葡萄成熟度对‘赤霞珠’葡萄酒酚类物质及抗氧化能力的影响

1、葡萄成熟度对赤霞珠葡萄酒酚类物质及抗氧化能力的影响酚类物质是广泛地存在于自然界植物体中的次生代谢物之一。葡萄中酚类物质通过生化合成反应生成，并在浆果发育的过程中进行积累和贮存1。葡萄果实的酚类物质组成及含量和成熟度有极大的相关性，葡萄采收时的成熟度也影响葡萄酒的品质2。目前，酿酒企业通常将葡萄的糖酸含量作为成熟度的判断依据，而现在果实酚类物质的积累程度在成熟度的判断中也越发重要。葡萄酒中的酚类物质对人体产生的自由基有较强的清除作用，且葡萄酒的抗氧化能力可达到维生素E的20倍，甚至是维生素C的50倍3。现有研究表明，由于酚类物质含有供氢基团，有较强提供氢质子的能力，可通过电子转移使活跃自由基形成

2、稳定自由基，从而阻止新自由基的产生4。葡萄酒中酚类物质组成和含量的不同以及它们之间的协同作用会造成酒体抗氧化能力的差异5。花色苷的共轭结构使其具有抗氧化的功能，酰基和糖苷键的数量以及羟基化和甲基化程度的不同，会影响花色苷抗氧化能力的稳定性6。黄酮醇和黄烷-3-醇类物质的抗氧化能力受到物质结构的影响，其中B环发挥着重要作用，C环起次要作用，而A环的能力最弱，并且不同羟基所在位置的不同，清除自由基的能力也会不同7。新疆天山北麓产区位于北纬43 45的区域，处于天山北麓中段，准葛尔盆地南缘，是种植酿酒葡萄的“黄金地带”，而石河子产区是其中的优质酿酒葡萄种植产区8。本实验使用新疆天山北麓石河子产区不同

3、成熟度赤霞珠葡萄酒为原料，利用超液相色谱-串联质谱(ultra performance liquid chromatography tandem mass spectrometry，UPLC-MS/MS)检测葡萄酒的酚类物质，并测定葡萄酒的抗氧化能力，使用主成分分析(principal component analysis，PCA)和相关性分析寻找两者之间的关联性，从而确定不同成熟度葡萄酒之间酚类物质和抗氧化能力的特征性和差异性，为新疆天山北麓石河子产区改善葡萄酒的品质提供理论参考。1 材料与方法1.1 材料与试剂选取石河子市张裕巴保男爵酒庄2022年赤霞珠酿酒葡萄为试材。当葡萄可溶性固形物含

4、量 (total souble solids，TSS) 达到21、23、25、27 Brix时采摘，并进行酿酒实验。酒样为B21、B23、B25、B27 (B21：葡萄TSS达到21 Brix所酿葡萄酒；B23：葡萄TSS达到23 Brix所酿葡萄酒；B25：葡萄TSS达到25 Brix所酿葡萄酒；B27：葡萄TSS达到27 Brix所酿葡萄酒，下同)。果胶酶、F15酵母，法国Laffort公司；DPPH，上海麦克林生化科技公司；无水乙醇、甲醇、铁氰化钾、磷酸二氢钾、磷酸氢二钾、三氯化铁、三氯乙酸、过硫酸钾、过氧化氢等均为国产分析纯。1.2 仪器与设备T6紫外可见分光光度计，北京普析通用仪器有

5、限责任公司；SF-TGL-20R高速离心机，上海安亭科学仪器厂；WineScan flex检测仪，丹麦福斯公司；FD-1A-50台式真空冷冻干燥机，上海比郎仪器制造公司；HZSH型水浴振荡器，上海思蘭达科学仪器有限公司；RE-52AA型旋转蒸发器，上海星宋科学仪器公司；PAL-2手持糖度计，日本ATAGO公司；ACQUITY UPLC H-Class超高效液相色谱仪，美国Waters公司。1.3 实验方法1.3.1 葡萄酒的酿造葡萄采收后剔除叶片、霉烂及生青果，除梗破碎置于3 L不锈钢罐 (装填体积约为80%)，添加60 mg/L SO2，40 min后加果胶酶200 mg/L，在5 条件冷浸

