水生生物分类鉴定实习课件

水生生物的分类鉴定

调查实习周课件水生生物的分类鉴定

调查实习周课件1提纲一.实习目的二.实习内容三.采样点布设四.标本固定保存药品五.实习器材及使用方法六.样品采集及分析方法七.实习报告的书写提纲一.实习目的2一.实习目的1.巩固课堂教学理论知识、丰富教学内容，达到理论与实际相结合的目的。2.初步掌握一般水生生物的调查研究方法，培养独立工作的能力。3.学会水生生物标本的采集、固定和鉴定方法，扩大知识范围。4.增强团队协作能力.一.实习目的1.巩固课堂教学理论知识、丰富教学内容，达到理3二.实习内容1.了解湖泊、池塘的一般形态和性质：

如湖泊四周的环境、面积和水深、底质、水源、进出水口的位置及数量、水温、pH、透明度及水色等。2.对湖泊、池塘的生物环境展开定性定量调查：

浮游生物、底栖生物的定性定量采集。3.对湖泊的理化环境因子进行测定：

如水深、水温、pH、透明度及水色等。4.对湖泊周边水域的生物多样性展开调查：

如水生微管束植物、水生昆虫等。二.实习内容4三采样点布设三采样点布设5四.标本固定保存药品1.福尔马林(一般4%)

福尔马林即为36％的甲醛溶液;4％的福尔马林溶液即96ml水+4ml福尔马林配制而成。2.碘液(鲁哥氏碘液Lugel’s)（15％）

6gKI+4gI2配置成100ml溶液，碘液固定的标本形态构造保存较好。但易挥发，故最好再加入2－4％的福尔马林固定。3.苦味酸固定液(波恩氏固定液)100ml蒸馏水中溶入苦味酸晶体使之成饱和液，取75ml+25ml福尔马林+3ml冰醋酸即成。固定的标本组织保存较佳，细胞变态少。4.酒精(70-80%)

底栖动物如螺、蚌、虾、蟹等最好用70－80％的酒精固定保存。四.标本固定保存药品1.福尔马林(一般4%)6五.调查所需器材及使用方法1.透明度盘8.浮游植物计数框2.表面水温计9.浮游动物计数框3.浮游生物网10.目测微尺和台测微尺4.采水器11.微量移液器5.三角拖网12.扭力或托盘天平6.采泥器13.溶氧测定仪7.浮游生物浓缩器14.便携式pH计五.调查所需器材及使用方法1.透明度盘71.透明度盘（萨氏盘）

用厚铁皮剪制成直径为20cm的圆板，板的一面用黑、白油漆涂成相互垂直、黑白相间的四等分，中心装一铁环，系上做好刻度标记的绳子。另一面加一个铅锤。

使用方法：

在背光处平放入水中，逐渐下沉至刚好不能看清盘面的白色时，记取其尺度就是透明度。用厘米表示。1.透明度盘（萨氏盘）用厚铁皮剪制成直径为20c82.表面水温计在湖泊水深10米以内测定。构造：

是由一支普通水银温度计安装在一个金属外壳内构成，外壳下部是一个直径为5厘米、高6厘米的金属筒，筒的上部有孔，水可以进出。测定方法：

把栓好标有刻度绳子的水温计放入需测的深度，5分钟后，提取读数，要求正确读出0.1度，温度表离水面到读完时间不超过20秒。2.表面水温计在湖泊水深10米以内测定。9主要用来捞取浮游生物构造：

圆锥形，口径约20cm，网长60－90cm，用直径为4mm的铜条作网圈支持网口。网衣用筛绢缝制。网头用金属套（铜或铝）结在网底。使用方法：

关闭网底开孔，将网放入水中0.5m深处作横8字形来回拖动约3－5分钟，徐徐提起，将水滤去，打开开孔，使浮游生物流入瓶中（60ml）.3.浮游生物网主要用来捞取浮游生物3.浮游生物网10采集不同水层水样，用于浮游植物和浮游动物定量以及叶绿素的测定。采水器有瓶状采水器、筒状采水器和柱状采水器等。本调查采用5L筒状采水器：0.25m高，有机玻璃制作而成。4.采水器采集不同水层水样，用于浮游植物和浮游动物定量以及叶绿素的测定11采集底栖动物定性样品构造：

