标本容器的使用和注意事项

标本容器的使用和需重视的要素321真空采血管类型与适用范围头盖颜色标本类型添加剂适用范围要求

浅蓝色全血109mmol/L（3.2%）枸橼酸钠

适用于血凝实验（如：PT、APTT、Fbg、TT、D-二聚体等）

抗凝剂与血液为1：9混合，抽血后立即颠倒混匀5-8次黑色全血119mmol/L（3.8%）枸橼酸钠适用于血沉抗凝剂与血液为1：4混合，抽血后立即颠倒混匀5-8次黄色血清含促凝剂和分离胶适用于常规生化、输血前检测、PCT、肿瘤、内分泌、甲状腺、丙戊酸、卡马西平和苯妥因钠等可将血球与血清快速很好的分开，减少影响实验的因素

红色血清

促凝剂适用于常规生化、输血前检测、PCT、肿瘤、内分泌、甲状腺、丙戊酸、卡马西平和苯妥因钠等

抽血后不需要摇动绿色血浆肝素锂可用于急诊，大部分的生化实验和某些特定的化验项目如：血氨、血流变、微量元素等抽血后立即颠倒混匀5-8次

紫色全血EDTA-Na2或EDTA-K2

适用于血液常规检查、CRP、糖化血红蛋白、流式检测、TBNK淋巴细胞亚群等

抽血后立即颠倒混匀5-8次灰色血浆血糖降解抑制剂适用于血糖测定抽血后立即颠倒混匀5-8次各种真空采血管头盖的颜色均为国际通用标准，试管上的标签有刻度线、取血量、有效期、内含添加剂物等说明。目前在用真空管种类真空管名称血培养瓶

需氧瓶凝血管浅蓝盖血小板聚集功能管深蓝盖血培养瓶

厌氧瓶血沉管黑盖分离胶管黄盖促凝管红盖肝素管绿盖EDTA管紫盖抑糖酵解管灰盖一、血培养血培养原则上抽取2个部位、各部位采集2瓶合计4瓶

请务必在每个瓶条码标签上写明采血部位一、医生工作站

申请项目位置（分血培养及鉴定、导管培养及鉴定两种）：

（1）HIS位置

微生物/血培养及鉴定（申请单类别）/血培养及鉴定（组合名称）/

（2）具体开单项目：

血培养及鉴定（厌氧）、血培养及鉴定（厌氧）共4项

导管培养及鉴定（厌氧）、导管培养及鉴定（厌氧）共2项

二、

护士工作站

（1）血培养及鉴定（需氧）、血培养及鉴定（厌氧）共4个不同条码

（2）导管培养及鉴定（需氧）、导管培养及鉴定（厌氧）共2个不同条码培养瓶（需氧、厌氧两种，内含树脂）需氧瓶厌氧瓶瓶内有树脂

采集每侧一套（需氧瓶、厌氧瓶）、两侧两套共4瓶

打印4张不同条码（需氧瓶2张、厌氧瓶2张）

血培养的采集部位血培养采集部位不得从静脉留置导管采集，否则很难区分阳性结果是否为污染菌引起。２～３套血应从不同部位抽取血液标本。每一部位采集的血液样本分别注入需氧血培养瓶和厌氧血培养瓶“双瓶双侧”共4瓶——部位1（需氧+厌氧）+部位2（需氧+厌氧）

病原菌检出率80%“双侧双瓶”共2瓶——部位1（需氧）+部位2（厌氧）

病原菌检出率65%血培养采血时机采血量是培养基的1/10成人：8-10ml婴幼儿：1-3ml采集第三套血培养心内膜炎亚急性心内膜炎不明原因发热采集注意点蝶形针：先注入需氧瓶，再注入厌氧瓶。

采血后

先拔注血针，再拔采血针（以避免气体进入瓶中）注射器：拔出注射器后，排除针尖的空气和少量血液后，

首先注入厌氧瓶，再将余血注入需氧瓶

避免发生最后将余血注入厌氧瓶时同时将空气注入消毒方法血培养注意事项

防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题血培养存放和运送二、采集真空管顺序采血管使用顺序蝶形针：需氧瓶、厌氧瓶、凝血管、PLT聚集功能管、血沉管、分离胶管、促凝剂管、肝素管、EDTA管、抑酵解管

