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文档简介
1、细胞培育标准操作程序(SOP)1目的:为了保证培育细胞的正常生长,试验技术人员必需明确并正确执行细胞培育的基本操作步骤,特制订试验室细胞培育操作流程。2适用范围:适用于来我院细胞室进行细胞培育工作的人员。3操作规程:3.1 培育液、PBS、胰蛋白酶的配制3.1.1 1000ml培育液的配制1、预备用品:培育粉、1000ml烧杯、玻棒、量筒、电子分析天平、PH仪、23天内的新颖三蒸水(或新颖反渗水)、NaHCO3粉、1000ml无菌玻璃瓶(100ml×10个玻璃瓶)、青霉素、链霉素、23个过滤器、注射器。紫外线照台30min。2、将培育粉用900ml新
2、颖三蒸水(或新颖反渗水)溶解,并冲洗袋内残留粉末。3、充分搅拌,按说明添加成分(如Invitrogen公司的RPMI-1640配制1000ml需加NaHCO3粉2.0g,Invitrogen 公司的DMEM需加NaHCO3粉3.7g等),再充分搅拌。无需加谷氨酰胺,因该培育基里已含有。4、用1M(1mol/L)HCl 调PH至7.0左右(细胞适宜在PH7.27.4生长,配制好后PH值会上升0.20.3,故配时调PH至7.0左右)。5、用新颖三蒸水(或新颖反渗水)定容到1000ml。6、配青霉素 80万/瓶 + 4ml 蒸馏水
3、0; 溶解 配链霉素100万/瓶 + 4ml 蒸馏水 溶解 取0.5ml青霉素和0.4ml链霉素加入到1000ml培育液中,使其终浓度均为100U/ml,充分搅拌混匀。7、在无菌操作台里用0.22um的除菌滤膜过滤配制好的培育液,并分装到到100ml玻璃瓶中,玻璃瓶口用薄膜封口,盖上橡皮塞,放-20保存备用。留意:(1)配制培育液及调整培育液PH值所使用的HCl和(或)NaOH均需新颖三蒸水(或新颖反渗水)配制。&
4、#160; 一般于配制当天制备,以保证水的纯度和质量。(2)预备的100ml×10个玻璃瓶必需事先高压灭菌!烧杯、量筒、玻棒、盛新颖三蒸水(或新颖反渗 水)的容器均不需高压灭菌,洁净即可。 3.1.2 PBS(平衡盐溶液)的配制 NaCl 8g KCl 0.2g 新颖
5、三蒸水(或新颖反渗水)至1000ml Na2HPO4*H2O 1.56g KH2PO4 0.2g (1) 无需调PH值,其成分溶解后PH为7.4,不需除菌滤膜过滤除菌,放于4保存,用前直接高压灭菌(高压时,装PBS的瓶子的瓶盖要插针头!) (2) Na2HPO4*H2O 1.56g 则Na2HPO4*12 H2O需3.4888g (3) 如欲配制500ml,以上成分减半即可 3.1.3 0.25%胰蛋白酶的配制
6、; 胰蛋白酶粉 2.5g EDTA(乙二胺四乙酸二钠) 0.3g NaCl 8.0g
7、60; KCl 0.4g
8、; +新颖三蒸水(或新颖反渗水)至1000ML NaHCO3 0.5g Glucose(葡萄糖) 1.0g 酚红
9、0; 0.06g(1)配出来的PH值为7.6,在PH值7.67.8范围内,故不需调PH值。(2)用0.22um的除菌滤膜过滤分装,瓶口用薄膜封口,放-20保存备用。4可连续使用1月左右。(3)用于分装的玻璃瓶必需事先高压灭菌!而烧杯、量筒、玻棒、盛新颖三蒸水(或新颖反渗水)的容器均不需高压灭菌,洁净即可。(4)如欲配制500ml,以上成分减半即可 3.2 细胞复苏1、预备:紫外线照台30min,预备好装有高压灭菌好的吸管、试管的饭盒、废液缸;培育基临用前放
10、水浴箱里温育20分钟。在操作台上摆放好物品,左边为饭盒、培育液等,中间为酒精灯、试管架等,右边放滴管架、镊子,右上角放废液缸。2、灼烧培育瓶口及瓶盖,用滴管取培育基5ml加入试管中(一滴约为50ul)。3、戴手套,从-196液氮罐中取出冻存管,马上放入37水浴箱中快速解冻,同时不断轻轻摇动冻存管,保证冻存管内细胞1min内溶化。以70%酒精擦拭保存管外部,移入无菌操作台内。(慢冻快融)4、用吸细胞液的滴管从冻存管中完全吸出细胞悬液,加入到已装有培育基的试管中,塞子塞试管,800rpm离心2min(用培育基且离心的目的:去除细胞冷冻爱护剂DMSO,因常温下其对细胞毒性大),弃上清,试管底部的白色
