westernblot详细图解

1、Western 免疫印迹(Western Blot)是将蛋白质转移到膜上，然后利用 抗体进行检测的方法。对已知表达 蛋白，可用相应抗体作为一抗进行 检测，对新基因的表达产物，可通 过融合部分的抗体检测。与 Southern或 Northern 杂交方法 类似，但 Western Blot采用的是聚 丙烯酰胺凝胶电泳，被检测物是蛋 白质，探针”是抗体，显色”用标记 的二抗。经过PAGE分离的蛋白质样品，转 移到固相载体(例如硝酸纤维素薄 膜)上，固相载体以非共价键形式 吸附蛋白质，且能保持电泳分离的 多肽类型及其生物学活性不变。以 固相载体上的蛋白质或多肽作为抗 原，与对应的抗体起免疫反应，再

2、与酶或同位素标记的第二抗体起反 应，经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异性目的基因表达的蛋白成分。该技术也广泛应用于检测蛋白水平的表达。实验材料蛋白质样品丙烯酰胺 SDS Tris-HCl伊琉基乙醇ddH2O 甘氨酸 Tris 甲醇 PBS NaCl KCl试剂、试剂盒Na2HPO4 KH2PO4 ddH2O 考马斯亮兰 乙酸 脱脂奶粉 硫酸锲胺H2O2 DAB试剂盒电泳仪电泳槽离心机离心管硝酸纤维素 仪器、耗材膜匀浆器剪刀移液枪刮棒一、试剂准备1 . SDS-PAGE试剂：见聚丙烯酰胺凝胶电泳实验。2 .匀浆缓冲液:1.0 M Tris-HCl(pH 6.8) 1.0实验步骤ml;

3、10%SDS 6.0 mJ伊琉基乙醇 0.2 ml;ddH2O 2.8 ml。3 .转膜缓冲液：甘氨酸 2.9 g; Tris 5.8 g;SDS 0.37 g 甲醇 200 ml;力口 ddHzO 定容至1000 ml。4 . 0.01 M PBS(pH7.4): NaCl 8.0 g； KCl 0.2 g； Na2HPO4l.44 g； KH2PO4 0.24 g；力口 ddHzO 至 1000 ml。5 .膜染色液：考马斯亮兰0.2 g;甲醇80 ml; 乙酸2 ml; ddH2O118 ml。包被液(5%兑脂 奶粉，现配)：脱脂奶粉1.0 g溶于20 ml 的 0.01 M PBS 中

4、。6 .显色液：DAB 6.0 mg；0.01 M PBS 10.0 ml; 硫酸锲胺 0.1 ml; H202 1.0册二、蛋白样品制备1 .单层贴壁细胞总蛋白的提取(1)倒掉培养液，并将瓶倒扣在吸水纸上 使吸水纸吸干培养液(或将瓶直立放置一会 儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液器将 其吸走)。(2)每瓶细胞加3 ml 4c预冷的PBS0.01M pH7.27.3)。平放轻轻摇动1 min洗涤细胞， 然后弃去洗液。重复以上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS弃净后把培养瓶置于冰上(3)按 1ml 裂解液加 10 d PMSF(100 mM ), 摇匀置于冰上。(PMSF要摇匀至无结晶

5、时才 可与裂解液混合。)(4)每瓶细胞加400 M含PMSF的裂解液， 于冰上裂解30 min ,为使细胞充分裂解培养 瓶要经常来回摇动。(5)裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培 养瓶的一侧(动作要快)，然后用枪将细胞 碎片和裂解液移至1.5 ml离心管中。(整个 操作尽量在冰上进行。)(6)于 4c下 12000 rpm 离心 5 min。(提 前开离心机预冷)(7)将离心后的上清分装转移倒0.5 ml的 离心管中放于一20 c保存。2 .组织中总蛋白的提取(1)将少量组织块置于12 ml匀浆器中球状部位，用干净的剪刀将组织块尽量剪碎。(2)加400小单去污剂裂解液裂(含PMSF) 于匀浆器

