞，按每孔 3滴的量滴加到含滋养层的96孔板 内，置37C 5%CO2培养箱中培养。（注：因为实验时间有限，我们只是操练单克隆抗体的制备方法和过程，并没有 制备到单克隆抗体，但是单克隆抗体的制备过程和操作注意事项已经基本了 解。） 3）原代细胞的培养组织块法培养小鼠肝脏组织：厂 I;1. 取出肝脏，经PBS漂洗三次后，放在表面皿中。'

13、I X 1，X L'2. 在表面皿中，用滴管加入少量 PBS（RPMI1640含20%小牛血清，0.2%白蛋白，厂 10ug/ml胰岛素，100U青霉素和链霉素）用锋利的剪刀将组织块剪成约1mrm的小块。3. 用弯头镊子将组织小块移入细胞瓶中，把它们排列成行，每块组织相距约,-jIX：0.5cm，每瓶细胞贴2030小块，随即翻转细胞瓶，使贴组织块的一面朝上， 然后加培养液3ml。4. 将细胞瓶置于37C, 5%CO2培养箱中静置24小时，然后将瓶轻轻翻转， 使组织块浸入培养液中，继续静止培养。5. 72小时后在显微镜下检查，若见细胞自组织边缘长出，则继续培养3-5日，再换部分或全部培养

14、液，待多数组织块的生长晕相接时，可进行传代培养。肝细胞培养的实验结果：?若培养液显为淡黄且清澈，一般显示细胞生长良好。?培养3 5日，在相差显微镜下观察，若见细胞自组织边缘长出，更换部分或全部培养液，待多数组织块的生长晕相接，小心挑掉组织块，继续培养34天?7天左右后，生长晕扩大到直径为 15mm左右小鼠肝脏细胞原代培养的生长晕是 多角形上皮样细胞与梭形细胞混合的细胞群体。?2448小时后若培养液变成黄色且混浊，表示已被污染；?若培养液变成紫色，一般细胞生长不好，则培养液pH过高；消化法培养小鼠肾细胞：1、将消毒过的小鼠，剖腹取出肾脏于放有PBS的培养皿中洗涤。2、尽量剪碎肾脏。3、用PBS洗

15、涤23次。 1 X 1iz >'4、1 . vrx加入 5 mL胰酶,37C( 30min)。j- _5、过筛，1 0 0 0转离心10 min,用PBS洗涤23次。6、加培养液，计数至35X 105/MI.（1.5 个每中格）。7、细胞悬液装瓶3mL放于CO2培养箱培养。4）抗体IgG ELISA检测1. 取0.2ml绵羊红细胞，加 6ml PBS lOOOrpm离心10min洗涤，重复一次。2. 取下层红细胞，力口 1.2ml 磷酸盐缓冲液（Na2HPO45mmol/LNaH2PO45mmol/LH7.6） （低渗）混匀后，常温处理 2025min, 4C 120001300

16、0 rpm离心15min,去上清，重复一次。3. 取乳白色沉淀（血影）用包被液稀释至后，按50g （老师制备）加入96孔酶标板内，放于湿盒4C冰箱过夜，备用。4. 吸去孔中的抗原液（自制吸头，这样冲击力会小，不会使包被的抗原脱落），用洗 涤液洗涤3次（将洗涤液沿孔壁注入200?L/孔，放置3分钟，甩去洗涤液，重新注 入），加封闭液（含1%牛血清白蛋白的洗涤液）200?L/孔，封闭30min。5. 甩去封闭液，用洗涤液3次。6. 待测抗体作1:500、1:1000、1:2500、1:5000稀释后，按每孔100uL加入，置湿 盒内于37C作用1小时。同时设阴性、阳性、空白对照（调零孔）。7. 用

17、洗涤液3次。8. 每孔加适当稀释的酶标兔抗鼠IgG试剂100uL,置湿盒内37C作用1小时。9. 用洗涤液3次。10. 每孔加入100uL新配制的底物溶液（TMB，暗处室温作用5-10分钟。11. 每孔加100 uL2MHSQ终止反应，检测。12. 用酶联免疫检测仪测定 QD450nm光吸收值，若试验孔的光吸收值比阴性孔的光吸 I X 1 CX i'收值大于或等于2.1，可判定为阳性。厂 .'X（注：TMB,2MHSQ操作时要带手套，TMB中有过氧化氢对皮肤有腐蚀作用。酶标板 在操作过程中不能用手接触其底部，会影响折光率，在测吸光值时板底的水要擦干。） 5）细胞的超低温冻存与复

