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文档简介
ICS65.020.20
B31
DB32
江苏省地方标准
DB32/T3775—2020
猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-LAMP检测
方法
RT-LAMPmethodforDetectiongPorcineReproductiveandRespiratory
SyndromeVirus
2020-04-08发布2020-05-15实施
江苏省市场监督管理局发布
DB32/T3775—2020
前言
本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。
本标准由南京农业大学提出并归口。
本标准起草单位:南京农业大学。
本标准主要起草人:姜平、张日腾、白娟、熊富强、王先炜、李玉峰、陈闻。
II
DB32/T3775—2020
猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-LAMP检测方法
1范围
本标准规定了猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-LAMP检测原理、试剂和仪器设备、检测程序和结果判
定。
本标准适用于猪临床样品(肺脏、脾脏和血清)和细胞培养物中猪繁殖与呼吸综合征病毒的检测;
同时适用于猪繁殖与呼吸综合征病毒经典型、高致病性、类NADC30型三种基因亚型的分型检测。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改版)适用于本文件。
GB19489实验室生物安全通用要求
GB/T27401实验室质量控制规范动物检疫。
NY/T541兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范
SN/T1193基因检验实验室技术要求
3缩略语
PRRSV:porcinereproductiveandrespiratorysyndromevirus,猪繁殖与呼吸综合征病毒
LAMP:loop-mediatedisothermalamplification,环介导的恒温扩增
RT-LAMP:Reversetranscription,loop-mediatedisothermalamplification,反转录环介导的恒温扩增。
4原理
猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)主要引起猪繁殖与呼吸综合征(俗称蓝耳病)。该病毒有美洲
型和欧洲型两个血清型。美洲型又有多个基因亚型。我国流行的美洲型PRRSV主要有传统型、高致病
性和类NADC30型毒株,其主要区别存在于病毒的Nsp2基因。环介导的恒温扩增(LAMP)是一种体
外恒温核酸扩增技术,用于快速检测DNA。RT-LAMP是一种逆转录LAMP,用于检测RNA。本标准
RT-LAMP,根据PRRSV开放阅读框架7(ORF7)基因序列、ORF1a(非结构蛋白Nsp2)基因序列设
计4组引物,建立4种RT-LAMP检测方法(即LAMP1、LAMP2、LAMP3和LAMP4),其中LAMP1
的特异性引物识别ORF7基因,LAMP2、LAMP3和LAMP4的特异性引物识别Nsp2基因。每种LAMP
引物均包括两对内、外引物(内引物FIP与BIP,外引物F3与B3)和一对环引物(LF与LB)。利用
Bst酶启动循环链置换反应,启动互补链合成,通过在同一链上互补序列周而复始形成有很多环状结构
的茎环DNA混合物,在恒温条件下完成核酸扩增反应。从dNTP析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的
Mg2+结合,产生副产物(焦磷酸镁)形成白色沉淀,加入显色液,即可通过颜色变化观察判定结果。
该检测方法简便快速、敏感特异,不需要昂贵的仪器设备。
1
DB32/T3775—2020
5试剂和仪器设备
5.1试剂要求
除有特殊说明外,所有生化试剂均为分析纯。RNA提取相关试剂或用品均需经无RNA酶处理。
5.2引物
PRRSVLAMP检测引物和PRRSV毒株基因亚型鉴别LAMP引物,人工合成(基因序列见附录B.1)。
5.3通用试剂
裂解液(TRIZOL);氯仿;0.01mol/L磷酸盐缓冲液(PBS,pH7.2)(见附录A.1);DEPC处理水(见
附录A.2);异丙醇;75%乙醇;耐热M-MLV(RNaseH-)反转录酶;pMD18-T载体;胶回收试剂盒(Qiagen);
质粒DNA提取试剂盒(TaKaRa);PCR试剂(Promega)。
5.4LAMP试剂
——10×BstDNA聚合酶缓冲液(见附录A.3);
——100mmol/LMgSO4;
——10mmol/LdNTPs(dATP,dCTP,dTTP,dGTP);
——8U/µLBstDNA聚合酶;