6、中，进行匀浆。然后置于冰上。(3)几分钟后再碾一会儿再置于冰上，要重 复碾几次使组织尽量碾碎。(4)裂解30 min后，即可用移液器将裂解 液移至1.5 ml离心管中，然后在4c下12000 rpm离心5 min ,取上满分装于0.5 ml离心管 中并置于20 c保存。3 .加药物处理的贴壁细胞总蛋白的提取由于受药物的影响，一些细胞脱落下来，所 以除按1操作外还应收集培养液中的细胞。以下是培养液中细胞总蛋白的提取：(1)将培养液倒至15 ml离心管中,于2500 rpm 离心 5 min。(2)弃上清，加入4 ml PBS并用枪轻轻吹打 洗涤，然后2500 rpm离心5 min。弃上清后 用P

7、BS重复洗涤一次。(3)用枪洗干上清后，加100人裂解液(含PMSF)冰上裂解30 min ,裂解过程中要经常弹一弹以使细胞充分裂解。(4)将裂解液与培养瓶中裂解液混在一起 4C、12000 rpm离心5 min ,取上满分装于 0.5 ml离心管中并置于20c保存。三、蛋白含量的测定1 .制作标准曲线(1)从一20 C取出1 mg/ml BSA,室温融化 后，备用。(2)取18个1.5 ml离心管，3个一组，分 别标记为 0 mg, 2.5 mg , 5.0 mg , 10.0 mg , 20.0 mg , 40.0 mg。(3)按下表在各管中加入各种试剂。(4)混匀后，室温放置2 min。

8、在生物分光 光度计(Bio-Photometer , Eppendorf)上比 色分析。2 .检测样品蛋白含量(1)取足量的1.5 ml离心管，每管加入4c 储存的考马斯亮蓝溶液1 ml。室温放置30 min后即可用于测蛋白。(2)取一管考马斯亮蓝加 0.15 mol/L NaCl 溶液100 ml ,混匀放置2分钟可做为空白样 品，将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的 程序下按blank测空白样品。(3)弃空白样品，用无水乙醇清洗比色杯 2 次(每次0.5 mL),再用无菌水洗一次。(4)取一管考马斯亮蓝加 95 ml 0.15 mol/LNaCl NaCl溶液和5 ml待测蛋白样品，混匀 后

9、静置2 min，倒入扣干的比色杯中按sample 键测样品。注意：每测一个样品都要将比色杯用无水乙 醇洗2次，无菌水洗一次。可同时混合好多 个样品再一起测，这样对测定大量的蛋白样 品可节省很多时间。测得的结果是 5 ml样品 含的蛋白量。四、SDS PAGE电泳1 .清洗玻璃板一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻 轻擦洗。两面都擦洗过后用自来水冲，再用 蒸储水冲洗干净后立在筐里晾干。2 .灌胶与上样(1)玻璃板对齐后放入火中卡紧。然后垂直 卡在架子上准备灌胶。(操作时要使两玻璃 对齐，以免漏胶。)(2)按前面方法配10函离胶，加入TEMED 后立即摇匀即可灌胶。灌胶时，可用 10 ml 枪吸

10、取5 ml胶沿玻璃放出，待胶面开到绿带 中间线高度时即可。然后胶上加一层水，液 封后的胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些， 胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶 一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气 泡。加水液封时要很慢，否则胶会被冲变型。)(3)当水和胶之间有一条折射线时，说明胶 已凝了。再等3 min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干(4)按前面方法配4%勺浓缩胶，加入TEMED 后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩 胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使 胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。插梳 子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积 会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小

11、， 所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补 胶。待到浓缩胶凝固后，两手分别捏住梳子 的两边竖直向上轻轻将其拔出。(5)用水冲洗一下浓缩胶，将其放入电泳槽 中。(小玻璃板面向，大玻璃板面向外。若 只跑一块胶，那槽另一边要垫一块塑料板且 有字的一面面向外。)(6)测算蛋白含量后，计算含50 ng蛋白的 溶液体积即为上样量。取出上样样品至0.5 ml 离心管中，加入5XSDS上样缓冲液至终浓度 为1又(上样总体积一般不超过15 d,加样 孔的最大限度可加20 M样品。)上样前要将 样品于沸水中煮5 min使蛋白变性。(7)加足够的电泳液后开始准备上样(电泳液至少要漫过测的小玻璃板。）用微量进 样器贴