注射器：厌氧瓶、需氧瓶、凝血管、PLT聚集功能管、血沉管、分离胶管、促凝剂管、肝素管、EDTA管、抑酵解管

【浅蓝盖、深蓝盖、黑色、黄盖、红盖、绿盖、紫盖、灰盖】

采血管使用顺序原则是什么？1无菌优先考虑2避免外界因素的污染3有添加剂的不能污染无添加剂的4添加剂成分对其他试验影响大的排在后面5凝血功能检测要求较高，故蓝头管排在前面。如果第一管用于凝血功能检测会对实验造成影响三、需要注意的要素尿常规管和尿培养管的区分尿培养管、痰培养杯均为带塑料外包装封闭容器尿常规管无塑料外包装封闭，是有菌管尿常规管无菌培养管痰培养杯需要注意尿量的项目

请在试管上写明24小时尿蛋白定量24小时尿电解质24小时尿游离皮质醇24小时尿醛固酮24小时尿儿茶酚胺24小时尿多巴胺、肾上腺素、去钾肾上腺素24小时17羟皮质类固醇、17酮类固醇条码粘贴标准1.信息要完整、清晰。

2.条码顺着试管纵向粘贴，要贴直，不要横着或斜着。

3.粘贴的条码要露出一部分试管透明区，能看到血样，不能将整个管身包严。条码的粘贴标准血气、血凝按以下方式贴，原因：便于混匀、检测、观察外观单独采集血凝时的正确做法备留管：用于采集血凝管时，防止蝶形针管道的容积造成血凝管内负压减少，导致血凝采血量不足。只要有负压存在，备留管可以反复使用。

采集血液进入备留管（

一支血凝管或其他负压管）后，立即拔出，然后正常采集血凝管。

采集血凝时的正确做法止血带捆扎不要超过1分钟内，见到血液流入真空管即可松开止血带不能太紧不要拍打采血部位从外周静脉采血，避免从输液管或插管采血，防止肝素污染导致结果异常

同类项目可合并使用同一管

前提：合并的1管标本量不能过少1.血常规、C反应蛋白(CRP)、糖化血红蛋白、网织红细胞、异常细胞形态镜检2.尿常规、尿微量白蛋白、尿TT试验、尿本周氏蛋白、尿渗透压、尿淀粉酶3.凝血四项（PT、APTT、Fig、TT）、D-二聚体4.脑脊液：一般细菌培养、真菌培养、找新型隐球菌、一般细菌涂片5.血清生化、血清降钙素原PCT以上项目检验科可以做入电脑系统自动分派其他情况如病人不愿意多抽、采血不畅血量不多，建议主观判断：

相同管盖项目可以合并，前提是合并的1管标本量不能过少（外包项目除外）、尽可能仅仅合并2类条码项目以防止血量不够使用T-SPOT.TB

肝素抗凝血2管、现金自费、出报告时给发票常见专用真空管

需要提前到检验科按需索取G试验血管紧张素I、II、肾素四、常发生的错误常发生的错误做法1.出现凝块：采血不畅、抽血时混匀次数太少

特别提醒：

（1）不能采完所有管后一起混匀

（2）必须采完一管立即混匀

（3）采血时至少混匀3-5次以上（确保颠倒混匀到位才算1次）

（4）所有管采集完再次混匀不能出现有凝块的真空管：

除了红盖、黄盖试管外

常见项目：血小板聚集功能、血凝、血常规、血气、血沉、肝素抗凝管项目……

出现凝块：只能通知重新采血常发生的错误做法二、实验前标本溶血

每一份标本发生溶血的原因都是与环节有关1.机械力量:

采血不畅、反复穿刺、标本混匀动作过猛/过频、标本高空滴落、采血针刺入真空管盖橡胶角度没有偏向试管壁/直冲管底、注射器抽血过快/打血动作过猛、采血量不足试管内存在负压造成RBC破裂2.混匀不充分：

真空管内含有促凝剂，能促进血液凝固避免溶血。3.红细胞脆性增加：病人本身/药物影响4.标本放置高温/低温环境5.离心速度通常应该在3500转/分钟，目前检验科离心速度都是3000rpm常发生的错误做法三、采血量不足1、血气采集达不到0.5ml2、血凝应该是总量2ml（抗凝剂0.2ml+血液1.8ml）

提醒：不能多也不能少到达标线即可3、血沉应该是总量2ml（抗凝剂0.4ml+血液1.6ml）

提醒：抽血量只能过中间白线，马上拔下真空管

常发生的错误做法4、血流变采血不足5ml

血流变同时要采集血沉管1管血流变包含【绿盖管+黑盖管】常发生的错误做法目前医院使用EDTA.Na2管有2ml、5ml两种2ml短管用于：血常规、糖化血红蛋白5ml长管用于：

血型鉴定、不规则抗体、交叉配血

CADASIL-NOTCH3JACK2

常发生的错误