6、渍24 h，接种F15酵母200 mg/L启动酒精发酵，发酵温度保持在2426 ；酒精发酵结束接入乳酸菌，启动苹乳发酵；苹乳发酵结束后皮渣分离，添加60 mg/L SO2后装瓶。酿造过程使用相同工艺，酒样符合GB/T 150372022葡萄酒对干红葡萄酒的要求。每个处理设置3个生物平行，在苹乳发酵结束后取样，取样量为250 mL3，并置于-20 冰箱保存。1.3.2 葡萄与葡萄酒基本理化指标测定葡萄可溶性固形物 (手持折光仪)；总酸 (以酒石酸计)；葡萄酒基本理化指标参照GB/T 150382022测定，每个样品做3组技术平行。1.3.3 单体酚的测定 花色苷酚色谱条件：色谱柱ACQUITY

7、UPLC BEH C18(100 mm2.1 mm，1.7 m，Waters)；流动相：A相(乙腈)，B相(0.2%甲酸)；流速0.3 mL/min；进样量5 L；柱温45 ；检测波长520 nm；洗脱梯度:015 min，4%16% A；1520 min，16%30% A；2025 min，30%40% A；2527 min，40%80% A；2727.1 min，80%4% A。质谱条件：电喷雾离子源(electron spray ionization，ESI)，正离子模式，离子扫描范围501 500m/z；雾化器压力30 psi；干燥气温度为325 。 非花色苷酚色谱条件：色谱柱ACQU

8、ITY UPLC BEH C18(100 mm2.1 mm，1.7 m，Waters)；流动相：A相(乙腈)，B相(0.2%甲酸)；流速0.3 mL/min；进样量1 L；柱温45 ；检测波长280 nm和320 nm；洗脱梯度：洗脱梯度：08 min，5%10% A；815 min，10%20% A；1520 min，20%30% A；2022 min，30%60% A;2225 min，60%80% A；2527 min，80%100% A；2727.1 min，100%5% A。质谱条件：ESI，正离子模式，离子扫描范围501 200m/z；雾化器压力20 psi；干燥气温度为325 。

9、1.3.4 葡萄酒抗氧化能力测定 DPPH自由基清除能力测定DPPH自由基清除能力参照王晓宇9的方法。0.1 mL酒样加入3.9 mL DPPH 甲醇溶液，避光反应30 min后在517 nm测定吸光值，记为A样品。对照以相同体积15%乙醇代替酒样，吸光值记为A空白。DPPH 自由基清除率计算如公式(1)所示：DPPH自由基清除率(1) 铁离子还原力测定铁离子还原力(ferric ion reducing antioxidant power，FRAP)测定参照王晓宇9的方法稍作改动。试管中加入1 mL酒样、2.5 mL缓冲液、2.5 mL 1% K3Fe(CN)6溶液，50 水浴20 min后

10、快速冷却，加入2.5 mL 10%三氯乙酸溶液，在3 000 r/min下离心10 min，吸取5 mL上清液，加入0.1%的三氯化铁溶液0.5 mL和5 mL蒸馏水，静置30 min后在700 nm测定吸光度，表示铁离子还原能力。1.4 数据分析数据重复3次取平均值，利用SPSS 20.0统计软件对数据进行统计分析；通过绘图软件Origin Pro 2022b进行绘图。2 结果与分析2.1 葡萄果实与葡萄酒基本理化指标供试葡萄果实的基本理化指标和农艺性状如表1所示。随着采收日期的推移，葡萄的可溶性固形物得到积累。葡萄果实中的pH值未有明显变化，可滴定酸含量从8.86 g/L降至7.01 g/