——5mol/L甜菜碱(Betaine);
——灭菌双蒸水。
——SYBRGreenI染料,1000×。
5.5阴性及阳性对照
5.5.1阴性对照
pMD18-T空载体质粒。
5.5.2阳性对照
LAMP1阳性对照为pMD-BB-N质粒(含高致病性PRRSVBB0907毒株ORF7基因);LAMP2阳性对
照为pMD-S1-Nsp2质粒(含传统型PRRSVS1毒株Nsp2基因);LAMP3阳性对照为pMD-BB-Nsp2质粒(含
高致病性PRRSVBB0907毒株Nsp2基因);LAMP4阳性对照为pMD-FJ-Nsp2质粒(含类NADC30PRRSV
FJ1402毒株Nsp2基因)。
5.6仪器
高速冷冻离心机,恒温水浴锅,微量移液器(0.5μL~10μL、20μL~200μL、100μL~1000μL),
PCR仪,EP反应管(0.5mL、1.5mL),组织匀浆器或研钵。
6检测程序
6.1样品处理
按照NY/T541动物疫病实验室检验采样方法,采集待检猪的肺脏、脾脏和血清等样品。肺脏、脾
脏取约1g,剪碎后按1:3(V/V)加入PBS(0.01mol/L,pH7.2),充分匀浆呈悬液。血清制备方法为:血
2
DB32/T3775—2020
液(不加抗凝剂)室温静置2h~3h后,4000r/min离心5min,取上清液置于EP管内。处理好的匀浆悬
液和血清于-20℃保存备用。
样品RNA制备按照经验证的RNA提取方法或等效的商品化RNA提取试剂盒,按照其使用说明操
作。提取的RNA应在2h内进行反转录或放置于-20℃保存备用。
6.2反转录(cDNA的合成)
配制反转录反应体系19µL,含M-MLV5×Reactionbuffer(含Mg2+)4µL;2.5mol/LdNTPs1µL;
Olige(dT)1µL,RNA酶抑制剂0.5µL;DEPCddH2O5.5µL,RNA7μL,70℃水浴5min后置冰上冷
却至37℃,再加入1.0µL反转录酶M-MLV,42℃水浴1h得cDNA,用于下面LAMP扩增,或-20℃
冻存备用。
6.3LAMP检测方法
6.3.1反应体系
采用四管两步RT-LAMP检测方法进行。
第一步(1管):采用LAMP1通用引物(见附录B.1),检测所有PRRSV毒株。
第二步(3管):对第一步检测结果为阳性的样本,采用LAMP2、LAMP3和LAMP4引物(见附录B.1),
用3个EP管,同时进行LAMP,鉴别不同基因亚型PRRSV。
四个反应管反应体系相同,总体积25μL,具体反应体系如下:
10×BstDNA聚合酶缓冲液(见附录A.3)2.5µL
MgSO4(4μmol/L)1.5µL
2.5mMdNTPs3.5µL
甜菜碱(Betaine)2.0µL
外引物F3/B3(4μmol/L)各1.0µL
内引物FIP/BIP(40μmol/L)各1.0µL
环引物LF/LB(10μmol/L)各1.0µL
BstDNA聚合酶(8U)1.0µL
耐热M-MLV反转录酶1.0µL
cDNA模板1.5µL
双蒸水6.0µL
总计
25µL
但其中的引物不同,分别是LAMP1、LAMP2、LAMP3和LAMP4引物(见附录B.1)。每次检测应分
别设立阴性和阳性对照样品管。LAMP1阳性对照为pMD-BB-N,LAMP2阳性对照为pMD-S1-Nsp2,
LAMP3阳性对照为pMD-BB-Nsp2,LAMP4阳性对照为pMD-FJ-Nsp2质粒DNA,阴性对照为pMD18-T空
载体质粒DNA。
在EP管的管盖上滴加1000×SYBRGreenⅠ染料1.0μL,再轻轻地把盖子盖紧。
6.3.2反应条件
将反应管混匀,置64±1℃扩增40min且保证管盖上的SYBRGreenI不进入反应物。
3
DB32/T3775—2020
7结果判定
7.1PRRSV阴阳性判定
反应结束后,将LAMP1反应管12000r/min,离心1min,轻轻混匀,观察颜色变化,绿色为阳性,
淡黄色为阴性。
7.2PRRSV基因亚型的类型判定
在阴性对照、阳性对照符合时,判定样品检测结果(参见附录B.2)。
若LAMP1结果为阳性,则判定是PRRSV阳性,否则判定为PRRSV阴性。
若LAMP2检测为阳性,LAMP3、LAMP4检测为阴性,则判定是PRRSV经典型毒株。
若LAMP3检测为阳性,LAMP2、LAMP4检测为阴性,则判定是PRRSV高致病性毒株。
若LAMP4检测为阳性,LAMP2、LAMP3检测为阴性,则判定是PRRSV类NADC30型毒株。
8安全和防污染措施
8.1检测废弃物等实验室安全防护按GB19489和SN/T1193的规定执行。
8.2检测过程中防止污染措施按GB/T27401的规定执行。
8.3实验前后,实验室用紫外线消毒。
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DB32/T3775—2020
AA
附录A
(规范性附录)
试剂配制
A.10.01mol/L(pH7.2)的磷酸盐缓冲液(PBS)
A液(0.2mol/L磷酸二氢钠水溶液):NaH2PO4·2H2O27.6g,先用适量蒸馏水溶解,最后用蒸馏水
