细胞实验的基本操作

1、细胞实验的基本操作【细胞培养】一、细胞的复：非原代培养的细胞一般冻存于液氮之中，需要培养时要先从液氮中取出使之复。细胞复的原则快速融化：必须将冻存在196液氮中的细胞快速融化至37，使细胞外冻存时的冰晶迅速融化，避免冰晶缓慢融化时进入细胞形成再结晶，对细胞造成损害。具体操作如下：1、实验前准备：1.1、 将水浴锅预热至37C,并将含10%FBS勺培养液置于其中预热；。1.2、 用75酒精擦拭紫外线照射30min 的超净工作台台面。1.3、 在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。2、取出冻存管及迅速解冻：2.1、 根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。2.2、 从液氮罐

2、中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。2.3、 迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化，约1-2min 后冻存管液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，再拿入超净台。3、平衡离心 将细胞悬液吸到离心管中，10001500rpm离心3分钟；4、制备细胞悬液吸去上清液，加入10 ml 培养液，用吸管轻轻吹打均匀，使细胞悬浮；5、细胞计数 细胞浓度以5X105/ml为宜。6、培养细胞将复合细胞计数要求的细胞悬液吸到培养瓶中，将培养瓶放入37和5 CO2 的培养箱培养（略微拧松培养瓶盖），换液的时间由细胞情况而定。通常，除少数特别注明对DM

3、SO 敏感的细胞外，绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞），在解冻之后，可直接放入含有10-15ml （ 5 10 倍）新鲜培养基的培养角瓶中，待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可， 如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附的问题。二、细胞的传代：培养的细胞生长至一定密度之后，由于培养液中营养逐渐消耗、代物逐步积累（可见到培养液变黄），而且细胞的生长空间也受到限制，就会影响到细胞的继续生存。这时就需要分离出一部分细胞和更新培养液，这一过程就叫做传 代。1、贴壁细胞的传代具体操作如下：1.1、 传代前准备：1.1.1、 预热培养用液：把装有培养液、PBS和胰蛋白酶的瓶子放入37c水浴锅 预热。1

4、.1.2、 用75酒精擦拭双手和经过紫外线照射的超净工作台1.1.3、 正确摆放使用的器械：保证足够的操作空间，不仅便于操作而且可减少污染。1.1.4、 点燃酒精灯：注意火焰不能太小。1.1.5、 准备好将要使用的已灭菌的空培养瓶。1.1.6、 取出已经预热好的培养用液，用酒精棉球擦拭好后能放入超净台。1.1.7、 从培养箱取出细胞，注意取出细胞时要旋紧瓶盖，用酒精棉球擦拭显微镜的台面，再在镜下观察细胞，并做好记录。1.1.8、 细胞培养瓶经用75酒精擦拭后，再放入超净台。1.2、 胰蛋白酶消化：1.2.1、 将瓶盖过酒精灯火焰消毒后，打开瓶盖，靠近酒精灯，小心吸出旧培养液，用PBS清洗2 3

5、次，沿壁（无细胞的一面）缓缓加入适量消化液（胰蛋白酶液），轻轻摇晃。注意消化液的量以盖住细胞最好，最佳消化温度是37。1.2.2、 显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察消化细胞，若胞质回缩，细胞之间不再连接成片，表明此时细胞消化适度。1.3、 吹打分散细胞：1.3.1、 弃去大部分消化液（仅留少量在瓶），并轻轻拍打培养瓶，使细胞分散，然后加入新鲜的培养液，再用吸管轻轻吹打成细胞悬液（尽可能不要出现泡沫，否则对细胞有损伤1.4、 分装稀释细胞1.4.1、 将细胞悬液吸出分装至2-3 个培养瓶中，加入适量培养基旋紧瓶盖。1.4.2、 倒置显微镜下观察细胞量，必要时计数。注意密度过小会影响传代细胞的生