11、物质为细胞,轻弹混匀。往试管中加培育基、FBS(胎牛血清)各80滴和20滴(使FBS浓度为20)。用吸细胞液的滴管轻轻吹打,使细胞混匀,以免在培育瓶里成团,影响细胞生长。5、将试管中的细胞悬液用吸细胞液的滴管全部吸出,加到培育瓶中,标记日期、细胞名称,再把培育瓶放入CO2培育箱。(留意:加入到培育瓶后,培育瓶轻轻平放,用手拿培育瓶侧壁,左右上下轻轻摇摆几次,使细胞均匀贴壁在培育瓶底。)6、整理所用物品、用75%酒精喷洒操作台,擦台,保持台面洁净。 留意:(1)入细胞室前观看CO2%压力,5-7.5mPa左右,减压器表压力不低于0.1mPa!(2)刚复苏的细胞需要的养分成分更多些,让F
12、BS浓度达到20。(3)离心时间为12min,速度为800转,不要离心太久,避开对细胞损害较大。(4)滴管使用留意事项: a.吸细胞液专用一个滴管,各株细胞的滴管肯定要严格分开,不能混用,防止细胞间污染。 b.培育基和FBS(胎牛血清)可以用一个滴管,但分开用更好! c. FBS(胎牛血清)不能和胰酶用一根滴管,由于血清对胰酶活性有抑制作用。 d胰酶和PBS(平衡盐溶液)可以用一根滴管,不过最好分开(5)不是全部的细胞复苏后都能活。死亡缘由:冻存时间太长(如2
13、年以上),技术不过关(如吹打太激烈)、细胞传代数太多等。(6)关于PBS(平衡盐溶液): a. PBS溶液配好后要高压灭菌后才能用;PBS高压时其瓶塞肯定要插针头。 b. PBS和培育基都可以冲洗培育瓶里细胞中的杂质,但需用温过的PBS冲洗细胞中的杂质。PBS虽然冲洗杂质效果较好,但它有使细胞易脱壁的倾向,故不行经常冲洗细胞。 c不温的PBS用来做难消化细胞消化前冲洗一遍的预备,使细胞加入胰酶后易消化。 d消化后临时不养细胞的培育瓶,可以往其中加入23ml PBS(防止
14、培育瓶干燥),培育瓶放CO2培育箱里短时间保存。下次用该培育瓶再养同种细胞时,把PBS吸出弃去,再用培育基冲洗一遍即可再用。(7)DMSO(二甲基亚砜)在常温下对细胞毒性较大,而在4时,其毒性大大减弱,故冻存的细胞复苏后应准时洗涤冷冻爱护剂DMSO(离心后弃去上清),防止DMSO在常温下对细胞产生较大毒性! 3.3 细胞换液1、倒置显微镜下观看细胞生长状态:a.移动细胞培育瓶时,观看到呈漂移状态的细胞为死细胞;b.生长状态良好的细胞:透亮度大、折光性强、轮廓不清;能看清部分细胞微小结构,细胞处于对数生长期时可以见到很多分裂期细胞。c.生长状态不良的细胞:
15、0;细胞折光性变弱,轮廓增加,胞质中常消灭空泡、脂滴、颗粒样物质,细胞间空隙加大,细胞变得不规章,失去原有特点。d.只有生长状态良好的细胞才适合进一步传代和试验。2、紫外线照台30min,预备好吸管、试管饭盒,温育培育基,FBS(胎牛血清)可不温。试验开头时打开照明灯和抽风机,用75%酒精喷双手。酒精灯点燃放中间。滴管放滴管架上,从左到右挨次为:吸细胞液的滴管、吸培育基的滴管、吸FBS(胎牛血清)的滴管。从水浴箱中取出培育基,擦干水放入操作台的左边。3、从CO2培育箱中取出细胞培育瓶,在酒精灯外焰上旋转灼烧其瓶口、盖子处(留意不要把胶盖烧焦),滴管(前端90%部位)灼烧。细胞培育瓶倾斜,用吸细
16、胞液的滴管吸出旧液弃到废液碗中,尽量吸洁净。留意:滴管的胶头应在瓶外压紧再伸进培育瓶内,避开产生气泡,且不要伸入瓶内太多,防止造成污染;滴管尖端悬空弃液,不要触到废液碗(要亲眼看到弃液,防止滴管尖端触到废液碗)!4、用吸培育基的滴管吸取培育基90滴加入到培育瓶(25c)中,再用吸FBS(胎牛血清)的滴管吸取FBS 10滴加入到培育瓶中。(使FBS浓度为10)5、旋紧细胞培育瓶盖后,再旋回半圈,以利于空气流通。平放回CO2培育箱中。6、整理所用物品、用75%酒精喷洒操作台,擦台,保持台面洁净。 留意:(1)在打开培育基、FBS(胎牛血清)、培育瓶前后均需旋转灼烧其瓶口和瓶盖,严格留意无