稀释至1000mL。
B液(0.2mol/L磷酸氢二钠水溶液):Na2HPO4·12H2O71.6g(或Na2HPO4·2H2O35.6g)先用适量蒸
馏水溶解,最后用蒸馏水稀释至1000mL。
A液14mL,B液36mL,加氯化钠(NaCl)8.5g,最后用蒸馏水定容至1000mL;121℃,15min
高压灭菌,4℃保存备用。
A.2DEPC处理水
用0.1%DEPC处理后的蒸馏水(DEPC与蒸馏水1:1000混合),经121℃15min高压处理,用于溶
解RNA。
A.310×BstDNA聚合酶缓冲液
含200mmol/LTris-HCl,100mmol/LKCl,100mmol/L(NH4)2SO4,20mmol/LMgSO4,1%Triton-100,
pH8.8,25℃保存。
5
DB32/T3775—2020
BB
附录B
(资料性附录)
引物序列
B1PRRSVLAMP检测引物和PRRSV毒株基因亚型鉴别LAMP引物序列,见表B.1。
表B.1LAMP引物序列
引物种类引物名称序列bp
通用引物G-F3AGAAAAACCCGGAGAAGCC140-156
LAMP1G-B3TGCTGAGGGTGATGCTGT352-369
G-FIPACAATTGCCGCTCACTAGGGGTTTTCCATTTCCCTCTTGCGACT157-177
203-223
G-BIPCGCTGGAACTTGTGCCCTGTTTTTGCACAGTATGTTGCGTAGGC258-277
318-337
G-LFGTGATGCCTGACGTCATCTTC178-198
G-LBGGGAGGATAAGTTACACTGTGGA286-308
BB-NFATGCCAATAATAACGGCAAGCA0-22
RTCATGCTGAGGGTGATGCTGT351-371
经典毒株C-F3ACCGCAATGCATCTTCAGG1523-1546
LAMP2C-B3GTCTGTGAGGAAGCAGACAA1723-1743
C-FIPTCGGCTCACTCAAGGGTGTCATTTTAGTGAGCCGGCTCCAATT1561-1578
1611-1619
C-BIPGCACCGCGGCGTAAGTTTCATTTTGTTCTGGTACGGTGGGATTG1642-1662
1692-1711
C-LBGCAGGTGAAAAGATTGAGTTCGGC1664-1686
S1-Nsp2FAGCTGGTGATTGTGTCCTCA1500-1520
RCTCTACTCCCAGAACGCCCCC1780-1800
高致病性毒H-F3TTGAGGCGGCGAATCAGA887-905
株LAMP3H-B3CCAGGACAACCTCTTCCAAC1077-1096
H-FIPCCTTGCCCAAAGGCTCTTGAGTTTTTAACCGGACAACCTCACGT906-923
955-976
H-BIPTGACCGCCTTCTCACTGTCCATTTTCCTCTCACGGTGATGAACCT988-1008
1037-1054
H-LFCAGGGTGCAGCATGAGTTG925-943
H-LBTGCTATTACCCTGCACAAGGTG1012-1033
BB-Nsp2FTTGAGGAATGCTTGGCCAA800-818
RTCGACCTGCTCAGCCGCCCGGGCCA1126-1250
类NADC30N-F3TTGTGCTTCCTGGGGTTG871-891
毒株LAMP4N-B3AACTACCACACCTGGACCT1384-1399
N-FIPGCCATGACAGAAACTGGAGCGTTTTTGAGGCTGCTCAAGCAACG893-910
934-957
N-BIPAAGCGGAGTCTGTCAGGAGCCTTTTGATCTTTCTGCGTGGGGC1321-1343
1365-1384
N-LFTGGTTGATAGGGGGCAGTTC912-927
N-LBTCCAGAGAGCAGGCCTCT1343-1363
FJ-Nsp2FTGAAGAATGCTTGGCTAGGCT800-820
RCTACGCTTGACAGGGAGCT1481-1500
6
DB32/T3775—2020
B.2RT-LAMP结果示图
RT-LAMP检测结果示图B.1
图B.1RT-LAMP检测方法染料染色图
1.阳性样品(+)
2.阳性对照(+)
3.阴性对照(-)
______________
7
DB32/T3775—2020
目次
前言.........................................................................................................................................................Ⅰ