用铜或铝做成一个每边长约30cm的三角形具齿的架子，套上三角形网袋，架子三个角都装上粗绳，结在一起，用长粗绳上用来拖取底栖生物。5.三角拖网采集底栖动物定性样品5.三角拖网12

采集底栖动物定量样品:

利用一对颚瓣，以绳钩在活钩上，放入湖底。当两颚瓣与湖底接触时，放松拉绳，活钩自然脱落。向上拉绳时将颚瓣拉紧，由于重力关系，颚瓣自然夹拢，将湖泥及底栖生物夹在其中，提出水面，倒入底栖生物过滤网在水中淘洗，干净后倒入白色磁盘，用镊子挑拣全部生物，个体大的放入500ml塑料瓶中，身体柔软的如环节动物等另放在小塑瓶，用5％福尔马林固定，回室内换成75％的酒精保存。6.采泥器（彼得生采泥器）采集底栖动物定量样品:6.采泥器（彼得生采泥器）13浓缩浮游生物定量样品1000ml柱形分液漏斗式的沉淀浓缩器，在1000ml,500ml,50ml,30ml处划有刻度。7.浮游生物浓缩器7.浮游生物浓缩器14在一块较厚的载玻片上有2cm边长的正方形方框，每边长又划分成10等分成100个面积为4平方毫米的小格，四周由0.25mm高的玻璃框围成一个方框，框内体积正好0.1ml.使用时，取0.1ml沉淀的定量样品，盖上盖玻片，注意不要有气泡或使样品溢出。8.浮游植物计数框在一块较厚的载玻片上有2cm边长的正方形方框，每边长又划分成15用于计数轮虫、桡足类的生物量。在一块较厚的载玻片上，有长5cm,宽2cm，高0.1cm的长方形方框，框内面积刚好1ml。9.浮游动物计数框用于计数轮虫、桡足类的生物量。9.浮游动物计数框16目测微尺：一个可以放入显微镜中的圆形玻片，上面有一微形尺。台测微尺：在一特殊的载玻片上刻有1mm分100小格的微型尺。使用时，把目尺放入显微镜目镜内（有刻度的一面向下），台尺放在载物台上，然后计数不同倍数的物镜内，一个台尺的小格为目尺小格的几倍，由于台尺的长度是已知的，就可以推算出在某一放大倍数时目尺一小格的长度为多少。目尺每格长度(um)=（两重叠刻度间台微尺的格数×10um）/两重叠刻度间目微尺的格数。10.目测微尺和台测微尺目测微尺目测微尺：一个可以放入显微镜中的圆形玻片，上面有一微形尺。117垂直握住移液管，将按钮揿到第一停止点，并把吸液嘴浸入到液面下2－3mm，缓慢放松按钮，使之复原，等待1－2秒钟后从液体中取出，并避免碰撞任何东西。将吸液嘴移至加样容器壁上，缓慢地把按钮揿到第二停止点，排尽全部液体，吸嘴在容器壁向上滑动取出后再放松按钮，使之复位，即完成一次操作过程。11.微量移液器垂直握住移液管，将按钮揿到第一停止点，并把吸液嘴浸入到液面下181.浮游生物定性2.浮游植物定量3.浮游动物定量4.底栖动物的定性5.底栖动物定量6.水生微管束植物的采集与标本制作7.标签书写六.样品采集及分析方法1.浮游生物定性六.样品采集及分析方法19清洗浮游生物网,关闭网头开关.把浮游生物网放在0.5m水深处作横8字形来回拖动.注意不要有气泡,转弯处要圆滑,3-5min后起网.用60ml塑料瓶收集所有在网头的浮游生物,加2-3ml的福尔马林液固定,带回实验室,参照有关资料进行分类鉴定记录在本子上.1.浮游生物定性清洗浮游生物网,关闭网头开关.1.浮游生物定性20用5L的桶状采水器，采集0-0.5,1.0-1.5m水层的水样混合后，用1升塑料量杯量取1升入塑料瓶，加10ml碘液、20-30ml福尔马林固定带回实验室。回实验室后，转入1000ml沉淀器，静置沉淀24-48小时后，吸去上清液浓缩至50ml,取样计数。用0.1ml定量加液器吸取均匀浓缩液0.1ml,放在容积为0.1ml的正方形计数框内,用2.22.2cm的盖玻片盖好,注意不要有气泡,在显微镜下分种计数,一般取50个视野.按以下公式计算出浮游植物的密度(个/升)(进入公式)：2.浮游植物定量用5L的桶状采水器，采集0-0.5,1.0-1.5m水层的水21