17、菌操作。灭菌饭盒只能在无菌操作台里打开。(2)镊子每次使用前均需灼烧。装FBS的瓶子瓶盖小,用镊子夹住盖子灼烧后,再用其夹住瓶盖盖上;取其瓶盖时也是用镊子夹住瓶盖取下盖子。(3)滴管在第一次使用前也需灼烧。留意:除吸取细胞液的滴管外,其他滴管滴加液体时都要悬空滴加。已吸过液体的滴管在再次使用前决不能再灼烧!滴管千万不能混用!(4)培育瓶口不要对着自己,不加试剂时要平放。(5)培育液以没过细胞为宜。(6)细胞液颜色变黄,死细胞多时换液。不要求每天换液,简洁增加污染机会。 3.4 细胞计数1、原理:(1)计算细胞数目用血球计数盘计数。(2)血球计数盘一般有二个cha
18、mbers,每个chamber中细刻9个1mm2大正方形,其中4个角落之正方形再细刻16个小格,深度均为0.1mm。当chamber上方盖上盖玻片后,每个大正方形之体积为1mm2×0.1mm=1.0x10-4ml。使用时,计数每个大正方形内之细胞数目,乘以稀释倍数,再乘以104,即为每ml中之细胞数目。 细胞数/ml4大格细胞总数/ 4×104留意:镜下偶见由两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计
19、算,若细胞团占10%以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。2、计数方法:(1) 75%酒精棉签清洁盖玻片及计数板,再用干纱布或棉签再擦一遍,放好盖玻片。(2) 用滴管从已经吹打混匀的细胞悬液中取一滴滴在计数板周边,再用加样枪吹打混匀该滴液体,从中吸取13ul至盖玻片边缘(留意不要溢出,不要有气泡)。(3) 观看计数:压线的记左不记右,记上不登记;成团的细胞只记为1个;先用低倍镜(红色,4×)找出大位置,再用中倍镜(黄色,10×)进行计数。细胞数/ml4大格细胞总数/ 4×104(4) 计数完毕用75%酒精棉签擦盖玻片及计数板,再用干
20、纱布(或干棉签)擦一遍。 3.5 细胞传代1、紫外线照台30min,预备好细胞培育所需物品。2、取灭菌试管1支,配完全培育基(含10%FBS)3ml(培育基:FBS=54滴:6滴)。3、用吸细胞液的滴管吸弃旧液。4、胰酶消化:加入约1ml(20滴)胰酶到培育瓶里消化。胰酶铺平培育瓶底为佳。倒置显微镜下观看培育瓶内细胞,一旦发觉大量细胞胞质回缩,细胞间隙增大,但未脱离培育瓶底,马上用吸细胞液的滴管吸出胰酶弃去,把细胞培育瓶放入CO2培育箱让残存的胰酶连续消化,(在37胰酶消化效果最佳)。5、每1min把培育瓶拿到倒置显微镜下观看,当观看到细胞变圆,透亮,细胞间隙明
21、显增大时,用吸细胞液的滴管从试管中吸取事先配好的完全培育基3ml加入到培育瓶中终止消化。6、用吸细胞液的滴管轻柔吹打,保证培育瓶底的每个角落都吹打到,斜坡处不能忽视(可以把滴管卡在瓶口处吹打斜坡处。吹打时尽量避开产生气泡,因其对细胞有损害;需轻柔吹打,用力吹打对细胞也有损害。新学者可固定每个角落包括斜坡处吹打5次,靠近瓶口端处的角落也要吹到),把培育瓶中全部细胞悬液用吸细胞液的滴管移入试管中,再用滴管吹打混匀细胞悬液。7、取一滴细胞悬液进行计数(此步骤是为了积累培育细胞的阅历,观看多少密度的细胞具体几天可以长满,待有阅历后此步骤可以省略。如需进一步进行铺板则肯定要计数!)8、传代:不同细胞依据
22、细胞数量、生长快慢、难易等,一般依据1:5比例进行传代。先用滴管吹打混匀3ml(60滴)细胞悬液,取12滴细胞悬液到培育瓶中,补足完全培育基(培育基:FBS=9:1)使液体总体积达到4ml,平放到CO2培育箱中连续培育。9、整理所用物品、用75%酒精喷洒操作台,擦台,保持台面洁净。 留意:(1)对于难消化的细胞(如Bxpc-3胰腺癌细胞)在用胰酶消化前,先用12ml(即2040滴,或12滴管)4 PBS冲洗一遍,较易消化的细胞不需要此步骤。(2)肯定要防止细胞过消化!因过消化,使细胞成团,不均匀,且对细胞损害很大,影响细胞贴壁和导致生长状态差等。* 过消化特征:a