18、苏,-j I" f'?1.小鼠断颈处死后，分别取肾脏（剪碎）、脾脏（注射器吹打）细胞，10001500rpm 离心5min,收集细胞。?2.用1640培养液悬浮细胞，计数，调整细胞密度至5X1062 X107个/ml，分装成3管，每管0.8ml，经以下处理后-196 C （液氮）冻存过夜。分组：A组：直接冻存；B组：细胞悬浮在10% DMSQ-164培养液中冻存；C组：细胞先经10%浓度的玻璃化保护剂处理（PVS2, 4C过渡5min,然后4 ClOOOrpm离心10min,弃上清，再用100% PVS2保护剂，4 C过渡5min后冻存；（注：为了 MTT法测定细胞活性比较三

19、种方法时减小误差，按 C组平行离心AB组。 3、MTT法测定细胞活性1.从液氮中取出冻存管，直接投入 3740C的水浴中，并不时摇动，使其快速（1分钟之内）融化。2. 转移到1.5ml离心管后，加0.5ml 1640培养液，1500rpm离心5min,弃上 清，收集细胞。3. 用0.5ml 1640培养液悬浮细胞后，再加 80uL MTT反应液，37C水浴中培 养3小时。4.15002000rpm离心5min,弃上清，收集细胞；再用 800uL DMS（溶解细胞， 按每孔200uL的量转移至96孔酶标板内，室温放置10分钟，并不时摇动， I X 1 CX i z ./'以溶解细胞。j-

20、J 5. 无细胞组为调零孔。选择 570nm波长，在酶联免疫检测仪上测定 MTT反应 孔的光吸收值（OD570 ,6. 比较不同处理方法，细胞的存活情况。,-jI/四、实验结果及分析2- -1、细胞培养观察：培养液显为淡黄且清澈，无污染现象；细胞呈球状，密集2、 细胞的超低温冻存与复苏后活性检测：ODT2，3，4，10.0000.1060.1090.08720.0880.0890.06630.1010.1070.08540.0980.1120.07850.0840.0660.07360.0710.0760.06870.0610.0640.06380.1060.1260.095T -1 ：调零孔

21、2 -1、2、3、4:肾细胞直接冻存3 -1、2、3、4:肾细胞加 10%DMSO存4 -1、2、3、4:肾细胞玻璃化冻存2 -5、6、7、8:脾细胞直接冻存3 -5、6、7、8:脾细胞加 10%DMSO存4 -5、6、7、8:脾细胞加玻璃化冻存就结果而言：加10%DMS冻存的细胞存活率最高，而理论上是玻璃化冻存的细胞存 活率最高。、 从液氮中取出时玻璃化冻存也结成冰晶，与理论不符，实验存在问题。 zz 厂丿I I 'j我们小组将两只小鼠的细胞混在一起，细胞数增多，损伤也增多。3、ELISA检测:OD123456f7/89101112f10.000.160.120.040.020.20

22、0.130.060.0300834823420.000.150.120.040.020.190.130.050.0260647303830.010.160.140.050.030.180.120.070.0420265911940.000.160.130.040.010.190.120.040.0279107587850.040.120.080.020.020.180.090.040.0308762132060.160.120.080.020.020.150.090.030.0127772162770.180.130.090.020.010.160.090.040.0392575612780.