6、长，传代细胞的密度应该不低于5Xl05/ml。最后在瓶上做好标记，如细胞代数、日期及姓名等。1.5、 继续培养：1.5.1、 用酒精棉球擦拭培养瓶，适当旋松瓶盖，放入CO2 培养箱中继续培养。传代细胞2 小时后开始贴附在瓶壁上。当生长细胞铺展面积占培养瓶底面积25时为一个，占50为，占75时为。2、悬浮细胞的传代悬浮细胞可以直接将培养瓶中的液体吸掉，只留下少量，然后加入新鲜培养液即可。 当细胞悬液中碎片或颗粒物较多，感觉到比较脏时，可以将悬液移到离心管，10001500rpm离心3分钟，弃上清，加入约2ml培养液，吹打至均匀，滴加2-3 滴至已加入新鲜培养液的培养瓶中。然后置于二氧化碳培养箱中

7、培养（拧松培养瓶盖）。三、细胞的冻存细胞冻存的原则是要逐步缓慢降温，以避免细胞部形成冰晶对细胞造成伤害。1、具体操作如下：1.1、 从增值期到形成致密单层以前的细胞都可以用于冻存，但最好选择对数增长期细胞，已长满的细胞冻存复后生存率低。在冻存前一天最好换一次培养液。1.2、 贴壁细胞经消化、离心（10001500rpm , 5min）收集，悬浮细胞经离心收集；1.3、 大约106个细胞加入1ml冻存液（10%DMSO+90%血清），用吸管吹打，使细胞分散成单细胞悬液；1.4、 加入到冻存管中，每个冻存管加1 1.5ml 的细胞悬液；密封；1.5、 在冻存管上标明细胞名称及冻存日期；1.6、 将

8、冻存管直立放置于塑料盒或纸盒，管置于4半小时，然后置于-20 两小时，再置于-70 两小时，然后置于液氮上过夜；第二天将细胞置于液氮中；1.7、 记下冻存管存放的位置，作好冻存记录（冻存的细胞名称、代数、冻存日期等）。2、注意事项：2.1、 使用DMSO 前，不需要进行高压灭菌，它本身就有灭菌的作用。高压灭菌反而会破华它的分子结构，以至于降低冷冻保护效果。在常温下，DMSO 对人体有害，故在配制时最好戴上手套操作。2.2、 不宜将冻存细胞放置在0c-60 C这一温度围过久，低温损伤主要发生在这一温度区，是“危险温区”。2.3、 注意定期检查液氮罐液氮量，及时添加。2.4、 细胞在液氮中贮存的时

9、间理论上是无限的。但为妥善起见，特别是很多未被冻存过的细胞在首次冻存后要在短期复一次，观察细胞对冻存的适应性。已建系的细胞最好也每年取一支复一次后，再继续冻存。四、细胞计数实验原理：当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中 的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。具体操作如下：1、准备工作：取一瓶传代的细胞，按上述二的传代法繁殖细胞，待长成单层后以使用。2、细胞悬液制备：细胞悬液的制备法：用0.25%的胰蛋白酶液消化、PBS液洗涤后，加入培养液（或Hanks液或PBS等平衡盐溶液），吹打制成待测单细胞 悬液。3、细胞计数：2.1、 盖好盖玻片：取一套血球计数板，将

10、特制的盖玻片盖在血球计数槽上。2.2、 制备计数用的细胞悬液：用吸管吸适量细胞悬液（如5 滴）到一离心管中，加入等体积台盼蓝染液（0.4）或苯胺黑，活细胞不会被染色，加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。若仅是单纯的进行细胞计数，不考虑细胞的活力，则可省略台盼蓝染色步骤。2.3、 、将细胞悬液滴入计数板：将待测细胞悬液吹均匀，然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入，要保证盖片下充满悬液，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。2.4、 统计四个大格的细胞数：将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察，并移动计数板，当看到镜中出现计数格后，数出四角的四个大格（每个大格含有16个中铬）中没有

11、被染液染上色的细胞数目。2.5、 计算原细胞悬液的细胞数:按照下面公式计算细胞密度：（细胞悬液的细胞数）/ml=（四个大格子细胞数/4） X2X104说明：公式中除以4 因为计数了4 个大格的细胞数。公式中乘以2 因为细胞悬液于染液是1 ： 1 稀释。公式中乘以104 因为计数板中每一个大格的体积为：1.0mm （长）x 1.0mm （宽）X0.1mm （高）=0.1mm3 ；而 1ml = 1000mm3细胞计数要点：进行细胞计数时，要求悬液中细胞数目不低于104个/ml,如果细胞数目很少要进行离心再悬浮于少量培养液中；要求细胞悬液中的细胞分散良好，否则影响计数准确性。取样计数前，应充分混匀

