临床检验中心标本采集手册

第四部分患者准备

2.1病人在采血前24h内应避免运动和饮酒，避免情绪激动,

注意合理饮食除了急诊或其它特殊原因外，一般主张正常饮

食3天后采血，应避免暴饮暴食及刻意控制饮食。静脉血

标本米集最好在起床后lh内进行。应在空腹10~14小时后

第二天清晨采血。餐后或延长空腹时间（饥饿）均可引起血

液化学成分的改变。门诊病人提倡静坐15分钟后再采血。另

外饮食的量及质对检验结果也有影响，如高蛋白饮食可使血

清尿素氮、血氨、尿酸升高；高脂肪饮食引起乳糜微粒血症,

导致血清脂血（混浊）；饮水过多或过少可使血清稀释或浓缩;

含咖啡因的饮料可使儿茶酚胺释放等。

2.2采血时间：有些血液成份日间生理变化较大，因此应相对

固定采血时间，一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除外〉。

2.3患者体位：体位影响血液循环，由于血液和组织间液因体

位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明

显，例如由卧位改为站位，血浆ALB、TP、酶、Ca、胆红素、

Tch及TG等浓度增高；Hb、HCT、RBC等亦可增加。由于

体位的因素，在确立参考值时，应考虑门诊和住院病人可能

存在的结果差异，故采集标本时要注意保持正确的体位和保

持体位的相对一致性。

2.4药物影响：很多药物进入人体后可使某些化验项目的结果

增高或降低，如咖啡因可使血糖和胆固醇增高；冠心平可使

甘油三酯和乳酸脱氢酶降低；维生素C可使乳酸脱氢酶降

低；口服避孕药可使转氨酶升高等。故病人在化验前应尽可

能停服对检验有干扰的药物。

2.5输液的影响：不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采

血。输液时应在输液的另一侧手臂取血。

2.6生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食，可使

血液中某些成份高于正常，需与一般病理情况相区别，取血

前几日应注意避免。

2.7生理差别的影响：不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月

经期，血液成份有一定的生理差异，应注意与病理情况区别。

第五部分标本采集及注意事项

1.静脉血液采集

1.1采血注意事项：严格按照无菌技术操作，无论医生、护士、

检验人员除穿戴工作服外，还应戴帽子、口罩和一次性医用

乳胶手套，同时严格做好采血者手和患者采血部位的消毒，

防止患者采血部位感染。保证一人一针一管一带，杜绝交叉

感染。真空采血过程如有血液外溢和污染，立即用0.2%消毒

灵或其它消毒液进行消毒处理。对所有的采血材料严格执行

使用前再次检查，保证安全。采血人员对所采集的标本做好

登记工作，并签名。样品采集完后，对所使用的材料做好无

害化处置，保证环境和人员安全。

1.2采集流程

1.2.1门诊静脉血采集流程

检验人员收取检验申请单一审查合格（核对检验单上费用，

姓名、科别、检验项目等是否填写清晰，能正确辨认）一

按申请单上的病人姓名呼唤其姓名再次确认病人一确认采血

静脉并严格消毒—按照采血管顺序采取静脉血一采血完成嘱

咐患者用棉签压迫伤口一采血人员充分混匀样品一送至相关

部门检测（由运送部人员完成）。

1.2.2住院部静脉血采集流程

护士收取检验申请单一审查合格（核对检验单上姓名、住院

号、科别、床号、检验项目等是否填写清晰，能正确辨认）

一按申请单上的病人姓名呼唤其姓名以再次确认病人一确认

采血静脉并消毒一按照采血管顺序采取静脉血一采血完成用

棉签压迫伤口一充分混匀样品（在采血单上填上采血时间）

一送至检验科检测（由临床医护人员完成）。

1.3静脉采血时，止血带离抽血扎针部位上方约5cm距离，

注意袖筒不要太紧。通常选择手肘中央部分较粗的静脉血管,

用食指触摸，是否为有弹性的血管（肌肉较无弹性），若该部位

不明显，可改用手背处静脉（请患者手轻握）。确定穿刺部位后,

以安尔碘或者爱尔碘等混合消毒液作为消毒剂，以选定之静

脉穿刺部位为中心点，由内往外以环状涂拭消毒，消毒直径

约7.5cm左右，稍待干躁后进行标本采集。消毒后用一次性

