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文档简介
1、实验前准备实验器材:干棉球、酒精棉球、75%酒精、生理盐水、注射器(1ml、2ml)、黑 色记号笔、固定大鼠用粗线绳、大鼠板、 染色小烧杯、标本瓶 手术器械:备皮剪子 1、眼科剪 1、大直镊 1 只、小弯镊 1 对、(动脉夹 2)、 止血钳 2-3、缝合线、缝合针、持针器 麻醉剂: 10%水合氯醛( 400mg/kg)保温:60W白炽灯,于37cm高处直接照射能使肛温保持在 37C栓线:直径0.24mm,头端光滑圆钝;在栓线18mm的位置用黑色记号笔标记; 75%酒精清洁后置 1: 2500 单位肝素化生理盐水中备用。体重与栓线直径:直径0.24mm的栓线适用于体重220-280g的SD大鼠。
2、TTC的配制:用0.2mol/L磷酸缓冲液(PBS)配成2%TTC溶液(pH7.4),避 光保存。药物配制:无论生理盐水还是受试药物标签均采用代号, 给药及评分均采用单盲。仪器激光多普勒血流仪(Laser Doppler Flowmetry, LDF)系统,包括:PeriFlux 5001 Ma in Unit,PF5010 LDPM Unit (激光多普勒微血流灌注量检测单元),LD Probe407-1 ( Perimed Co., Jarfalla, Sweden ;大鼠脑立体定位仪(深圳市瑞沃德生命 科技有限公司);牙科手钻(Stron g 90#, Korea);大鼠脑切片模具;荧光
3、正置 显微镜(NIKON ECLIPSE 80i, X400)及成像系统( ACT-2U NIKON Imaging System)。大脑中动脉栓塞( MCAO )模型的制备参照Zea Lon ga等2建立的大鼠大脑中动脉内栓线阻断方法,作适当改进。10 %水合氯醛溶液400mg/kg,腹腔注射麻醉动物。大鼠仰卧位固定,颈部正 中切开皮肤,钝性分离各层组织,暴露右侧颈总动脉 (CCA) 。分离至颈内动脉(internal carotid artery, ICA)、颈外动脉(external carotid artery,ECA)分叉 后一段,仔细分离避免损伤迷走神经和气管,置线备用。于颈内、
4、颈总动脉处用动脉夹夹闭, 颈外动脉近心端及远心端结扎, 中间剪 断。将颈外动脉游离端拉至与颈内动脉成一条直线,将尼龙线由颈外动脉插入, 插入后用 0号丝线结扎,以防止出血,打开颈内动脉处动脉夹,将尼龙线插入颈 内动脉,继续插入至颅内,插入深度约18.5 ±.5mm至微感阻力,使尼龙线头端通 过MCA起始处,到达较细的大脑前动脉,此时即实现右侧大脑中动脉的血流阻 塞,结扎ICA以固定尼龙线和防止出血,逐层缝合,尼龙线残端留I cm长于皮外。假手术组只进行术前麻醉和血管分离术, 不结扎及导入线栓。 手术过程中室 温保持在24-25C,生物机能实验系统进行动物呼吸及心电监测。3局部脑血流量
5、测定大鼠俯卧位固定于立体定位仪上, 开颅窗并清理手术视野, 以前囟为坐标原 点,选取前囟后1-2mm、右侧2-4mm为测定点9,周围直径约2-3mm区域用牙科 钻打薄,保持硬脑膜的完整并避开较大的血管,定位并固定好探头座。将动物从定位仪取下并使其仰卧位于手术台上,进行 MCAO 手术,当线插 入 ICA 后先不插入颅内,稳定 LDF 读数后,记录 5min 内血流值,以其平均值 作为脑血流的基础值(baseline value。把线插入颅内,当血流值突然下降至基 础值的 10%-20 % 时,提示中脑动脉血流已被阻断。每组 MCAO 前的血流值为 本组的基础值( 100),手术后血流值均以此基
6、础值的百分率表示。4神经行为学检查Bederson '评分动物于给药前及处死前进行神经行为学观察,参照 Zea Longa的方法,提鼠 尾离开地面约 1 尺,观察两前肢状况;将大鼠置于水平地面,推动其双肩,观察 两侧抵抗力有无差异;大鼠置于地面,观察其行走情况。采用四级评分法( 0-5 分),分数越高,说明其神经行为损伤越严重。(1)行为完全正常者,记 0分;(2)提起鼠尾离开地面,手术对侧前肢内旋、内收者,记 1分;(3) 大鼠至地面,用手挤压两侧检查其抗力,手术对侧抗力下降者,记2分; ( 4)大鼠至地面,观察其行走,围绕手术对侧转圈者,记 3分;( 5)损伤极其严重,已无法自主活动者,记 4分。5脑梗死体积的测定:评分后大鼠断头处死,迅速将取出的脑组织置于 -20 °C冰箱,10mi n后置室 温环境,将脑置于大鼠脑切片模具中, 切除嗅球、 小脑和低位脑干后按图谱所示 间隔2mm冠状切五刀,切成6个大脑连续冠状粗切片。然后迅速将脑片置于 5ml 含2%TTC的溶液中,37C恒温、避光孵育30min,期间每隔5min将脑片翻动一次。 经 TTC 染色后,正常组织呈玫瑰红色,梗死组织未被染色而呈白色。将每组脑片 排列整齐, 拍照保
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