12、细胞悬液，尤其时多次取样计数时更要注意每次取样都要混匀，以求计数准确；数细胞的原则是只数完整的细胞，若细胞聚集成团时，只按照一个细胞计算。如果细胞压在格线上时，则只计上线，不计下线，只计右线，不计左线。操作时，注意盖片下不能有气泡，也不能让悬液流入旁边梢中，否则要重新计数。注：4台盼蓝母液的配制：称取 4 克台盼蓝，加入少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100 毫升，用滤纸过滤，4 c保存。使用时，用PBS稀释至0.4%。五、细胞活力的测定1.染料排斥试验：其原理是细胞损伤或死亡时，某些染料可穿透细胞膜，与解体的DNA结合，使其着色。而活细胞则能阻止该染料进入细胞。借此可鉴别死细胞和活细胞。常用的染料

13、有台盼蓝、伊红 Y和苯胺黑等。以台盼蓝染色为例。步骤同上述细胞计数的操作步骤。注意以下几点:计数：在310min,用血球计数板分别计数活细胞和死细胞（死细胞被染成淡蓝色，活细胞则拒染）。台盼蓝染色时，时间不宜太长，否则活细胞也会着色，从而干扰计数。活细胞率（）=活细胞总数/（活细胞总数十死细胞总数）X100%2、MTT比色实验：可测定测药物或病毒的IC50原理：活细胞线粒体琥珀酸脱氢酶催化四甲基偶氮噪盐（MTT）,还原成紫色不溶性结晶物，沉积于细胞中。用酸性异丙醇或DMSO 溶解后，于酶标仪上测定光吸收值。紫色不溶性结晶物形成的多少与活细胞数目和功能状态相关。2.1、 将细胞接种于96板上，密

14、度为大约105个/ml,每接种100此2.2、 培养至对数生长期加入待测样品；2.3、 作用一定的时间之后，加入三蒸水配制的 5闵/ml的MTT溶液，每20此2.4、 37温育 4小时；2.5、 取出培养板，小心吸去上清，注意不要吸掉底部的蓝紫色沉淀；如果是悬浮细胞则用板离心机离心后除去上清；2.6、 每加入100出的DMSO,摇床上摇动30分钟以使沉淀溶解；2.7、 用酶联免疫检测仪（DNA Expert）在595nm （或490nm）波长处检测96 平板中每细胞的光密度值（ OD 值），按下列公式计算药物或病毒对细胞生长的抑制率：细胞存活率（）=治疗组 OD值/对照组OD值X100%2.8

15、、 求出各药物（或病毒）浓度下的OD 值占对照OD 值的百分比，用此百分比对药物（或病毒）浓度作图；在所得的曲线上，百分比值为50时所对应的浓度就是IC50值。或根据各浓度下细胞的存活率，采用Logit法计算IC50。六、细胞的运输装运细胞的法有两种：1、冷冻贮存运输即利用特殊盛液氮或干冰冻存，保存效果较好，但较麻烦，且不能长时间运输，多需空运。2、充液法2.1、 选生长状态良好的细胞，去掉培养液，充满新培养液，液量要达到培养瓶颈部，拧紧螺帽或塞以胶塞，保留微量空气。若空气留量过多，运输时大气泡来回流动对细胞有干扰作用。2.2、 妥善包装、运输。一般在四五天到达目的地，对细胞活力无多大影响，时

16、间过长则细胞活力下降。2.3、 到达目的地后，倒出大部分培养液，保留维持细胞生长所需的液量，置37培养, 次日传代。注：从其他研究室所取细胞时，应注意了解细胞的性状、培养液、培养时的注 意事项等【 细胞转染】一、脂质体转染（Lipofetmiane 2000 ）1、转染前细胞的处理（以24 板培养为例）：贴壁细胞：在转染前一天，在 24板铺上0.5X105细胞，500ul无抗生素培养基 培养一天，到转染时使细胞达到 80%90%的汇合率。悬浮细胞在制备混合物前，将48X105细胞用无抗生素培养基培养铺铺于 24 板。2、转染法（以质粒DNA转染为例）2.1、 将 DNA 质粒溶于 50ul 无