1范围...........................................................................................................................................................1
2规范性引用文件.......................................................................................................................................1
3缩略语.......................................................................................................................................................1
4原理...........................................................................................................................................................1
5试剂和仪器设备.......................................................................................................................................2
6操作程序...................................................................................................................................................2
7结果判定...................................................................................................................................................4
8安全和防污染措施...................................................................................................................................4
附录A(规范性附录)试剂的配制.................................................................................................5
附录B(资料性附录).......................................................................................................................6
I
DB32/T3775—2020
猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-LAMP检测方法
1范围
本标准规定了猪繁殖与呼吸综合征病毒RT-LAMP检测原理、试剂和仪器设备、检测程序和结果判
定。
本标准适用于猪临床样品(肺脏、脾脏和血清)和细胞培养物中猪繁殖与呼吸综合征病毒的检测;
同时适用于猪繁殖与呼吸综合征病毒经典型、高致病性、类NADC30型三种基因亚型的分型检测。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改版)适用于本文件。
GB19489实验室生物安全通用要求
GB/T27401实验室质量控制规范动物检疫。
NY/T541兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范
SN/T1193基因检验实验室技术要求
3缩略语
PRRSV:porcinereproductiveandrespiratorysyndromevirus,猪繁殖与呼吸综合征病毒
LAMP:loop-mediatedisothermalamplification,环介导的恒温扩增
RT-LAMP:Reversetranscription,loop-mediatedisothermalamplification,反转录环介导的恒温扩增。
4原理
猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)主要引起猪繁殖与呼吸综合征(俗称蓝耳病)。该病毒有美洲
型和欧洲型两个血清型。美洲型又有多个基因亚型。我国流行的美洲型PRRSV主要有传统型、高致病