采血针穿刺，回血后将另一端的硬插管插入真空定量采血管

内，松开止血带，采血足量后，拔出硬插管，可插入另一支

真空采血管继续采血。整个采血过程无血液溢出和污染，采

血完成后，请病人手指压住棉签，手伸直抬高于心脏，保持5

分钟，有出血倾向者（如紫瘢，ITP,血液病等）宜按压10分

钟以上至无血液渗出。把针头放入专用利器废弃桶内。

1.4静脉采血的注意事项：

1.4.1在肌肉注射或静脉输含有葡萄糖或电解质（含钾、钠、

氯离子）的液体时，建议3小时以后采集静脉血标本进行这

些项目的检验，以防止上述检验项目因输液引起的假性升

高。如因抢救等原因需要在输液同时采血的，一定要在输液

对侧采集标本，医生应正确评价检测结果。禁止从中心静脉

插管、肝素帽等保留的治疗通道中采集血液标本。

1.4.2止血带使用时间应少于1分钟（建议在针头

穿刺进入血管后即放松止血带），以免引起血液淤滞，局部组

织缺氧，造成血液某些成分的改变，特别是测定乳酸时不可

使用止血带，否则结果偏高。

1.4.3血标本应防止溶血。引起溶血的原因有：容器不清洁、

不干燥；淤血时间过长；穿刺不顺利；组织损伤过多；抽血

速度过快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快时产

生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未

取下针头直接将血液注入真空管内，也易造成溶血。

1.4.4必须正确选择采血管。不同检验项目对米血管有各自要

求，错误的使用采血管可能导致检验结果较大出入。采集凝

血管和血沉管时注意抗凝剂与血液的比例，具体使用情况参

照本手册。

1.4.5采血后，同一病人不同抗凝剂之间的血液禁止相互倾

倒，否则可能造成难以解释的检验结果。

1.4.6采完血后，无抗凝剂的管无需颠倒，有抗凝剂或分离胶

的血标本采集后立即轻轻混匀。

手法：上下完全颠倒5〜8次，手法轻柔，迅速。勿左右晃动、

勿剧烈震荡，以防凝血发生。

1.5真空管米血顺序：血标本聚集时建议的真空管使用顺序如

下

血培养（先需氧瓶，后厌氧瓶）凝血管（蓝）一血清管（红）

一肝素管（绿）一EDTA管（紫）一血沉管（黑）一ACD管

（灰）一其它管。

2.末梢血采集

2.1常用选择无名指（婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血），先

用酒精棉球消毒，然后用一次性采血针穿刺，让血液自然流

出，用消毒棉球轻拭去第一滴后，将血液收集在0.5毫升

eppendorf离心管（内加EDTAK2抗凝剂），约0.2-0.3毫升。

2.2用干棉球压住穿刺部位，嘱采血对象按压2-3分钟。

2.3用手指轻弹离心管底部8至10次，或在微型震荡器混

匀，让血液与抗凝剂充分混匀。

3.尿液标本采集

3.1尿液标本类型。

3.1.1首次晨尿：即留取清晨第一次尿，能真实的反映肾脏病

情况，尿液化学成分的检测最好采用晨尿。

3.1.2随机尿：不为条件所限，适于门诊、急诊病人，但受多

种因素，如饮水量、饮食等的影响。收集首次晨尿排泄后2-4

小时内的尿液标本作为第二次晨尿有利于尿液有形成分的检

测。

3.1.3午后尿：午餐后2h尿中尿胆原和糖含量高，适于这两

种成分的检验，可提高阳性检出率。

3.1.4中段尿：微生物检验的样本应取中段尿并立即送检。采

集方法：女性病人先以肥皂水冲洗外阴部及尿道口；男性病

人应翻转包皮，用肥皂水冲洗或消毒尿道口，再用灭菌纱布

擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20ml,盛于

无菌容器内立即加盖送检3.1.512h尿：需甲醛防腐（患者到

门诊二楼化验室领取），100ml尿液中加0.5ml。头晚8

时排空膀胱并弃去此次尿液，再收集至翌晨8时前的全部尿

液，适用于Addis尿沉渣计数。

3.1.624h尿：适于代谢产物24h定量测定，如尿蛋白、糖、

钠、钾、氯、钙、尿酸等。应准确的收集24h尿液，采集方

法：早上8点到第二天早上8点，早上8时排空膀胱并弃去

此次尿液，再收集，直到第二天早上8点将小便全部收集在