CsVN(个/升)=

PnFsFnvPn:Fn个视野中浮游植物的个数.Fn:视野数.(50)V:1升水样浓缩后的体积.(50ml)V:计数框体积.(0.1ml)Cs:计数框面积.(400mm2)Fs:每个视野面积.(D=?)Cs22(1)原生动物,轮虫类,无节幼体:

取浮游植物的50ml浓缩匀液中的1ml放在长方形框中全片计数.

1升水样浓缩体积生物密度(个/升)=计数得到的生物个体数计数的标本体积(2)桡足类、枝角类:

把采水器采的10升混合水样,用浮游动物过滤网把浮游动物收集在250ml塑瓶中,用4%福尔马林固定.带回实验室后静置一段时间,吸取上清液,把剩下的水样放在长方形计数框全部计数.

生物密度(个/升)=全部计数个数(个)/10(升)

3.浮游动物定量(1)原生动物,轮虫类,无节幼体:3.浮游动物定量23把三角拖网拉绳的一端固定在调查船上,然后把三角拖网抛入湖中，缓慢拖拉一定距离后提起，在水中摇动冲洗，干净后倒入白瓷盘中挑拣出生物样品，装入500ml塑料瓶中.重复拖2次，样品用5%福尔马林固定.水蚯蚓，蚂蟥等最好先用乙醚进行麻醉，然后用福尔马林固定在另外的小塑瓶内。回实验室进行鉴定后换用75%的酒精保存。4.底栖动物的定性把三角拖网拉绳的一端固定在调查船上,然后把三角拖网抛入24

用开口面积为1/16m2的彼得生采泥器采集底泥，倒入底栖动物网进行清洗。然后倒在白瓷盘上挑拣所有生物，用75%酒精固定。重复2次。带回实验室进行计数，称重。大个体生物用托盘天平称，小的如水蚯蚓等用扭力天平称。

生物密度(个/m2）=计数个体数（个）/（1/16m2

2)=计数个体数8生物重量(g/m2）=称量重/（1/16m2

2）=称量重85.底栖动物定量用开口面积为1/16m2的彼得生采泥器采集底泥，倒25

采集时用竹竿扎上铁钩把水草从根部慢慢钩起，采集时注意保持植物体的完整（有根，茎，叶，花，果实），把采集到的植物体带回实验室逐一分类鉴定，选择一些完整的植株用清水漂洗后铺展在压榨纸上,用标本夹干,日换压榨纸,数日.待标本干后,粘贴在白纸板上,贴上标签,作为永久性保存标本.