12、壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气 泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样 品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有 气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时， 进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤 3次，以 免交叉污染。3. 电泳电泳时间一般45 h,电压为40 V较好，也 可用60 V。电泳至澳酚兰刚跑出即可终止电 泳，进行转膜。五、转膜1 .转一股需准备67.08.3 cm的滤纸和17.38.6 cm的硝酸纤维素膜。切滤纸和膜 时一定要戴手套，因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜置于水上浸 2h才可 使用。（用银子捏住膜的一边轻轻置于有超 纯水的平皿里，要使膜浮于水上，只有下层 才与水接触。

13、这样由于毛细管作用可使整个 膜浸湿。若膜沉入水里，膜与水之间形成一 层空气膜，这样会阻止膜吸水。2 .在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的 夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和浸过 的膜。3 .将夹子打开使黑的一面保持水平。在上 面垫一海绵垫，用玻棒来回擀几遍以擀走里 面的气泡。（一手擀另一手要压住垫子使其 不能随便移动。）在垫子上垫三层滤纸（可 三纸先叠在一起在垫于垫子上），一手固定 滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。4 .要先将玻璃板撬掉才可剥胶，撬的时候动 作要轻，要在两个边上轻轻的反复撬。撬一 会儿玻璃板便开始松动，直到撬去玻板。（撬 时一定要小心，玻板很易裂。）除去小玻璃 板后，将浓缩胶轻轻

14、刮去（浓缩胶影响操作）， 要避免把分离胶刮破。小心剥下分离胶盖于 滤纸上，用手调整使其与滤纸对齐，轻轻用 玻棒擀去气泡。将膜盖于胶上，要盖满整个 胶（膜盖下后不可再移动）并除气泡。在膜上盖3滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海 绵垫，擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行，要不断的擀去气泡。膜两边的 滤纸不能相互接触，接触后会发生短路。（转 移液含甲醇，操作时要戴手套，实验室要开 门以使空气流通。）5 .将夹子放入转移槽槽中，要使夹的黑面对 槽的黑面，夹的白面对槽的红面。电转移时 会产热，在槽的一边放一块冰来降温。一般用60 V转移2 h或40 V转移3 h。6 .转完后将膜用1 x丽春红染液

15、染5 min （于 脱色摇床上摇）。然后用水冲洗掉没染上的 染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。六、免疫反应1 .将膜用TBS从下向上浸湿后，移至含有 封闭液的平皿中，室温下脱色摇床上摇动封闭1h。2 .将一抗用TBST稀释至适当浓度（在1.5 ml离心管中）；撕下适当大小的一块儿保鲜膜铺于实验台面上，四角用水浸湿以使保鲜 膜保持平整；将抗体溶液加到保鲜膜上；从 封闭液中取出膜，用滤纸吸去残留液后，将 膜蛋白面朝下放于抗体液面上，掀动膜四角 以赶出残留气泡；室温下孵育12h后，用 TBST在室温下脱色摇床上洗两次，每次 10 min；再用 TBS洗一次，10 min。3 .同上方法准备二抗稀

16、释液并与膜接触，室 温下孵育12 h后，用TBST在室温下脱色 摇床上洗两次，每次10 min；再用TBS洗一 次，10 min ,进行化学发光反应。七、化学发光，显影，定影1 .将A和B两种试剂在保鲜膜上等体积混 合；1 min后，将膜蛋白面朝下与此混合液充 分接触；1 min后，将膜移至另一保鲜膜上， 去尽残液，包好，放入X-光片夹中。2 .在暗室中，将1X显影液和定影液分别到 入塑料盘中；在红灯下取出 X 光片，用切 纸刀剪裁适当大小（比膜的长和宽均需大 1 cm）;打开X-光片夹，把X 光片放在膜上，一旦放上，便不能移动，关上 X-光片夹，开始计时；根据信号的强弱适当调整曝光时间， 一