容器中，并测尿量，从混匀尿液中采集30ml送检。收集24h

尿液根据检验目的加入适当防腐剂。24h尿液沉渣还可用于

找抗酸杆菌。收集24小时尿液，原则上应首选0〜4c冷藏,

必要时可添加化学防腐剂。

3.1.7特殊体位采集标本：如分别采集直立或运动后尿标本与

平卧8h后尿标本，对体位性蛋白尿、运动性血尿诊断有帮助。

3.1.8午2点钟至4点钟留取尿标本：适于尿胆原检查。

3.1.9清洁尿（中段尿、导尿、膀胱穿刺尿等）：适于细菌培

养，应注意无菌操作。

3.2注意事项

3.2.1应用清洁、有盖、干燥的一次性容器，防止日照与污染。

3.2.2采集尿液量：尿常规与一般定性检查留取尿液约30m1。

3.2.3容器应贴上标签，标签内容应包括：姓名/科室/床号/标

本采集时间。

3.2.4一般尿液检查要求标本要新鲜，留取后立即送检。放置

2h以上尿中成分可发生变化，如红细胞、白

细胞溶解等。

3.2.5尿标本要防止月经血、白带、精液、前列腺液、粪便、

烟灰等异物混入。为此应尽量避免月经期检验尿。

3.2.6尿胆原等化学物质因光分解或氧化，需要避光。

4粪便标本采集

4.1标本米集

4.1.1用专用的一次性大便标本采集瓶采集粪便标本。避免受

到尿液及其它污染。

4.1.2一般检查留取约5g左右的新鲜便即可。采集时应该采

集有脓液、粘液、血液等异常的部分。

4.2注意事项和要求

4.2.1标本采集后需要密闭保存并立即送检。

4.2.2检查阿米巴滋养体，应该采集后立即送检，立即检查。

冬季需采取保温措施。血吸虫毛蝴孵化需全量新鲜标本（不

少于30g）o

4.2.3对粪便标本放置时间＞2小时,拒绝接收，

在申请单注明“标本放置时间过长，请重留标本送检”。

5阴道分泌物常规检查标本采集

5.1标本采集

5.1.1分泌物清洁度及微生态检查时，由临床医生操作，用灭

菌拭子或吸管从阴道穹隆粘膜采取分泌物。

5.1.2线索细胞及加德纳菌检查时要采集阴道壁表面的分泌

物送检。

5.2注意事项

5.2.1取阴道分泌物之前应避免性生活、阴道冲洗和上药。

5.2.2标本采集后尽快送检，如果做滴虫检查时冬季要注意保

暖。

6.前列腺液采集

6.1标本采集：由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液

于清洁玻片上（或容器内）立即送检。

6.2注意事项：标本采集时尽量避免精液的混入，采集后标本

应立即送检。

7.精液采集

7.1标本采集采集精液的最好方法是让患者本人手淫采集，如

有困难可用取精器（电按摩法）采集。将一次射出的全部精

液直接排入清洁、干燥容器内。

7.2注意事项：

7.2.1采集精液标本前必须禁欲3天，25〜35岁禁欲5天，

35〜45岁禁欲7天。

7.2.2禁止用性交中断法采集精液，因为这种方法会失掉射精

前的一部分。

7.2.3不能用乳胶避孕套采集，因避孕套内含有滑石粉可影响

精子活力。

7.2.4精液标本留取后应立即送检（如送检时间过长，超过2

小时或容器有溢漏，均不能作精液检查）。

8.脑脊液采集

8.1采集方法

8.1.1标本由临床医生按照脑脊液采集相关规范要求进行采

集。

8.1.2收集脑脊液2-5ml至红头空白管（无添加剂）送检；一

般脑脊液采集三管，第一管用于细菌培养检查（无菌操作），

第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。

8.1.3术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，

胶布固定。

8.1.4去枕平卧4〜6小时，以免引起术后低颅压头痛。

8.2注意事项

8.2.1严格掌握禁忌症。

8.2.2收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄

糖分解，病原菌破坏或溶解。

细胞计数标本应注意防止凝集。

8.2.3用于细菌培养的标本不可置冰箱冷藏或低温保存，否则

会使病原微生物死亡，尤其是脑膜炎奈瑟氏菌、肺炎链球菌

和流感嗜血杆菌。

9.浆膜腔积液（胸、腹水）采集

9.1标本采集

9.1.1标本由临床医生按照胸、腹水采集相关规范要求进行采

集。