17、血清的 OptiMEM I Reduced Serum Medium 中。混合均匀。2.2、 将适量Lipofectamine 2000溶于50ul无血清的Opti MEM I中，混合均匀。在室温下孵育5 分钟（在25 分钟进行步骤c）。2.3、 孵育5分钟后，将上述两种混合物混合（总体积100ul）。轻轻混合均匀在室温下孵育25 分钟（可能出现雾状沉淀）。复合无在室温下六小时稳定。2.4、 在24板中每加入100ul 的复合物以及适量培养基。十字法混合均匀。2.5、 细胞在37。C CO2培养箱中培养18 48个小时后，测量转染效率。在加完复合物4 6 小时候可更换培养基。3、转染注意事项3

18、.1、 转染格来说，每种细胞的条件是不一样的，如果实验时，不能确定最佳转染条件，请在细胞实验组共享文件夹查找类似细胞的转染法；3.2、 转染结果的好坏，与DNA 质量密切相关，务必在实验之前对去毒素质粒DNA 的质量进行格鉴定，至少采用以下两种法：琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度检测，如果有条件，可对质粒DNA 去毒素质量的进行检测。细胞相关实验操作法【小量细胞样品TotalRNA的提取法】一、实验步骤（以细胞为例）1.1、 细胞样品（1.0X107个）去上清之后，加入1ml TRIzol溶液反复吹打至溶 液清亮，转移入1.5ml Tube中室温下放置10min ,如不能立即提取则放于-80 C

19、保存（可保存一个月），提取时取出放于室温融化；也可按照正常冻存法保存1X107个细胞，提取时37c迅速融化，5000rpm离心3min去除上清液后迅速加 入 1ml TRIzol 溶液反复吹打至溶液清亮，室温下放置10min；1.2、 加入200ul 氯仿（ 1/5TRIzol 体积），先用枪混匀10-15 下，再充分颠倒混匀2min ,使两相充分混合，室温静置 3min ;1.3、 4C、10000g （12000rpm）离心 15min;1.4、 小心吸取上清（中间有厚厚的蛋白层）至一新的1.5ml Tube 中（可取干净），加入0.5ml 异丙醇（1/2 TRIzol 体积）先用枪混匀1

20、0-15 下，再充分颠倒混匀2min ,室温放置10min;1.5、 4C、10000g （12000rpm）离心 10min;1.6、 小心吸去上清液（注意不要吸起白色沉淀），加入1ml 70%乙醇（-20 预冷）旋转漂洗RNA沉淀；1.7、 4 C、10000g （12000rpm）离心 5min;1.8、 小心吸去上清液，空气中干燥 2-3min ,加入84ul DEPC水充分溶解RNA （如溶解困难，4c放置过夜）；将RNA稀释5倍，电泳，（若是对RNA的质量要求不高，做到这一步即可，以下是纯化的步骤）依次力口入 2ul RNase Inhibitor <40U/ul >

21、, 10ul 10 xDNase I Buffer, 4ul DNase I RNase Free5U/ul ，充分混匀后37反应60min；1.9、 补力口 200ul DEPC水至总体积300ul,再力口入300ul PCI （DEPC水饱和）， 充分混匀 5min,室温 10000g （12000rpm）离心 10min;1.10、 小心取上清（几乎看不见中间层，取的较干净）于一新的1.5ml Tube 中，再加入 300ul CI,充分混匀 5min,室温 10000g （12000rpm）离心 10min;1.11、 小心取出上清液（几乎看不见中间层，取的较干净）于一新的1.5ml

22、Tube中，加入30ul 3M CH3COONa 充分混匀1min 后加入 750ul 无水乙醇（-20 预冷），充分混匀2min ， -20 放置 40min；1.12、 4C、10000g （12000rpm）离心15min,小心取出上清（可用枪取干净）；1.13、 加入1ml 70%ZJI （ DEPC水配制）（-20 C预冷），旋转振荡清洗 RNA 沉淀，4C、10000g （12000rpm）离心 10min ;1.14、 小心吸去上清液，室温干燥 2-3min ,加入80ul DEPC水溶解；1.15、 分别取2ul RNA溶液溶于10ul DEPC水中，混匀后各取出5ul进行1%