性和类NADC30型毒株,其主要区别存在于病毒的Nsp2基因。环介导的恒温扩增(LAMP)是一种体
外恒温核酸扩增技术,用于快速检测DNA。RT-LAMP是一种逆转录LAMP,用于检测RNA。本标准
RT-LAMP,根据PRRSV开放阅读框架7(ORF7)基因序列、ORF1a(非结构蛋白Nsp2)基因序列设
计4组引物,建立4种RT-LAMP检测方法(即LAMP1、LAMP2、LAMP3和LAMP4),其中LAMP1
的特异性引物识别ORF7基因,LAMP2、LAMP3和LAMP4的特异性引物识别Nsp2基因。每种LAMP
引物均包括两对内、外引物(内引物FIP与BIP,外引物F3与B3)和一对环引物(LF与LB)。利用
Bst酶启动循环链置换反应,启动互补链合成,通过在同一链上互补序列周而复始形成有很多环状结构
的茎环DNA混合物,在恒温条件下完成核酸扩增反应。从dNTP析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的
Mg2+结合,产生副产物(焦磷酸镁)形成白色沉淀,加入显色液,即可通过颜色变化观察判定结果。
该检测方法简便快速、敏感特异,不需要昂贵的仪器设备。
1
DB32/T3775—2020
5试剂和仪器设备
5.1试剂要求
除有特殊说明外,所有生化试剂均为分析纯。RNA提取相关试剂或用品均需经无RNA酶处理。
5.2引物
PRRSVLAMP检测引物和PRRSV毒株基因亚型鉴别LAMP引物,人工合成(基因序列见附录B.1)。
5.3通用试剂
裂解液(TRIZOL);氯仿;0.01mol/L磷酸盐缓冲液(PBS,pH7.2)(见附录A.1);DEPC处理水(见
附录A.2);异丙醇;75%乙醇;耐热M-MLV(RNaseH-)反转录酶;pMD18-T载体;胶回收试剂盒(Qiagen);
质粒DNA提取试剂盒(TaKaRa);PCR试剂(Promega)。
5.4LAMP试剂
——10×BstDNA聚合酶缓冲液(见附录A.3);
——100mmol/LMgSO4;
——10mmol/LdNTPs(dATP,dCTP,dTTP,dGTP);
——8U/µLBstDNA聚合酶;
——5mol/L甜菜碱(Betaine);
——灭菌双蒸水。
——SYBRGreenI染料,1000×。
5.5阴性及阳性对照
5.5.1阴性对照
pMD18-T空载体质粒。
5.5.2阳性对照
LAMP1阳性对照为pMD-BB-N质粒(含高致病性PRRSVBB0907毒株ORF7基因);LAMP2阳性对
照为pMD-S1-Nsp2质粒(含传统型PRRSVS1毒株Nsp2基因);LAMP3阳性对照为pMD-BB-Nsp2质粒(含
高致病性PRRSVBB0907毒株Nsp2基因);LAMP4阳性对照为pMD-FJ-Nsp2质粒(含类NADC30PRRSV
FJ1402毒株Nsp2基因)。
5.6仪器
高速冷冻离心机,恒温水浴锅,微量移液器(0.5μL~10μL、20μL~200μL、100μL~1000μL),
PCR仪,EP反应管(0.5mL、1.5mL),组织匀浆器或研钵。
6检测程序
6.1样品处理
按照NY/T541动物疫病实验室检验采样方法,采集待检猪的肺脏、脾脏和血清等样品。肺脏、脾
脏取约1g,剪碎后按1:3(V/V)加入PBS(0.01mol/L,pH7.2),充分匀浆呈悬液。血清制备方法为:血
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DB32/T3775—2020
液(不加抗凝剂)室温静置2h~3h后,4000r/min离心5min,取上清液置于EP管内。处理好的匀浆悬
液和血清于-20℃保存备用。
样品RNA制备按照经验证的RNA提取方法或等效的商品化RNA提取试剂盒,按照其使用说明操
作。提取的RNA应在2h内进行反转录或放置于-20℃保存备用。
6.2反转录(cDNA的合成)
配制反转录反应体系19µL,含M-MLV5×Reactionbuffer(含Mg2+)4µL;2.5mol/LdNTPs1µL;
Olige(dT)1µL,RNA酶抑制剂0.5µL;DEPCddH2O5.5µL,RNA7μL,70℃水浴5min后置冰上冷
却至37℃,再加入1.0µL反转录酶M-MLV,42℃水浴1h得cDNA,用于下面LAMP扩增,或-20℃
冻存备用。
6.3LAMP检测方法
6.3.1反应体系
采用四管两步RT-LAMP检测方法进行。
第一步(1管):采用LAMP1通用引物(见附录B.1),检测所有PRRSV毒株。
第二步(3管):对第一步检测结果为阳性的样本,采用LAMP2、LAMP3和LAMP4引物(见附录B.1),
用3个EP管,同时进行LAMP,鉴别不同基因亚型PRRSV。
四个反应管反应体系相同,总体积25μL,具体反应体系如下:
10×BstDNA聚合酶缓冲液(见附录A.3)2.5µL
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