9.1.2收集胸或腹水2-5ml至红头空白管（无添加剂）送检。

9.2.注意事项

9.2.1严格无菌操作

9.2.2收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解

等，必须立即送检。

9.2.3用于微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而

使培养阴性。

10.滑膜液采集

10.1标本采集

10.1.1标本由临床医生按照采集相关规范要求进行采集。

10.1.1显微镜镜检应用肝素抗凝标本，每毫升约肝素钠25单

位（不可采用肝素锂、草酸盐或EDTA干粉），采集标本

颠倒混匀5-8次，防止标本凝固。

10.2注意事项

收集标本后，必须立即送检。

11.骨髓采集

11.1标本采集

11.1.1骨髓细胞涂片需临床医生与检验科血液病诊断实验室

事先预约，检验科人员到场后方可进行。

11.1.2骨髓采集由临床医生按照相关操作规程进行。

11.1.3骨髓涂片检查的骨髓液量不宜过多，一般不超过0.2mL

取出后由检验科人员迅速涂片，避免骨髓液凝固，每份标本

涂片5~8张。。

11.1.4用于流式细胞术分析的骨髓标本一般不超过1mL取下

针头后注入EDTA-K2抗凝管，

充分混匀。

11.1.5骨髓活检标本采集后立即放置于固定液中。

11.2注意事项

11.2.1取材过程中如遇取材不佳或干抽，可换位取材。必要

时应多部位取材，以便全面了解骨髓造血情况。

11.2.2骨髓涂片由检验科人员带回实验室。

11.2.3于流式细胞术分析的标本在采样后及时送检。若不能

马上送检，室温可放置24小时，不能冷冻或冷藏保存。

11.2.4骨髓活检标本由检验科人员带回实验室。若取材时无

检验科人员在场，可由临床科室工作人员或患者、患者家属

与申请单一起送至实验室。

12.宫颈脱落细胞标本采集

12.1标本采集由医生以窥阴器或阴道张开器暴露宫颈，最好

在取样前先用棉签擦去宫颈分泌物；将宫颈刷置于宫颈口，

轻轻搓动宫颈刷使其顺时针旋转5圈；慢慢取出宫颈刷，将

其放入标有病人姓名的取样管中，取样管内已加有专用细胞

保存液，拧紧瓶盖。

12.2注意事项

12.2.1不可在碘试验和醋酸试验之后采集样本

12.2.2采样前24小时内不应有性生活

12.2.3采样前3天不要使用用避孕药膏等阴道内药物或对阴

道进行冲洗。

12.2.4月经期不可采集标本

13.临床微生物标本采集

13.1血（骨髓）培养标本的采集：

13.1.1采集容器根据患者使用抗生素情况选用相应的血培养

瓶。未使用抗生素的患者：蓝瓶（需氧）+红瓶（厌氧）；使

用过抗生素的患者：绿瓶（需氧）+红瓶（厌氧）。婴幼儿患

者血及骨髓标本、成人骨髓标本均只选用黄瓶（需氧）。

13.1.2皮肤消毒程序同血液常规采集消毒方法。骨髓采集由

临床医生按照相关操作规程进行。

13.1.3培养瓶用消毒剂榛拭血培养瓶橡皮塞，作用60秒，然

后将采集的血液或骨髓注入瓶内，并轻轻摇匀，以防凝固。

13.1.4采血量：成人患者一般以5〜10ml/瓶为宜，婴幼儿患

者一般不少于2mL骨髓量一般为1〜2ml。

13.1.5血培养份数和采血时间

13.151患者在采集血液标本时最好是在使用抗生素之前；若

已用药而又不能停药的患者，也应在下次用药之前。

13.1.5.2对怀疑菌血症的成人患者，推荐同时采集2套（不

同部位，如左、右手各采一套）血培养标本。

13.1.5.3婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位，如左、

右手各采一次）血培养标本。

13.1.5.4一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养

或一套血培养。多次采血不应在同一部位进行，应更换部位。

对于间歇性寒颤或发热应在寒颤或体温高峰到来之前0.5-1

小时采集血液。

13.1.5.5对于某些全身性和局部感染患者采血培养的建议：

a）急性发热怀疑菌血症者，应尽量在抗菌药使用之前，在10

分钟内于不同部位采集两套血标本，每一套血标本接种需氧

和厌氧培养瓶各一个。

b）对于非急性感染，怀疑有菌血症者，应在24h内于不同部