11、L，造成这种变化是由于可滴定酸在葡萄果实成熟过程中被降解导致含量的下降10。葡萄百粒重随着成熟度上升而逐渐降低且差异显著(P0.05)，这与葡萄成熟后期的水分散失有关11。果皮质量、种子质量和种子数的差异性(P0.05)较为明显，主要是葡萄生长环境的平均气温、有效积温、日照时数、年均降雨量等因素所造成12。表2为葡萄酒的基本理化指标，采收日期的推迟使葡萄醪的可溶性固形物含量上升，进而导致酒体酒精度明显增加(P0.05)，这是酿酒实验中的普遍现象10。还原糖含量未有明显变化，但是总酸含量下降且差异显著(P0.05)，这种变化的原因是果实成熟过程中的酸分解代谢增强，酸类物质转化为其他物质13。表1

12、 葡萄果实基础理化和农艺性状Table 1 Physical and chemical criterion and agronomic traits of grape注：同一指标不同样品间字母不同代表差异显著(P0.05)(下同)表2 葡萄酒基本理化指标Table 2 Physical and chemical criterion of red wines2.2 葡萄成熟度对葡萄酒中酚类物质的影响2.2.1 花色苷物质花色苷是葡萄酒中酚类物质的重要组成，也是赋予酒体色泽的呈色物质。由表3可知，共检出12种花色苷物质，其中花青素类3种、花翠素类2种、甲基花青素类3种、甲基花翠素类2种、二甲花翠素

13、类2种。酒体的总花色苷含量如表3所示，随着葡萄成熟度的上升显著提升(P0.05)，4个酒样中总花色苷含量最低是B21 (1 636.53 mg/L)，含量最高为B27 (3 824.86 mg/L)，B23 (2 421.07 mg/L)和B25(2 425.49 mg/L)的含量相近，且差异不显著(P0.05)。高成熟度葡萄酒展现出高于低成熟度酒体的总花色苷含量，随着葡萄果实生长发育以及花色苷的积累，导致在较高成熟度葡萄酒中含量的增加14。同时葡萄过熟时的水分散失导致的浓缩效应也会产生同样的结果15。花青素类和花翠素类物质含量呈现下降趋势，二甲花翠素类物质则表现上升趋势，而甲基花青素类则为先

14、降后升的趋势。花翠素、甲基花青素、花青素乙酰化和花青素香豆酰化在B21中含量较高；而B27中甲基花翠素、甲基花翠素乙酰化、二甲基花翠素、二甲花翠素乙酰化、甲基花青素乙酰化和甲基花青素香豆酰化的物质含量显著高于其他样品(P0.05)。图1-a显示葡萄酒中不同修饰组分花色苷的含量，3类不同修饰组分花色苷含量均有显著差异(P0.05)，含量大小为：乙酰化未酰化香豆酰化。香豆酰化花色苷在酒中含量随着葡萄成熟度上升而缓慢降低，乙酰化和未酰化花色苷含量则与之相反，并在B27的酒体中表现为最高含量。不同修饰组分花色苷在酒体中的积累会随着果实的逐渐成熟而增加，这与CADOT等16研究不同采收期酿造葡萄酒中不同

15、修饰组分的变化趋势一致。2.2.2 黄酮醇物质黄酮醇是葡萄及葡萄酒中重要的酚类组成，主要包括槲皮素、山奈酚、杨梅酮及其相应衍生物。表3显示，酒中总黄酮醇含量随着成熟度的上升含量降低，可能是新疆地区光照强度高，黄酮醇在受到强光照射时分解，导致黄酮醇在成熟后期的含量降低17。黄酮醇含量在B21 (659.31 mg/L)达到最高，之后在B27 (287.51 mg/L)达到最低。共检测到黄酮醇物质10种，杨梅酮类2种，槲皮素类4种，山奈酚类4种。黄酮醇单体物质中杨梅酮-3-O-葡萄糖苷和槲皮素-3-O-半乳糖苷的含量在B21达到最高；B23酒体中槲皮素-3-O-葡萄糖苷酸和丁香亭的含量显著增加(P

