动物实验报告

实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法；6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。3、小鼠的标记方法耳孔法剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。4、小鼠的基本采血1）剪尾采血45℃温水中浸1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结0.2～0.3ml血，切割后用棉球压眼眶后静脉丛取血使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血，右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁2～3mm0.2～0.3ml。心脏取血动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5经口给药：小鼠灌胃左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持灌胃针，将灌胃针插入动物3~4cm0.2~1ml；2）皮下注射给药皮下注射给药部位以颈部三角区最佳。操作时，常规消毒注射部位皮肤，然时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。肌肉注射给药小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于1190°1/4,注入药液.0.1ml/10g体重。腹腔注射给药左左手提起并固定小鼠，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部，右手持注射器将针头在下腹部靠近腹白线的两恻进行穿刺，针头刺入皮肤后进针3nm左右，接着使注射针头与皮肤呈45°角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。尾静脉注射给药鼠尾静脉有两根，左右两侧各一根。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩静脉平行（℃，从尾下四分之一处（约距尾尖3厘米）处进针，此处以后向尾根部方向移动注射。动进入注射器。6、小鼠的解剖内部脏器观察肺：分左右两叶，右肺分为四叶，左肺为一整叶。心脏：呈圆锥状，位于近胸骨端，心尖位于第四肋间。5叶。胃：分贲门、幽门、胃底及胃体。肠：分小肠和大肠。小肠包括回肠、空肠和十二指肠。脾：脾斜卧在胃的左侧，呈暗红色，长条扁平状。胰：在十二指肠附近，呈粉红色。开口于膀胱背侧。9）卵巢和子宫：卵巢形似绿豆状，粉红色，左右各一，位于肾脏下方。小鼠为双角子宫，为Y字形。10）睾丸：小鼠睾丸有一对，幼年时睾丸位于腹腔内，性成熟后则下降至阴囊内。实验二：大鼠实验一、实验目的1、掌握大鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握大鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握大鼠的标记方法；4、掌握大鼠的基本采血技术（尾静脉采血、心脏釆血、腹主动脉采血；5、掌握大鼠的常用给药方法（注射、麻醉；6、掌握大鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料D2只（11雄；2、实验器械及试剂：鼠笼、大鼠固定器、大鼠固定板、1ml注射器、5ml器、眼科剪、弯头镊、灌胃针、10%水合氯醛、生理盐水；三、实验内容及步骤抓取和固定性别鉴定（其他部位一样，雌性：距离短，毛发稀疏。给药1）灌胃:将注射器装入药物溶液，装上灌胃针。