位采集2-3套血标本，每次采血的间隔不应小于3h,并应于

抗菌给药前或两次用药间隔期间采血。

c）急性细菌性心内膜炎患者，应在1-2小时内采集3套血标

本，并尽量在使用抗菌药前采血；如果24小时培养阴性，可

再采集3套以上的血标本。入院前两周内接受抗菌药物治

疗的患者，连续3天，每天采集2套，可选用中和或吸附抗

菌药物的培养瓶。

d）亚急性细菌性心内膜炎患者，在24小时内不同部位采集

血液标本2或3套，每次间隔大于lh；如果24小时培养阴

性，可再采集2或3套以上的血标本进行培养。

e）不明原因发热，可在24小时内不同部位采集血液标本2

或3套，每次间隔大于lh；如果24-48小时培养阴性，可再

采集2或3套以上的血标本。

f）可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，改变血培

养条件和方法，以获得罕见的或苛养的微生物。

g）儿童菌血症患者在24小时只需要采一次血标本进行培养，

需特别注意穿刺部位的消毒，以区别感染菌和污染菌。由于

儿童厌氧菌菌血症罕见，常规血培养不做厌氧培养。

13.1.6注意事项

13.1.6.1采血后立即送检，如不能立即送检，应室温保存，有

条件最好置35-37C孵箱中，切勿冷藏。

13.1.6.2申请单上应注明抗生素使用情况以及采血部位（如静

脉、导管）。

13.2尿液培养标本采集：

1321患者准备：尿标本采集应在未使用抗生素之前，注意

避免消毒剂污染标本，应保证尿液在膀胱内至少停留4小时

以上。最好留取早晨清洁中段尿，患者睡前少饮水。

13.2.2送检容器：微生物培养专用的一次性无菌尿杯。

13.2.3采集方法

13.2.3.1清洁中段尿：清晨起床后肥皂水清洗会阴部，女性应

用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗，再用清水冲

洗尿道口周围，开始排尿，将前段尿排出，中段尿约10-20ml,

直接排入专用的无菌容器中，立即送检，2小时内接种。标

本由医护人员采集或医护人员指导由患者正确留取。

13.2.3.2耻骨上膀胱穿刺：由医生按无菌操作技术采集，使用

无菌注射器直接从耻骨上经皮穿入膀胱吸取尿液。主要用于

留取标本困难的婴儿尿标本的采集。

13.2.3.3直接导尿：按常规方法对会阴局部进行消毒后，用导

尿管直接经尿道插入膀胱获取膀胱尿液。该法可减少尿液标

本污染，准确地反映膀胱感染情况，但有可能将下尿道细菌

引入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。

13.2.3.4小儿收集包：对于无自控能力的小儿可应用收集包收

集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性,

所以只有在检验结果为阴性时才有意义。如检验结果为阳性,

应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿

法流取尿液进行复检。

13.2.3.5留置导尿管收集尿液：利用留置导尿管采集标本时，

应先消毒导尿管外部，按无菌操作方法用注射器穿刺导尿管

吸取尿液，操作时应防止混入消毒剂，不能从尿液收集袋中

采集尿液送检。

13.2.4注意事项：标本采集后应及时送检，及时接种，室温

下保存时间不超过2小时，40C保存不超过8小时（冷藏保

存不能用于淋病奈瑟菌培养）。

13.3粪便培养标本的采集

13.3.1标本采集：

13.3.1.1标本采集尽可能在发病早期和应用抗菌药物治疗之

前，在不同的时间采集2-3份标本，可提高致病菌的分离率。

13.3.1.2自然排便采集标本时，取有脓血、粘液、组织碎片部

分的粪便l-3go液体粪便选取絮状物直接装入微生物

培养专用的无菌、带盖、广口的采集杯中送检，送检的标本

中不能加入防腐剂。霍乱弧菌培养用标本使用碱性蛋白月东水

运送培养管收集标本后送检。

13.3.1.3直肠拭子采集标本：适于排便困难者或婴幼儿。可用

肥皂水将肛门周围洗净，用无菌生理盐水润湿的棉拭子插入

肛门（成人4-5cm,儿童2-3cm）,与直肠粘膜表面接触，轻

轻旋转，然后将拭子插回无菌拭子管内送检。

