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文档简介
人外周血淋巴细胞分离、计数、活力测定利用淋巴细胞分离液离心人外周血,根据单个核细胞不同的体积、形态和比重,将离心后呈密度梯度分布的单个核细胞分离出来。密度梯度离心法人外周血RBC、粒细胞比重为:1.092单个核细胞包括淋巴细胞和单核细胞,比重为1.075因此选用一种比重介于二者之间而近于等渗的淋巴细胞分离液(比重为1.077±0.001)进行密度梯度离心,离心后不同比重的血细胞在分离液中呈梯度分布,从而分离出单个核细胞(淋巴细胞)
【实验原理】淋巴细胞分离液组成:聚蔗糖-泛影葡胺(Ficoll-hypaque)1.肝素溶液用生理盐水将肝素配成125~250U/ml的溶液,置4℃下保存备用。2.淋巴细胞分层液市售或自配,20℃时密度应为(1.077±0.001)g/L。3.Hanks液
pH7.2~7.4。4.完全RPMI-1640培养液。5.15ml或50ml锥底离心管。6.水平离心机,显微镜。7.玻璃吸管,滴管,细胞计数板等。8.2%台盼蓝染液。【实验材料】
1.采集静脉血3ml,注入盛有肝素的无菌小瓶中(每ml全血加0.1ml肝素溶液),立即轻轻摇匀,使血液抗凝。
2.用吸管加入等量Hanks液,使血液等倍稀释。
3.吸取淋巴细胞分离液2ml置于离心管中,然后将上述稀释血液在距分离液界面上1cm处沿试管壁缓慢叠加至分离液表面。应注意保持两界面清晰,勿使血液混入分层液内。【实验方法】
4.将离心管置水平式离心机内,在18~20℃下,以2000r/min离心20min,离心后,管内分层如下图所示
5.用毛细吸管轻轻插入灰白细胞层,沿管壁轻轻吸出该层单个核细胞,转入另一支离心管中。
6.将所得到的单个核细胞悬液用5倍体积的HanK’s洗涤2次,每次以1500r/min离心10min,弃上清。
7.混悬细胞,沉淀加1640培养液1ml,摇匀。
8.计数细胞:取0.1ml细胞悬液,加WBC稀释液0.9ml,混匀,静止片刻,冲池,低倍镜下计数四大格细胞总数。实际细胞数/ml=Ⅹ×10×1000×10
4
9.台盼蓝染液检测细胞活力:取2滴细胞悬液于玻片,加2%台盼蓝染液1滴,混匀,铺开,高倍镜镜检。3min内计数完100个细胞,计算存活细胞百分率:台盼蓝染液检查活细胞不着色(无色),死细胞染成蓝色。
肝素抗凝静脉血3ml,轻摇匀↓
Hanks液稀释静脉血(加满管),轻吹混匀↓
3ml淋巴细胞分层液中,叠加稀释血液↓
水平离心,2000rpm/20min↓
吸取单个核细胞层(灰白层),移入新试管↓
Hanks液洗涤2次,1500rpm/10min↓
弃上清,加入16401ml混悬,摇匀↓
①计数,WBC稀释液10倍稀释0.1ml,1滴镜下计数↓
②活力测定,2滴加1滴台盼兰混匀,3min内镜检
【步骤】⒈淋巴细胞计数:正常≥1×106/ml,青年人≥2×106/ml.⒉淋巴细胞活力测定:台盼蓝染液检查活细胞不着色(无色),
死细胞染成蓝色。计数100个细胞,计算活细胞百分率,一般活性≥95%。【实验结果】
1.与血液样品接触时应注意安全防护,避免血源性传染病传染。
2.操作应轻柔,细胞悬液应充分混匀,避免损伤细胞活性及细胞丢失。
3.细胞分层液在室温下应为(l.077±0.001)g/L;应避光4℃下保存,取出后逐渐升至室温后混
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