抓取固定大鼠后，使大鼠（若药物灌入肺中，大鼠死亡。2）腹腔注射：左手固定大鼠后，右手持针，45度沿腹白线两侧进针，刺3nm左右，将注射针头朝上，减少与皮肤间的倾斜角度，继续进液。尾静脉注射：鼠尾静脉有两根，左右两侧各一根。操作时先将动物固定45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使0℃，从尾上三分之一处进针，此处皮薄易于刺入，回抽（3/1处注射，此处大鼠易发生断尾现象。皮下注射：将大鼠以俯卧位固定，将腹部皮肤去毛后，左手拇指和食指经过段时间后注射入的药物可被吸收。皮内注射：小鼠以俯卧位固定，将腹部皮肤去毛后，左手拇指和食指捏停留片刻后将针头拔出，用干棉球按压针孔。麻醉：抓取固定大鼠后，通过腹腔注射的方式（10%2ml/kg的用量）或几乎不动为麻醉成功。若注射过量麻醉剂会造成大鼠死亡。釆血1）尾静脉采血45～50℃的温水浸润半分右手持注射器，使针头与静脉平行（小于0℃，从尾上三分之一处进针，此处0.1ml。心脏釆血：将麻醉后的小鼠以仰卧位放置，用指腹触摸观察确定小鼠心脏的位置（为搏动为剧烈处。右手持注射器，左手在左侧固定心脏，针头紧贴302.5cm（。腹主动脉采血：将大鼠麻醉固定后，用手术剪沿腹正中线剪开腹腔，将腹主动脉充分暴露后（腹主动脉与腹主静脉伴行，紧贴脊柱，右手持注射器，25~305mm左右200~300g8~10ml，采样过程迅速。大鼠解剖；内脏器官。内部脏器观察：肺：分左右两叶，右肺分为四叶，左肺为一整叶。心脏：呈圆锥状，位于近胸骨端，心尖位于第六肋间（主动脉弓前部。7叶，无胆囊。胃：分贲门、幽门、胃底及胃体。肠：分小肠和大肠。小肠包括回肠、空肠和十二指肠。脾：脾斜卧在胃的左侧，呈深红色，长条扁平状。胰：在十二指肠附近，不规则状且呈粉红色，与脂肪相似但颜色不同。（米粒大小卵巢和子宫：在肾脏前方见肉色带有颗粒样突起的腺体为卵巢，两侧卵巢下方各连有一条输卵管，输卵管连接于下方子宫，两侧子宫结合形成“V”字形，经阴道开口于体外。睾丸：小鼠睾丸有一对，幼年时睾丸位于腹腔内，性成熟后则下降至阴囊内。下腺。实验三：豚鼠、家兔的基本实验操作一、实验目的性别鉴定、灌胃、腹腔注射、心脏釆血、豚鼠解剖；家兔的抓取和固定、性别鉴定、耳缘静脉采血、耳缘静脉注射、耳缘静脉空气栓塞法注射、家兔解剖，了解豚鼠和家兔的各脏器解剖学位置。二、实验材料1实验动物：1只（雌性1只（雄性）2、实验器械及试剂：鼠笼、鼠板、家兔固定器、兔板、头皮针、5ml注射器、眼科剪、弯头镊、导尿管、10%水合氯醛、生理盐水、手术剪、三、实验步骤1、豚鼠的抓取和固定豚鼠的抓取和固定：左手拇指和食指抓住豚鼠两耳后和颈部大部分皮肤。其余手指及掌心夹住背部和尾部，豚鼠四肢不会阻碍实验操作即为抓取固定成功，注意不要用力过大使豚鼠窒息死亡。2、豚鼠性别鉴定将豚鼠抓取固定后使其腹面朝上，用手按压豚鼠的会阴部，观察是否有阴茎出现即可判断雌雄。雄性豚鼠可观察到阴茎，雌性豚鼠可观察到会阴部。3、豚鼠麻醉30度沿腹白3nm左右，将注射针头朝上，减少与皮肤间的倾液后即可注射麻醉剂（10%4ml/kg260g，故需1.1ml10%水合氯醛。将适量的麻醉剂注射入豚鼠体内，等待几分钟后观鼠死亡。4、豚鼠心脏釆血将麻醉后的豚鼠以仰卧位放置，用指腹触摸观察确定豚鼠心脏的位置（为搏动为剧烈处，通常在胸骨左缘。右手持注射器，左手在左侧固定心脏，在三四302.5cm（。5、豚鼠解剖将通过心脏采血处死后的豚鼠放至在鼠板上，仰卧位放置，充分暴露颈部、腔的各内脏器官。内部脏器观察：1）肺：共七叶，右肺四叶，左肺三叶；心脏：呈圆锥状，位于近胸骨端，心尖位于第六肋间（色胸腺附于主动脉弓前部；肝：紧邻隔下，呈暗红色，分四个主叶和四个小叶，可见一光亮的胆囊附着于肝下；20-30g；1/315%；脾：脾斜卧在胃的左侧，呈深红色，长条扁平状；胰：一端紧贴脾脏，一端邻近十二指肠，不规则状且呈粉红色；（米粒大小，每肾内侧各有一根输尿管，开口于膀胱背侧；卵巢和子宫：在肾脏前方见肉色带有颗粒样突起的腺体为卵成“V”字形，经阴道开口于体外。