17、般为1 min或5 min ,也可选择不同时间多 次压片，以达最佳效果；曝光完成后，打开 X-光片夹，取出X-光片，迅速浸入显影液中 显影，待出现明显条带后，即刻终止显影。显影时间一般为12 min (2025C),温 度过低时(低于16C)需适当延长显影时间； 显影结束后，马上把X-光片浸入定影液中， 定影时间一般为510 min,以胶片透明为 止；用自来水冲去残留的定影液后，室温下 晾干。应注意的是：显影和定影需移动胶片时，尽 量拿胶片一角，手指甲不要划伤胶片，否则 会对结果产生影响。八、凝胶图象分析将胶片进行扫描或拍照，用凝胶图象处理系 统分析目标带的分子量和净光密度值。收起1. 一抗、

18、二抗的稀释度、作用时间和温度对注意事项不同的蛋白要经过预实验确定最佳条件2 .显色液必须新鲜配置使用，最后加入 H2O2O3 . DAB有致癌的潜在可能，操作时要小心仔 细。一、免疫反应1 .用 0.01 M PBS洗膜，5 min M 次。2 .加入包被液，平稳摇动，室温 2 h03 .弃包被液，用0.01 M PBS洗膜，5 min> 次。其他4 .加入一抗（按合适稀释比例用0.01 M PBS 稀释，液体必须覆盖膜的全部），4 c放置12 h以上。阴性对照，以1%BSA®代一抗， 其余步骤与实验组相同。5 .弃一抗和1%BSA用0.01 M PBS分别洗膜，5 min X

19、4 次6 .加入辣根过氧化物酶偶联的二抗（按合适稀释比例用0.01 M PBS稀释），平稳摇动，室温2 h07 .弃二抗，用 0.01 M PBS洗膜，5 min X4 次8 .加入显色液，避光显色至出现条带时放入双蒸水中终止反应。展实验蛋白质样品材料裂解液PBS G 250考马斯亮蓝溶液 NaCl SDS上样缓冲液 电泳缓冲液 转移缓冲液丽春红染液封闭液TBST TBS洗脱抗体缓冲液显影液定影液 试齐I抗体化学发光试剂盒高压锅玻璃匀浆器高速离心机分光光度仪-20 C低温冰箱垂直板电泳器、转移装置恒温水浴摇床多用脱色摇床耗材实验一、操作步骤：步骤1.蛋白样品制备（1）单层贴壁细胞总蛋白的提取：

20、倒掉培养液，并将瓶倒扣在吸水纸上使吸水纸吸干培养液（或将瓶直立 放置一会儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液器将其吸走）。每瓶细胞加3m14c预冷的PBS0.01 M pH7.27.3）。平放轻轻摇动1 min洗涤细胞，然后弃去洗液。重复以上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。按1ml裂解液加10 MPMSF （100 mM）,摇匀置于冰上。（PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。）每瓶细胞加400 M含PMSF的裂解液，于冰上裂解30 min,为使细胞充 分裂解培养瓶要经常来回摇动。裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片

21、和裂解液移至1.5 ml离心管中。（整个操作尽量在冰上进 行。）于4 c下12000 rpm离心5 min（提前开离心机预冷）将离心后的上清分装转移倒 0.5 min的离心管中放于-20 C保存。(2)组织中总蛋白的提取：将少量组织块置于12 ml匀浆器中球状部位，用干净的剪刀将组织块 尽量剪碎。加400 l单去污剂裂解液裂(含PMSF)于匀浆器中，进行匀浆。然后置 于冰上。几分钟后再碾一会儿再置于冰上，要重复碾几次使组织尽量碾碎。裂解30 min后，即可用移液器将裂解液移至1.5 ml离心管中，然后在4c 下12000 rpm 离心5 min ,取上满分装于0.5 ml离心管中并置于-20

22、C保 存。(3)加药物处理的贴壁细胞总蛋白的提取：由于受药物的影响，一些细胞脱落下来，所以除按(1)操作外还应收集培 养液中的细胞。以下是培养液中细胞总蛋白的提取：将培养液倒至1.5 ml离心管中，于2500 rpm 离心5 min。弃上清，加入4 ml PBS并用枪轻轻吹打洗涤，然后2500 rpm离心5 min。弃上清后用PBS重复洗涤一次。用枪洗干上清后，力口 100 M裂解液(含PMSF)冰上裂解30 min,裂解 过程中要经常弹一弹以使细胞充分裂解。将裂解液与培养瓶中裂解液混在一起 4C、12000 rpm离心5 min,取上 清分装于0.5 ml离心管中并置于-20 C保存。2 .