23、.在没有加入完全培育基终止消化前就有成团细胞从培育瓶壁上脱落,胰酶里消灭很多悬浮物,为掉下来的细胞。b.培育瓶底板上本身为白茫茫(细胞贴壁生长),而过消化后细胞脱壁掉下来,则可见培育瓶底板有一片片空隙。(3)过消化的处理:不吸出胰酶,马上加入3ml完全培育基终止消化后一并收集入试管中,经过800 rpm 离心3min,弃去上清(失活的胰酶、培育基、FBS)。细胞沉淀(白色沉淀物)在试管底,用手指轻弹打散细胞,重新加入适量完全培育基,混匀后放入培育瓶中连续培育。(4)在加入未经37温育的胰酶(指仅为室温)消化细胞时,即使细胞已经变圆,且透亮,用完全培育基终止消化后仍很难吹打下来。那是由
24、于胰酶的温度不适宜;而应当把残留有胰酶作用的培育瓶放到CO2培育箱中,放置5min,让胰酶在其最佳温度(37)下消化细胞。(5)把试管中细胞悬液转移到培育瓶中时,每次滴管在试管中取液时都要轻柔吹打液体,以防止细胞成团不均,影响在培育瓶中生长。(6)用力吹打和气泡产生对细胞都有损害,故应轻柔吹打并尽量削减气泡产生。(7)吹打结束使细胞尽量分别成单个细胞为宜。(8)完全培育基为含有10FBS(胎牛血清)的培育液(基)。(9)小牛血清使用范围:520%,10%最常用。血清可把握细胞生长速度,若想减慢细胞生长速度可削减血清浓度,反之亦然。对于刚复苏的细胞需要的养分成分更多些,则血清用20%。(10)一
25、般25c培育瓶需培育液5ml,通常需90滴培育基+10滴胎牛血清(FBS),一滴液体体积为50ul,即20滴为1ml。(11)一般细胞生长铺至瓶底约80%,则可传代或用来做试验,否则细胞进入生长平台期进而缺少养分而状态老化,不易用于后续试验。 3.6 细胞铺板(如12孔板)1、紫外线照台30min,预备好细胞培育所需物品。2、在灭菌试管1中配完全培育基3ml(培育基:FBS=54滴:6滴)3、消化同前,留意防止过消化。吹打混匀计数,如为:8.0×10 5个/ml4、稀释细胞悬液:依据阅历,细胞密度0.8×10 5个/ml较
26、合理,因每孔需加培育液1ml,共需12ml,分2次,每次6ml(因试管体积有限,6ml即120滴),则配制细胞悬液: 8.0×10 5个/ml ×x ml = 0.8×10 5个/ml × 6ml,x=0.6ml 即 细胞原液: 0.6ml×20滴/ml=12滴完全培育基: 6ml-0.6ml=5.4ml (5.4×20滴=108滴)97滴培育基+ 11滴FBS故取12滴细胞悬液、108滴完全培育液加入试管中。用吸细胞液的滴管吹打混
27、匀细胞悬液。5、在超净工作台里打开细胞板,铺板,留意无菌操作。每孔1ml(20滴),分4次滴加,每次5滴,按挨次依次滴入。留意:每次从试管中吸细胞悬液时都应吹打以使细胞均匀!6、连续稀释细胞悬液6ml,操作同前。7、加完之后,当心平稳地将培育板放入培育箱内,静置5min后,在显微镜下观看细胞是否铺均匀,如不均匀,将影响后续试验,则需在细胞板内吹打混匀细胞:因孔内细胞悬液1ml,接受700ul枪吹打(不能用滴管,会刮花底面),可以轻轻抵着底面往各个方向吹打。留意:当心吹打,最好不要起气泡,否则会导致细胞不均,且影响观看。吹打后放倒置显微镜下观看,若不够均匀,连续吹打。将细胞板拿出操作台时需盖板盖
28、,避开污染。8、吹打完毕后,当心将细胞板放CO2培育箱培育。(留意:拿细胞板避开晃动,最好直拿直放,不要推动移动,否则细胞简洁成团。)9、清洁操作台面,用75%酒精喷洒操作台,擦台。 留意:(1)若铺96孔板,则需在96孔板四周一圈孔中加入PBS,防止干燥。 (2)各种不同规格板的铺板细胞数量: 板型细胞密度(孔)体积/孔需细胞数吹打加样枪头6孔板 0.60.8×10
29、 5个/ml 2ml 4×10 41ml12孔板0.60.8×10 5个/ml1ml 68×10 4700ul24孔板0.81.0×10 5个/ml0.5ml45×10 4300ul96孔板 1.0×10 5个/ml 0.1ml 1×10 4 50ul 3.7 细胞冻存1、冷冻前一日前更换半量或全量培育基,观看细胞生
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