23、130.100.020.010.150.100.040.0450431 1 X 1 , *23271 1:调零孔1 '2、3、4、5 :阴性对照3'5、6、7、8:1:80 0 04'1、24:1:11 '6、7 :阳性对照6 0 0 02，-一 1、2、13、4:1:10 0 02 00 02-5、6、7、8:1:2 0 0 04 00 03，-一 1、2、3、4:1:4 0 0 02 8 0 0 04'5、65'1、25'5、67 >8:1:34:1:67、8:1:18'9'10 11 于2'3'

24、4'5 '相同加入底物溶液(TMB后，阳性孔呈蓝色，阴性孔无色；加入终止液后，阳性孔呈黄色，阴性孔无色。结果(0D ):阴性对照：0 .016251:1000:0.13475 (0.19625)1:2000:0.1305 (0.1625)1:4000:0.13175 (0.12775)1:8000:0.09525 (0.09575)1:16000:0.04575 (0.0585)1:32000:0.026 (0.0395)1:64000:0.02575 (0.04775)1:128000:0.018 (0.03275)i ' I X 1 i'1:1 0 0 0

25、/ 阴性对照：8.292 (12.077)j-J 1:2 0 0 0 / 阴性对照：8.031 (10.000)1:4 0 0 0 / 阴性对照：1 0.54 (7.862) i ；1:8 0 0 0 / 阴性对照：5.862 (5.892),-jI'1:1 6 0 0 0 / 阴性对照：2.815 (3.600)1:3 2 0 0 0 / 阴性对照：1.6(2.431)1:6 4 0 0 0 / 阴性对照：1.585 (2.938)1:1 2 8 0 0 0 / 阴性对照：1 .108(2.015)就结果而言：以2'3'4'5 '为准：1 :1 6 0

26、 0 0 /阴性对照>2.1，为阳性1:3 2 0 0 0 /阴性对照<2.1，为阴性则效价为1:16000以 8'9'10 11 为准：1:64 0 0 0 / 阴性对照>2.1,为阳性1:1 2 8 0 0 0 /阴性对照2.1，为阴性 则效价为1:64000实验时加液可能存在的误差或不准确，使液面有高低，影响折光率， 使实验数据不准确；实验时手碰到了酶标板底部，留有指纹等，影响折光率，使实验数据 不准确；测OD直时酶标板底部有水，影响折光率，使实验数据不准确五、实验要点及讨论1、酶联反应常见问题：1、显色步骤结束后，所有孔均无色，阳性对照不显色原因：错加

27、、漏加试剂底物、显色剂；洗板及加样过程中，酶标受污染失活，失去催化显色剂显色的能力；终止液误做洗涤液或底物溶液配制；蒸馏水有问题2 、所有孔均较淡原因：加入试剂的体积和时间有误，或移液器枪头不洁；洗板及加样过程中，酶标受污染失活，失去催化显色剂显色的能力；培养时间及温度为达到要求；洗板次数过多，或洗涤液不符合要求，洗涤冲击力太大，浸泡时间过久； 底物作用时间不够3、阴阳性对照正常，待测品未检出原因：样品高温放置过久，或反复冻溶致待测物浓度下降4、出现随机性的花板、跳板现象原因：样品离心不完全，反应孔内发生凝血或残留细胞成分；加样时交叉污染；手工洗板时造成交叉污染；5、假阳性原因：洗涤不充分，样

28、品中有其他成分残留；血清标本处理不当；加酶量过多；培养温度超37度，或酶结合物反应时间或底物显色超时； 底物或样品污染 -. I ;2、细胞超低温冻存于复苏的要点 I 1 CX i'1 ; vr,r1.冷冻速度厂一一_冷冻速度也就是降温的速度，它与冷冻效果直接相关。冷冻速度、细胞收缩引 起细胞膜和细胞器的变化是造成损伤的主要因素目。冷冻速度不同，细胞内水分向"Oc i细胞外流动的情况也会不同。如果冷冻速度过慢，细胞内水分外渗多，细胞脱水，,-jI'体积缩小，同时细胞内溶质浓度增高，细胞内不发生结冰；冷冻速度过快，细胞内 水分没有足够时间外渗，随着温度的下降，细胞内会发生结冰；如果冷冻速度非常 快，细胞内形成的冰晶反而非常小或不结冰而呈玻璃状凝固 （玻璃化冷冻）。不同细胞的最适冷冻速度不同，主要取决于水分渗透过程是否与降温速度相匹 配；同时还取决于细胞的表面积与体积之比，以及细胞膜的渗透率。一般来说。小 细胞（如红细胞等）对水通透性强，适用于快冻，最佳冷冻速率较高，可达103°C/min 或更高；相反大的细