13.3.2注意事项

13.3.2.1粪便标本应尽快送检，室温条件下不超过2小时。

13.3.2.2高度怀疑霍乱弧菌感染的标本运送必须符合特殊标

本的安全要求。

1332.3直肠活检标本用粪便培养杯送检，内盛少量无菌蒸播

水以防标本干燥。

13.4脑脊液标本的采集

13.4.1送检容器：无菌、干燥、无添加剂、带盖的试管、小

瓶或无菌注射器。

13.4.2采集方法：由临床医生按照脑脊液采集相关规范要求

进行采集。

13.4.3用一次性注射器采集脑脊液l-2ml,注入无菌试管或防

渗漏的无菌小瓶中，立即送检；也可直接用带针头帽的注射

器送检。

13.4.4用于检测细菌，脑脊液量应大于或等于1ml；用于检测

抗酸杆菌，脑脊液量应大于或等于2ml；用于真菌培养，脑脊

液量应大于或等于2ml。

13.4.5注意事项

13.451做脑脊液培养时，建议同时做血培养。

13.4.5.2采集脑脊液的小瓶不需要加入防腐剂。

13.4.5.3进行腰穿过程中，严格无菌操作，避免污染。

13.4.5.4采集标本后应在常温下立即送检，否则会影响检出

率。用于细菌培养的标本不可置冰箱冷藏或低温保存，否则

会使病原微生物死亡，尤其是脑膜炎奈瑟氏菌、肺炎链球菌

和流感嗜血杆菌。

13.5痰液及支气管分泌物标本的采集：

13.5.1标本采集

采集应在临床工作人员指导下进行，并尽可能在抗菌药物使

用之前采集；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、

肺鼠疫等）的患者采集检验标本时必须注意生物安全防

护，一般采用以下几种方法：

13.5.1.1自然咳痰法晨痰最佳，患者清晨起床后，用清水或牙

刷清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙。用力深咳，从气

管咳出呼吸道深部的痰，痰直接吐入无菌、清洁、干燥、不

渗漏的广口带盖容器中，标本量NlmL立即送检。对于痰量

少、无痰或咳痰困难者可雾化吸入加温至45c的100g/L无菌

NaCl水溶液，使痰液易于排出。

13.5.1.2支气管镜采集法由临床医生按相应操作规程采集。用

支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得

标本，该方法对患者有一定痛苦，不易接受。

13.5.1.3防污染毛刷采集法和支气管肺泡灌洗法由临床医生

按相应操作规程采集，采集标

本放入痰杯中，标本量应大于1mL立即送检，必须注意采集

标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。

13.5.1.4小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部,

小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子

上送检。由临床医生采集。

13.5.1.5支气管分泌物，应由医师利用支气管镜直接自患者支

气管内采取后立即送检。

13.5.2注意事项

标本采集后尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存不超

过2小时。

13.6脓液及创面分泌物标本的采集

13.6.1标本采集，常见类型如下：

13.6.1.1组织（脓肿周围或感染部位下组织）经手术或活检

获得的组织是最好的检测标本，应尽快送微生物室，以便及

时、正确地处理。

13.6.1.2开放性或闭合性脓肿以无菌生理盐水或75%乙醇擦

去创口表面分泌物，尽量抽吸深部脓液送检，标本量21ml。

13.6.1.3创面分泌物组织和脓液优于拭子，若必须使用拭子采

集标本，则深入伤口，取邻近新生组织处标本，尽快送检。

13.6.1.4常见皮肤软组织感染标本采集

a）蜂窝组织炎以无菌生理盐水或75%乙醇清洁局部后，用注

射器自炎症中央（而非边缘）抽吸。未形成脓肿时，标本难以采

集，可用小量无菌生理盐水灌洗，注入无菌杯送检。

b）耳部感染包括内耳及外耳感染。鼓膜穿刺术适用于复杂的、

复发的或慢性持续性中耳炎。①鼓膜破裂时，通过反射镜，

用柔软拭子采集，置配套的无菌拭子管内送检。②外耳炎时,