标签书写:中文名:

拉丁文:采集地:采集时间:采集者:6.水生微管束植物的采集与标本制作采集时用竹竿扎上铁钩把水草从根部慢慢钩起，采集时注26标签纸要有2张，标本瓶的外壁一张（胶带或纸标签），瓶内一张，用铅笔书写在硫酸纸。7.采样瓶标签书写A-I-底量20071224组别站点采样内容采样时间标签纸要有2张，标本瓶的外壁一张（胶带或纸标签），瓶内一张，27七.实习报告1.湖泊的自然概况：地理位置、经纬度、距县城的距离、周边污染源的分布等，水面积、养殖面积、pH、DO、透明度。底质等情况。2.采样点的布设及看法3.调查结果

生物的种类，组成状况（附表）生物量状况优势种及经济种及其分布结果及其评述七.实习报告1.湖泊的自然概况：28透明度盘浮游生物网采水器采泥器三角拖网底栖动物过滤网浮游动物过滤网塑料量杯1升、0.5升各大镊小镊白色磁盘大2小塑料量筒50ml滴管塑料桶PＨ计蒸馏水、吸水纸手操网野外采样工具透明度盘白色磁盘大2小野外采样工具29塑料瓶1000mll

6个测叶绿素6个浮游植物定量500ml

6个底栖定量6个底栖定性250ml

浮游动物定量60ml

（每个站点2个）塑料瓶1000mll6个测叶绿素30本节结束！谢谢！本节结束！谢谢！31水生生物的分类鉴定

调查实习周课件水生生物的分类鉴定

调查实习周课件32提纲一.实习目的二.实习内容三.采样点布设四.标本固定保存药品五.实习器材及使用方法六.样品采集及分析方法七.实习报告的书写提纲一.实习目的33一.实习目的1.巩固课堂教学理论知识、丰富教学内容，达到理论与实际相结合的目的。2.初步掌握一般水生生物的调查研究方法，培养独立工作的能力。3.学会水生生物标本的采集、固定和鉴定方法，扩大知识范围。4.增强团队协作能力.一.实习目的1.巩固课堂教学理论知识、丰富教学内容，达到理34二.实习内容1.了解湖泊、池塘的一般形态和性质：

如湖泊四周的环境、面积和水深、底质、水源、进出水口的位置及数量、水温、pH、透明度及水色等。2.对湖泊、池塘的生物环境展开定性定量调查：

浮游生物、底栖生物的定性定量采集。3.对湖泊的理化环境因子进行测定：

如水深、水温、pH、透明度及水色等。4.对湖泊周边水域的生物多样性展开调查：

如水生微管束植物、水生昆虫等。二.实习内容35三采样点布设三采样点布设36四.标本固定保存药品1.福尔马林(一般4%)

福尔马林即为36％的甲醛溶液;4％的福尔马林溶液即96ml水+4ml福尔马林配制而成。2.碘液(鲁哥氏碘液Lugel’s)（15％）

6gKI+4gI2配置成100ml溶液，碘液固定的标本形态构造保存较好。但易挥发，故最好再加入2－4％的福尔马林固定。3.苦味酸固定液(波恩氏固定液)100ml蒸馏水中溶入苦味酸晶体使之成饱和液，取75ml+25ml福尔马林+3ml冰醋酸即成。固定的标本组织保存较佳，细胞变态少。4.酒精(70-80%)

底栖动物如螺、蚌、虾、蟹等最好用70－80％的酒精固定保存。四.标本固定保存药品1.福尔马林(一般4%)37五.调查所需器材及使用方法1.透明度盘8.浮游植物计数框2.表面水温计9.浮游动物计数框3.浮游生物网10.目测微尺和台测微尺4.采水器11.微量移液器5.三角拖网12.扭力或托盘天平6.采泥器13.溶氧测定仪7.浮游生物浓缩器14.便携式pH计五.调查所需器材及使用方法1.透明度盘381.透明度盘（萨氏盘）

用厚铁皮剪制成直径为20cm的圆板，板的一面用黑、白油漆涂成相互垂直、黑白相间的四等分，中心装一铁环，系上做好刻度标记的绳子。另一面加一个铅锤。

使用方法：

在背光处平放入水中，逐渐下沉至刚好不能看清盘面的白色时，记取其尺度就是透明度。用厘米表示。1.透明度盘（萨氏盘）用厚铁皮剪制成直径为20c392.表面水温计在湖泊水深10米以内测定。构造：