16、0.05)；B25中槲皮素-3-O-葡萄糖苷、槲皮素、山奈酚-3-O-葡萄糖苷和山奈酚-3-O-半乳糖苷的含量高于其他酒样；而在B27中，除了山奈酚-3-O-葡萄糖苷显著增加，其他黄酮醇类物质含量都显著低于(P0.05)前三者。图1-b显示由于葡萄成熟度的增加，槲皮素类物质在酒中含量显著降低(P0.05)，从642.79 mg/L下降到269.26 mg/L；山奈酚类物质含量则呈现先上升后下降的变化，在B25中物质含量上升到最高18.19 mg/L；杨梅酮类物质未有显著的含量变化。槲皮素类物质占主要成分，并且在高成熟度葡萄酒中含量较低。主要是葡萄果实中的槲皮素在转色期和成熟期之间达到峰值后含量

17、会不断下降，因此在果实成熟后期槲皮素类表现为低含量的情况18。2.2.3 黄烷-3-醇物质黄烷-3-醇类化合物是葡萄酒中重要的类黄酮化合物，为葡萄酒提供苦味和收敛性。由表3可知检测出5种黄烷-3-醇物质，酒体中的总黄烷-3-醇含量随着果实成熟度上升而降低，在B21总量达到最高1 624.89 mg/L，而B25则含量最低，为1 075.28 mg/L，且差异显著(P0.05)。总黄烷-3-醇含量的下降主要是果实成熟后期黄烷-3-醇中的单体物质通过聚合作用生成聚合物，导致从葡萄果实进入葡萄酒中黄烷-3-醇含量的减少19。图1-c显示，随着葡萄成熟度的上升，儿茶素和原花青素B2表现为先降低后上升的

18、趋势，而原花青素B1则是先升后降，没食子儿茶素和表没食子儿茶素呈现出逐渐升高的变化。儿茶素在B21 (1 434.67 mg/L)含量最高，并显著高于其他酒样(P0.05)；B23与B25的没食子儿茶素和原花青素B1的含量相近；B27中没食子儿茶素和原花青素B2的含量为最高，分别达到了4.96 mg/L和7.69 mg/L。表3 葡萄酒的酚类物质含量 单位：mg/LTable 3 Phenolic contents in winea-花色苷类；b-黄酮醇类；c-黄烷-3-醇类图1 葡萄酒的酚类物质组成及含量Fig.1 Composition and content of phenolic in

19、 wine注：同一指标不同样品间字母不同则代表差异显著(P0.05)(下同)2.2.4 酚类物质PCA为更好的分析不同成熟度葡萄酒与酚类物质的关系，对不同的酚类物质进行PCA。花色苷PCA如图2-a所示，主成分1 (PC1)和主成分2 (PC2)共同解释总方差97.92%，可解释变量的变化情况。PC1和PC2将酒样区分在3个象限内，B23和B25在第2象限，B27则在第3象限，第4象限是B21。B21的相对含量较高的物质是未酰化花色苷，其中花青素、花翠素、甲基花青素和甲基花翠素的相对含量较高；B23和B25酒体中乙酰化花色苷相对含量较高；B27中二甲花翠素类物质是相对含量较高。黄酮醇PCA如图

20、2-b所示，PC1和PC2共同解释总方差 97.84%，可以说明总体情况。PC1和PC2基本能将4种葡萄酒区分。槲皮素位于x轴负半轴，山奈酚和杨梅酮则位于x轴正半轴。槲皮素类物质在B21和B23的相对含量丰富；在B25酒体中的山奈酚类相对含量丰富；杨梅酮类物质则在B27中表现相对含量较丰富。黄烷-3-醇的PCA如图2-c所示，反应不同成熟度葡萄酒与各类黄酮醇物质的对应关系，PC1和PC2解释总方差97.73%，可解释整体变化。PC1和PC2基本能将不同成熟度葡萄酒区分。儿茶素处于x轴负半轴，没食子儿茶素、原花青素B1和原花青素B2处于x轴正半轴。B21中儿茶素的相对含量高；原花青素B1和表没食