23、蛋白含量的测定(1)制作标准曲线从-20 C取出1 mg/ml BSA ,室温融化后，备用。取18个1.5 ml离心管，3个一组，分别标记为 0闻，2.5闻，5.0闻，10.0 闻,20.0 国,40.0 闻。按下表在各管中加入各种试剂。0四2.5闻5.0国10.0 闻20.0 国40.0 g1mg/ml BSA2.5 d5.0 pl10.0 pl20.0 pl40.0 d0.15mol/L NaCl100 M97.5 M95.0 M90.0 pl80.0 pl60.0 dG250考马斯亮蓝溶液1 ml1 ml1 ml1 ml1 ml1 ml混匀后，室温放置2 min 。在生物分光光度计（Bi

24、o-Photometer ,Eppentoff）上比色分析。（2）检测样品蛋白含量取足量的1.5 ml离心管，每管加入4c储存的考马斯亮蓝溶液1 ml。室 温放置30 min后即可用于测蛋白。取一管考马斯亮蓝加0.15 mol/L NaCl溶液100 pl,混匀放置2分钟可做 为空白样品，将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的程序下按 blank测空白 样品。弃空白样品，用无水乙醇清洗比色杯 2次（每次0.5 ml）,再用无菌水洗一次。取一管考马斯亮蓝加95 M 0.15 mol/L NaCl NaCl溶液和5 pl待测蛋白样品，混匀后静置2 min ,倒入扣干的比色杯中按sample键测样品 注

25、意：每测一个样品都要将比色杯用无水乙醇洗 2次，无菌水洗一次。可 同时混合好多个样品再一起测，这样对测定大量的蛋白样品可节省很多时 间。测得的结果是5 M样品含的蛋白量。3 . SDS PAGE电泳(1)清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。两面都擦洗过后用自 来水冲，再用蒸储水冲洗干净后立在筐里晾干。(2)灌胶与上样玻璃板对齐后放入夹中卡紧。然后垂直卡在架子上准备灌胶。(操作时 要使两玻璃对齐，以免漏胶。)按前面方法配10加离胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时， 可用10 ml枪吸取5 ml胶沿玻璃放出，待胶面开到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层水，液封后的

26、胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些， 胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。加水液封时要很慢，否则胶会被冲变型。)当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了。冉等 3 min使胶充分凝周就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。按前面方法配4%勺浓缩胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空 间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以 免胶中有气泡产生。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收 缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经 常在两边补胶。待到浓缩胶凝固后，两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻 轻将其

27、拔出。用水冲洗一下浓缩胶，将其放入电泳槽中。（小玻璃板面向，大玻璃板 面向外。若只跑一块胶，那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外。）测完蛋白含量后，计算含50闻蛋白的溶液体积即为上样量。取出上样 样品至0.5 ml离心管中，加入5XSDS上样缓冲液至终浓度为IX。（上样 总体积一般不超过15加样孔的最大限度可加20 M样品。）上样前要将样品于沸水中煮5 min使蛋白变性。加足够的电泳液后开始准备上样。（电泳液至少要漫过测的小玻璃板。） 用微量进样器贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插 至加样孔中缓慢加入样品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气泡也 可能使样品溢出。加入下

28、一个样品时，进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤 3次，以免交叉污染(3)电泳电泳时间一般45 h,电压为40 V较好，也可用60 V。电泳至澳酚兰刚跑 出即可终止电泳，进行转膜。4 .转股(1)转一膜需准备67.08.3 cm的滤纸和17.38.6 cm的硝酸纤维素膜。切滤纸和膜时一定要戴手套，因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜置于水上浸2h才可使用。(用银子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水 的平皿里，要使膜浮于水上，只有下层才与水接触。这样由于毛细管作用 可使整个膜浸湿。若膜沉入水里，膜与水之间形成一层空气膜，这样会阻 止膜吸水。(2)在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一