是由一支普通水银温度计安装在一个金属外壳内构成，外壳下部是一个直径为5厘米、高6厘米的金属筒，筒的上部有孔，水可以进出。测定方法：

把栓好标有刻度绳子的水温计放入需测的深度，5分钟后，提取读数，要求正确读出0.1度，温度表离水面到读完时间不超过20秒。2.表面水温计在湖泊水深10米以内测定。40主要用来捞取浮游生物构造：

圆锥形，口径约20cm，网长60－90cm，用直径为4mm的铜条作网圈支持网口。网衣用筛绢缝制。网头用金属套（铜或铝）结在网底。使用方法：

关闭网底开孔，将网放入水中0.5m深处作横8字形来回拖动约3－5分钟，徐徐提起，将水滤去，打开开孔，使浮游生物流入瓶中（60ml）.3.浮游生物网主要用来捞取浮游生物3.浮游生物网41采集不同水层水样，用于浮游植物和浮游动物定量以及叶绿素的测定。采水器有瓶状采水器、筒状采水器和柱状采水器等。本调查采用5L筒状采水器：0.25m高，有机玻璃制作而成。4.采水器采集不同水层水样，用于浮游植物和浮游动物定量以及叶绿素的测定42采集底栖动物定性样品构造：

用铜或铝做成一个每边长约30cm的三角形具齿的架子，套上三角形网袋，架子三个角都装上粗绳，结在一起，用长粗绳上用来拖取底栖生物。5.三角拖网采集底栖动物定性样品5.三角拖网43

采集底栖动物定量样品:

利用一对颚瓣，以绳钩在活钩上，放入湖底。当两颚瓣与湖底接触时，放松拉绳，活钩自然脱落。向上拉绳时将颚瓣拉紧，由于重力关系，颚瓣自然夹拢，将湖泥及底栖生物夹在其中，提出水面，倒入底栖生物过滤网在水中淘洗，干净后倒入白色磁盘，用镊子挑拣全部生物，个体大的放入500ml塑料瓶中，身体柔软的如环节动物等另放在小塑瓶，用5％福尔马林固定，回室内换成75％的酒精保存。6.采泥器（彼得生采泥器）采集底栖动物定量样品:6.采泥器（彼得生采泥器）44浓缩浮游生物定量样品1000ml柱形分液漏斗式的沉淀浓缩器，在1000ml,500ml,50ml,30ml处划有刻度。7.浮游生物浓缩器7.浮游生物浓缩器45在一块较厚的载玻片上有2cm边长的正方形方框，每边长又划分成10等分成100个面积为4平方毫米的小格，四周由0.25mm高的玻璃框围成一个方框，框内体积正好0.1ml.使用时，取0.1ml沉淀的定量样品，盖上盖玻片，注意不要有气泡或使样品溢出。8.浮游植物计数框在一块较厚的载玻片上有2cm边长的正方形方框，每边长又划分成46用于计数轮虫、桡足类的生物量。在一块较厚的载玻片上，有长5cm,宽2cm，高0.1cm的长方形方框，框内面积刚好1ml。9.浮游动物计数框用于计数轮虫、桡足类的生物量。9.浮游动物计数框47目测微尺：一个可以放入显微镜中的圆形玻片，上面有一微形尺。台测微尺：在一特殊的载玻片上刻有1mm分100小格的微型尺。使用时，把目尺放入显微镜目镜内（有刻度的一面向下），台尺放在载物台上，然后计数不同倍数的物镜内，一个台尺的小格为目尺小格的几倍，由于台尺的长度是已知的，就可以推算出在某一放大倍数时目尺一小格的长度为多少。目尺每格长度(um)=（两重叠刻度间台微尺的格数×10um）/两重叠刻度间目微尺的格数。10.目测微尺和台测微尺目测微尺目测微尺：一个可以放入显微镜中的圆形玻片，上面有一微形尺。148垂直握住移液管，将按钮揿到第一停止点，并把吸液嘴浸入到液面下2－3mm，缓慢放松按钮，使之复原，等待1－2秒钟后从液体中取出，并避免碰撞任何东西。将吸液嘴移至加样容器壁上，缓慢地把按钮揿到第二停止点，排尽全部液体，吸嘴在容器壁向上滑动取出后再放松按钮，使之复位，即完成一次操作过程。11.微量移液器垂直握住移液管，将按钮揿到第一停止点，并把吸液嘴浸入到液面下491.浮游生物定性2.浮游植物定量3.浮游动物定量4.底栖动物的定性5.底栖动物定量6.水生微管束植物的采集与标本制作7.标签书写六.样品采集及分析方法1.浮游生物定性六.样品采集及分析方法50清洗浮游生物网,关闭网头开关.把浮游生物网放在0.5m水深处作横8字形来回拖动.注意不要有气泡,转弯处要圆滑,3-5min后起网.用60ml塑料瓶收集所有在网头的浮游生物,加2-3ml的福尔马林液固定,带回实验室,参照有关资料进行分类鉴定记录在本子上.1.浮游生物定性清洗浮游生物网,关闭网头开关.1.浮游生物定性51用5L的桶状采水器，采集0-0.5,1.0-1.5m水层的水样混合后，用1升塑料量杯量取1升入塑料瓶，加10ml碘液、20-30ml福尔马林固定带回实验室。回实验室后，转入1000ml沉淀器，静置沉淀24-48小时后，吸去上清液浓缩至50ml,取样计数。用0.1ml定量加液器吸取均匀浓缩液0.1ml,放在容积为0.1ml的正方形计数框内,用2.22.2cm的盖玻片盖好,注意不要有气泡,在显微镜下分种计数,一般取50个视野.按以下公式计算出浮游植物的密度(个/升)(进入公式)：2.浮游植物定量用5L的桶状采水器，采集0-0.5,1.0-1.5m水层的水52