23、 脂糖凝胶电泳，根据电泳结果判定 RNA是否有降解；1.16、 按照电泳结果估计 RNA浓度，按比例使用TE Buffer （PH 8.0）稀释到0.3至 0.5OD 吸光度围；二、实验注意事项1.1、 整个实验过程中应该使用橡胶手套和口罩，实验前，使用70%乙醇擦拭双手和工作台以及实验用品；1.2、 实验用试剂必须保证质量，对pH 值有要求的必须以灭菌后的测量值为准；1.3、 贵重的样品，抽完之后，必须取出一定量作为实验室保存；1.4、 必要时，可以将枪头剪掉一部分使用，以免 RNA大量断裂。【PBS溶液的配制使用以及保存法】一、试剂用途实验中主要用来溶解稀释固体试剂，形成含有缓冲体系的盐离

24、子溶液二、配制，使用和保存法1、溶液配制按1L的标准量配制称取下列药品：NaCl 8.0gNa2HPO4 1.15gKCl 0.2gKH2PO4 0.2g溶解、定容，使用实验室用超纯水；2、除菌实验室采用过滤灭菌，使用0.22即的除菌膜；4保存。3、使用使用过程中应该保证格的无菌操作，为了防止污染，可用50ml 无菌离心管对dPBS进行分装。【抗生素配制使用以及保存法】一、原核细胞用抗生素细胞培养相关实验中，为了防止培养过程中出现细菌污染，需要在培养基中添 加双抗，即青霉素和链霉素。1、药物使用浓度根据细胞种类的不同，一般（P/S）的终浓度保持在100U/ml,具体的实验过程 中，可以根据细胞

25、对抗生素的敏感程度减少或增加双抗用量，原则来说，抗生素的使用围为：50U/ml-200 U/ml 。2、药物配制法（干粉状的抗生素）2.1、 药物溶解使用少量的dPBS溶液溶解干粉状的抗生素，溶解过程中，应尽量减少 dPBS的用量，使药物保持在较高浓度；2.2、 溶液除菌使用0.22 g的除菌膜过滤，然后分装，-20 C保存。2.3、 日常使用按实验要求的终浓度将抗生素溶液添加到培养基当中，注意无菌操作。2.4、 注意事项总的原则是现用现配，尽量减少溶液反复冻融次数，防止抗生素失效；培养基最好是现用现配，在含有血清的完全培养基中，添加抗生素，应4c保存且有效使用期不能超过1 个月。抗生素并非越

26、多越好，在实验细胞条件不明确之前，应该先从最小使用量开 始。二、真核细胞用抗生素本实验室现在常用的真核用筛选标记物主要有两种：neomycin( G418) 和Puromycin ,实验中主要用来筛选细胞稳定株或者阳性细胞群落。1、药物配制和保存法如下：药品 保存 溶液配制G418 Prepared in a highly buffered solution (e.g. 100 mM HEPES, pH 7.3, or cell culture medium).本实验室使用dPBS， pH 7.3固体保存：SHELF (+20° C). This product is stable

27、for 2 years液体保存： Following reconstitution, sterilize by filtration through a 0.22 即 or 0.45 gm pore size filter, aliquot and freeze (-20 C) for long term storage or refrigerate (+4 °C) for short-term storage. assupplied. Sterile stock solutions are stable for at least 1 year at +4 ° C.Hygr

28、omycin B Sterile-filtered at 50 mg/ml active antibiotic in PBS; Sterile- filtered at 50 mg/ml active antibiotic in 50mM HEPES, PH7.2. 本实验室使用 dPBS， pH 7.3 固体保存：Storage at 4， is stable for 2-3years assupplied.Puromycin Soluble in H2O ( 50 mg/ml ) or methanol (20 mg/ml)本实验室使用dPBS， pH 7.3固体保存：Freezer(-20 ).Protect from moisture. Followingreconstitution,sterilize by filtration through a 0.22 um pore-size filter,aliquot and freeze (-20 ).This product is atable