29、支玻棒、滤纸和浸过的膜。(3)将夹子打开使黑的一面保持水平。在上面垫一海绵垫，用玻棒来回擀 几遍以擀走里面的气泡。(一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动。) 在垫子上垫三层滤纸(可三纸先叠在一起在垫于垫子上)， 一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。（4）要先将玻璃板撬掉才可剥胶，撬的时候动作要轻，要在两个边上轻轻的反复撬。撬一会儿玻璃板便开始松动，直到撬去玻板。（撬时一定要小心，玻板很易裂。）除去小玻璃板后，将浓缩胶轻轻刮去（浓缩胶影响操作），要避免把分离胶刮破。小心剥下分离胶盖于滤纸上，用手调整使其与滤纸对齐，轻轻用玻棒擀去气泡。将膜盖于胶上，要盖满整个胶（膜盖下后不可再移动）并除气泡。

30、在膜上盖 3滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫，擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行，要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触，接触后会发生短路。（转移液含甲醇，操作时要戴手套，实验室要开门以使空气流通。）（5）将夹子放入转移槽槽中，要使夹的黑面对槽的黑面，夹的白面对槽的红面。电转移时会产热，在槽的一边放一块冰来降温。一般用60 V转移2 h 或40 V转移3 h0（6）转完后将膜用1丽春红染液染5 min （于脱色摇床上摇）。然后用水冲洗掉没染上的染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。5 .免疫反应（1）将膜用TBS从下向上浸湿后，移至含有封闭液的平皿中，室温下脱色摇床上摇动封闭1

31、h(2)将一抗用TBST稀释至适当浓度(在1.5 ml离心管中)；撕下适当大 小的一块儿保鲜膜铺于实验台面上，四角用水浸湿以使保鲜膜保持平整； 将抗体溶液加到保鲜膜上；从封闭液中取出膜，用滤纸吸去残留液后，将 膜蛋白面朝下放于抗体液面上，掀动膜四角以赶出残留气泡；室温下孵育 12 h后，用TBST在室温下脱色摇床上洗两次，每次 10 min；再用TBS 洗一次，10 min o(3)同上方法准备二抗稀释液并与膜接触， 室温下孵育12 h后，用TBST 在室温下脱色摇床上洗两次，每次 10 min；再用TBS洗一次，10 min,进 行化学发光反应。6 .化学发光，显影，定影(1)将A和B两种试

32、剂在保鲜膜上等体积混合；1 min后，将膜蛋白面朝 下与此混合液充分接触；1 min后，将膜移至另一保鲜膜上，去尽残液，包 好，放入X-光片夹中。(2)在暗室中，将1 显影液和定影液分别到入塑料盘中；在红灯下取出 X光片，用切纸刀剪裁适当大小(比膜的长和宽均需大1 cm)；打开X-光片夹，把X光片放在膜上，一旦放上，便不能移动，关上X-光片夹，开始计时；根据信号的强弱适当调整曝光时间，一般为 1 min或5 min ,也可选择不同时间多次压片，以达最佳效果；曝光完成后，打开 X-光片夹，取出X-光片，迅速浸入显影液中显影，待出现明显条带后，即刻终止显影。显影时间一般为12 min (2025C

33、),温度过低时(低于16C)需适当 延长显影时间；显影结束后，马上把 X-光片浸入定影液中，定影时间一般为510 min,以胶片透明为止；用自来水冲去残留的定影液后，室温下晾 干。应注意的是：显影和定影需移动胶片时，尽量拿胶片一角，手指甲不要划 伤胶片，否则会对结果产生影响。7,凝胶图象分析将胶片进行扫描或拍照，用凝胶图象处理系统分析目标带的分子量和净光 密度值。图解实验蛋白质样品材料试裂解液PBS SDS±样缓冲液电泳缓冲液转移缓冲液丽春红染液TBST 剂、TBS洗脱抗体缓冲液抗体剂盒仪器、电泳仪 移液器 脱色摇床 显影仪耗材一、实验步骤玻璃板对齐后谕入架中，把两侧的夹F紧，要使短玻璃窄 外，长玻瑞靠内。然后垂直卡在架子上准备灌胶。操作时直使两架璃对齐,以 免漏胶电图小两块玻璃板放在一个架子上。配10 %分送股.加入TEMEDM立即