CsVN(个/升)=

PnFsFnvPn:Fn个视野中浮游植物的个数.Fn:视野数.(50)V:1升水样浓缩后的体积.(50ml)V:计数框体积.(0.1ml)Cs:计数框面积.(400mm2)Fs:每个视野面积.(D=?)Cs53(1)原生动物,轮虫类,无节幼体:

取浮游植物的50ml浓缩匀液中的1ml放在长方形框中全片计数.

1升水样浓缩体积生物密度(个/升)=计数得到的生物个体数计数的标本体积(2)桡足类、枝角类:

把采水器采的10升混合水样,用浮游动物过滤网把浮游动物收集在250ml塑瓶中,用4%福尔马林固定.带回实验室后静置一段时间,吸取上清液,把剩下的水样放在长方形计数框全部计数.

生物密度(个/升)=全部计数个数(个)/10(升)

3.浮游动物定量(1)原生动物,轮虫类,无节幼体:3.浮游动物定量54把三角拖网拉绳的一端固定在调查船上,然后把三角拖网抛入湖中，缓慢拖拉一定距离后提起，在水中摇动冲洗，干净后倒入白瓷盘中挑拣出生物样品，装入500ml塑料瓶中.重复拖2次，样品用5%福尔马林固定.水蚯蚓，蚂蟥等最好先用乙醚进行麻醉，然后用福尔马林固定在另外的小塑瓶内。回实验室进行鉴定后换用75%的酒精保存。4.底栖动物的定性把三角拖网拉绳的一端固定在调查船上,然后把三角拖网抛入55

用开口面积为1/16m2的彼得生采泥器采集底泥，倒入底栖动物网进行清洗。然后倒在白瓷盘上挑拣所有生物，用75%酒精固定。重复2次。带回实验室进行计数，称重。大个体生物用托盘天平称，小的如水蚯蚓等用扭力天平称。

生物密度(个/m2）=计数个体数（个）/（1/16m2

2)=计数个体数8生物重量(g/m2）=称量重/（1/16m2

2）=称量重85.底栖动物定量