以湿棉签清洁耳道，用力转动拭子采集标本，以免漏检链球

菌。

c）眼部感染包括结膜、角膜、玻璃体感染。由于标本量小，

推荐在床边接种平板及涂片。①以无菌生理盐水湿润拭子，

两侧分别以不同的拭子在结膜上滚动，直接接种血平板及巧

克力平板，也可将拭子送实验室接种。应注意即使只有一侧

发生结膜炎，亦尽能采集双侧标本，以确定局部菌群，与患

侧分离菌比较。②角膜刮取物由眼科医生在麻醉下采取（麻

醉剂可能抑制某些细菌生长，尽量在麻醉前采集结膜标本）。

用无菌刮匙刮取溃疡或损伤处，刮取物直接接种血平板及巧

克力平板及真菌培养基。③玻璃体抽吸液注入无菌杯送检，

若标本量小，可直接接种培养基。

13.6.1.5导管相关性感染怀疑发生导管相关性感染时，应采集

导管做病原学检查。采集方法：以70%乙醇消毒导管周围皮

肤，无菌操作拔除导管，剪下近心端末梢5cm,置无菌容器,

立即送微生物室，以免干燥。

13.6.2注意事项

13.6.2.1脓液、拭子，室温下2小时内，最长不超过24小时

送到实验室。

13.6.2.2组织置无菌杯送检。标本量少时，加几滴无菌生理盐

水保湿。室温下1小时内，最长不超过24小时送到实验室。

胃活检组织室温下1小时内，或者4c环境下，最长不超过

24小时送达实验室。

13.6.2.3蜂窝组织炎标本：无菌杯（不推荐注射器直接运送）

室温下1小时内，最长不超过24小时送达实验室。

13.6.2.4耳部感染标本：室温下2小时内，最长不超过24小

时送达实验室。外耳标本若不能在2小时内送达实验室，可

于4c保存，最长不超过24小时。

13.6.2.5眼部感染标本：培养基或标本室温下7min内，结膜

拭子2小时内，最长不超过24小时送达实验室。

13.6.2.6导管：室温下1小时内送达实验室。否则，4c环境

下，2小时内送达实验室。

13.7穿刺引流液标本的采集

13.7.1标本采集

13.7.1.1由临床医生按照相关临床操作规程采集穿刺液、引流

液标本。

13.7.1.2无菌操作，经皮穿刺抽取体腔积液，注入无菌杯送检。

亦可直接接种血培养瓶，其中0.5ml注入无菌杯以备涂片显

微镜检查。

13.7.1.3细菌培养标本量须在1ml以上，诊断非卧床腹膜透

析患者腹膜炎时，至少采集10ml标本。

13.7.2注意事项

13.7.2.1避免自引流袋采集标本，避免以拭子送检标本。

13.7.2.2标本采集后，应及时送实验室。室温下2小时内，

最长不超过24小时送到实验室。

13.7.2.3心包积液以及用于真菌培养的体液，4c环境下，不

超过24小时送到实验室。

13.7.2.4运送容器中应加入抗凝剂，以防止运送过程中凝固.

13.8生殖器官标本的采集

13.8.1标本采集

根据感染的部位和可能的病原体确定病原学诊断的标本种

类、采集部位和采集方法等。由于外生殖器存在有正常菌群,

所以在采集标本时应注意尽量减少或避免正常菌群的污染。

13.8.1.1尿道分泌物

a）男性标本：清洗外尿道，将灭菌拭子插入尿道内2〜4cm,

转动并停留2s采集标本。

b）女性标本：清洗外尿道，用灭菌拭子经阴道在耻骨联合处

按摩尿道采集排出物。

13.8.1.2巴氏腺、尿道旁腺：碘酊消毒皮肤，抽吸液体到灭菌

容器中或用灭菌拭子蘸取。

13.8.1.3阴道分泌物：用灭菌拭子擦去多余的分泌物或排出

物，弃去；再用另一灭菌拭子或吸管从阴道穹隆粘膜采取分

泌物；如果要作涂片，则再用一根拭子。

13.8.1.4宫颈分泌物：用窥器无润滑剂观察官颈，用灭菌拭子

擦取官颈的粘液和分泌物，弃去；重新用灭菌拭子小心轻轻

地从颈管采集标本。

13.8.1.5前列腺按摩液：清洗尿道口，从肛门用手指按摩前列

腺，用无菌拭子或无菌容器收集前列腺液。

13.8.1.6溃疡分泌物：先用生理盐水清洁病灶，用灭菌拭子取

其边缘或底部的分泌物。

13.8.2注意事项

采集标本后应立即室温送检，否则会影响检出率。

13.9临床真菌感染标本的采集

详见表13.9.1

13.9.1标本采集的类别，具体标本采集方法和运送见下表

标本采集

运送/保存的

标本类型备注

用途及方法器材及标本最小用量时间和温度

血液碘酒消毒皮肤，采

无菌血培养瓶，标本<2h,RT*/

集少