21、子儿茶素对B23和B25的相对含量高；酒体中原花青素B2和没食子儿茶素在B27的相对含量高。a-花色苷类；b-黄酮醇类；c-黄烷-3-醇类图2 葡萄酒的酚类物质PCAFig.2 Principal component analysis of wine phenolics2.3 葡萄成熟度对葡萄酒抗氧化能力的影响本实验通过DPPH自由基清除能力和FRAP来评估不同成熟度酒样的抗氧化能力。DPPH自由基的醇溶液呈紫色并含单电子自由基，可与抗氧化物质产生褪色反应，使用紫外分光光度计进行测定20。FRAP是检测葡萄酒是否为良好的电子供应者，抗氧化物质通过自身还原作用提供电子达到清除自由基的目的，还原能

22、力越强抗氧化能力越强21。由于不同的抗氧化能力测定方法的原理不同，所以会造成结果上的差异。由图3可知随着成熟度的增加，DPPH自由基清除率呈现下降趋势，FRAP却为上升趋势。B23和B25的测定结果相近，而B21和B27则差异明显。对于DPPH自由基清除率而言，B21、B23和B25的DPPH自由基清除率均达到75 %以上，B27的清除率最低为55%，主要是B27中花色苷含量较高，花色苷物质的酰基和糖苷键的形成可提升分子结构稳定性，从而降低清除DPPH自由基的活性22。FRAP的数据显示，B21表现接近于B25的还原能力，B21的黄酮醇和黄烷-3-醇的含量高于其他酒样，并且黄酮类化合物螯合Fe

23、3+最有效位点为C6OH、C7OH结构，C3OH、C5OH与C4位置羰基能会在一定程度上增强螯合能力23，这是导致B21展现出B25相似的还原能力。抗氧化能力测定表明，不同成熟度葡萄酒的抗氧化能力存在显著差异，而这种差异是抗氧化活性物质的含量和组成的不同所导致。有研究人员发现花色苷含量的增加会使DPPH自由基清除率降低，同时DPPH自由基清除能力与酒体中黄酮醇有较高相关性。儿茶素和槲皮素对DPPH自由基清除活性最高，表现较强的抗氧化活性24-25。本研究中B20的DPPH自由基清除率最高，而B27为最低。B27酒体中黄酮醇和黄烷-3-醇的含量低于其他酒样，但是花色苷物质含量则较高于其他酒样。因

24、此推测，酒体中黄酮醇和黄烷-3-醇含量对DPPH自由基清除率的有较大影响，而花色苷的影响则较小。章萍萍26在对花色苷抗氧化作用的研究中证实酰基的存在可以一定程度上提升花色苷的抗氧化能力，酰基可以提高其自身的FRAP。本研究中相关性分析表明FRAP与酒体中花色苷乙酰化有显著相关性，B23、B25和B27酒样中的花色苷乙酰化含量均高于B20，因此影响不同成熟度葡萄酒的FRAP的主要物质是花色苷乙酰化类物质。图3 葡萄酒的抗氧化能力Fig.3 Antioxidant activity of wine2.4 葡萄酒酚类物质含量与抗氧化能力相关性分析为了解葡萄酒酚类物质与其抗氧化能力的内在联系，分别对葡萄酒中酚类物质含量与抗氧化结果进行Pearson相关性分析。相关性结果如图4所示(/kcms/detail/11.1802.TS.20221117.1017.001.html)，花青素、甲基花翠素、花青素香豆酰化、杨梅酮、原花青素B2与DPPH自由基清除率呈现显著负相关(P0.05)，但是同FRAP则呈现显著正相关(P0.05)。二甲花翠素、甲基花翠素乙酰化、甲基花青素乙酰化、二甲花翠素乙酰化