6、家兔的抓取和固定自笼内取出时，用手抓住家兔颈部被毛与皮肤，另一手托住其臀部，将其中其头部无法向后缩即为固定成功。7、家兔的性别鉴定家兔的性别鉴定类似于豚鼠的性别鉴定。将家兔抓取后使其腹面朝上，用手雌性家兔可观察到会阴部。8、家兔耳缘静脉采血用兔盒固定家兔后，先拔去耳缘静脉注射部位的被毛，用手指轻弹兔耳使静5ml。9、家兔灌胃给药兔灌胃系用导尿管配以一根粗的棉绳，用棉绳固定家兔开口，将导尿管从家兔牙齿外侧缓慢沿上颚插入食道。插入约导尿管的2/3的位置。回抽针管，观察到无气体进去针管后注射药物。灌胃完毕后先取出导尿管后松开棉绳。10、家兔麻醉（10%4ml/kg的用量等待几分钟后观察家兔反应。若家兔全身瘫软几乎不动为麻醉成功。11、家兔处死（空气栓塞法）以耳缘静脉采血的方式在耳缘静脉处进针，向耳缘静脉中注入一定量的空气l即可瞳孔扩散。12、家兔解剖胸腔的各内脏器官。内部脏器观察：1）肺：共七叶，右肺四叶，左肺三叶。胸腔中间有纵膈将胸腔分为左右两部，互不相通。心脏：呈圆锥状，位于近胸骨端，由左心房、左心室、右心房、右心室组成。胃：分两部，贲门部和幽门部。100.5米。在回肠和盲肠相接处膨大呈一个后壁，呈圆形，为圆小囊。脾：脾斜卧在胃的左侧，呈深红色，长条扁平状。则状且呈粉红色，与脂肪相似但颜色不同。（米粒大小，每肾内侧各有一根输尿管，开口于膀胱背侧。雄兔睾丸下降到阴囊，两侧阴囊为乳白色。睾丸切除手术技巧操作一、实验目的1、小鼠的睾丸及卵巢切除是目前实验动物手术操作中最基础的技巧，要求初步掌握手术操作的基本流程、术中的细节及了解术后护理；2、掌握尾尾直皮的操作方法；3、通过实际操作，了解通过剖腹取胎术得到幼鼠的基本原理、操作和用途；二、实验材料、实验动物：试验用孕鼠、清洁级小鼠（雌雄各一只；2、实验器械与试剂：鼠笼、鼠板、5ml注射器、眼科剪、弯头镊、10%水合氯醛、手术剪、干棉球、酒精棉球；三、实验内容1、小鼠的睾丸切除手术5mm处脱毛，常2-3mm5-8mm手术口直达腹并结扎相关血管，即可切除睾丸。将腹膜与肌层一起缝合，缝合皮肤。2、小鼠卵巢切除手术小鼠卵巢切除术多采用背部切口。小鼠常规麻醉，采用俯卧或侧卧位，置于0.5cm1cm为中心剪除或拔出长毛，常规消毒，切在离脊柱肋下剪开腰肌，长约0.5切口，立即可见两侧包绕卵巢的脂肪组织及紧间短。3、近交系小鼠皮肤移植实验尾尾植皮法是在一组近郊系内，将小鼠尾部的皮肤轮换移植到另外一个小鼠的尾部。此方法一个可以同时做几只，省时间。而且有自体移植，可以用于鉴别植皮的脱落是排斥反应，还是手术失败造成的。麻醉动物，用75%0.75cm长的尾皮，180度，使皮片上的毛与尾部的毛长向相反，然后用眼科镊将植4、孕鼠剖腹取胎实验1）以颈椎脱臼法将孕鼠处死后，取仰卧位固定小鼠于动物固定板上，暴露腹部手术部位进行酒精消毒（2）用剪刀沿腹中线剪开腹部皮肤、腹肌和腹膜，暴露子宫，用止血钳分别夹住血循环正常后，以止血钳扎断脐带。18闭，胸前有一个深红色胎盘附于其上，体表略湿。实验五大鼠阴道涂片、肺水肿模型及其它试教实验一、实验目的囊及比格犬的年龄判断、前肢背桡外侧静脉和后肢侧皮下小静脉的采血操作。二、实验材料实验动物：SD大鼠，裸鼠，金黄地鼠，比格犬；846合2ml5ml皮绑带、显微镜。三、实验内容大鼠阴道涂片及性周期观察大鼠急性肺水肿模型的建立裸鼠肿瘤接种的试教实验比格犬年龄判断比格犬前肢背桡外侧静脉、后肢侧皮下小静脉采血金黄地鼠颊囊的观察四、实验方法与步骤大鼠阴道涂片及性周期观察学改变来鉴别性周期的不同阶段。精将片子烘干，吸阴道分泌物时，要反复冲洗4-5次，确保吸到阴道分泌物。用20min没有找到明显有核细胞和分叶细胞，可能是烘干片子时细胞结构被破坏。情间期。大鼠急性肺水肿模型的建立0.6mL8氯化铵溶液（g，雄性：，观察大鼠一般情况与呼吸状况，2-3分钟后突然倒下，全