临床检验技能操作

试验一、血涂片的制备和染色

【原理】将一小滴血液匀称涂在玻片上，呈单层紧密分布，制成薄血片。

用含天青B和伊红的Romannowsky类染料进行染色。细胞中的碱性物质

如RBC中的血红蛋白与嗜酸性粒细胞胞质中的嗜酸性颗粒等与酸性染料

伊红结合染成红色；细胞中的酸性物质如淋巴细胞胞质与嗜碱性粒细胞质

中的嗜碱性颗粒等与碱性染料亚甲蓝结合染成蓝色；中性粒细胞的中性颗

粒呈等电状态与伊红和美蓝均可结合，染成淡紫红色。

【器材】

1.载玻片运用前，必需细致清洗，并用乙醇或软布清洁。

2.推片选择边缘光滑的载玻片，在两角分别作斜线标记，然后用

坡璃切割刀裁去两角，制成约15mm宽度的推片。

3.吸耳球。

4.显微镜。

5.酒精灯。

6.采血针。

7.注射器和针头。

【试剂】

1.瑞氏(Wright)染液

(1)I液:包含瑞氏染料LOg、纯甲醇(AR级以上)600ml、甘油15ml。

将全部染料放入清洁干燥的乳钵中，先加少量甲醇渐渐地研磨(至少

30min),以使染料充分溶解，再加一些甲醇混匀，然后将溶解的部分倒入

干净的棕色瓶内，乳钵内剩余的未溶解的染料，再加入少许甲醇细研，如

此多次研磨，直至染料全部溶解，甲醇用完为止。再加15ml甘油密闭保

存。

(2)II液：磷酸盐缓冲液(pH6.4~6.8),包含磷酸二氢钾(KH2POJ

0.3g、磷酸氢二钠(Na2HPO4)0.2g、蒸镭水加至1000mL配好后用磷酸

盐溶液校正pH,塞紧瓶口贮存。如无缓冲液可用簇新蒸僧水代替。

2.吉姆萨染液包含吉姆萨染料0.75g、甘油35ml、甲醇65ml。将

吉姆萨染料、甘油和甲醇放入含玻璃珠的容器内，每天混匀3次，连续4

天，最终过滤备用。

3.瑞-吉复合染液

(1)I液：包含瑞氏染料1g、吉姆萨染料0.3g、甲醇500ml、中性甘

油10ml。将瑞氏染料和吉姆萨染料置干净研钵中，加少量甲醇，研磨片刻，

再吸出上液*如此连续几次，共用甲醇5002。收集于棕色玻璃瓶中，每

天早、晚各摇3min,共5d,以后存放1周即能运用。

⑵II液即磷酸盐缓冲液(PH6.4〜6.8)。包含无水磷酸二氢钾6.64g、

无水磷酸氢二钠2.56g,加少量蒸僧水溶解，用磷酸盐调整pH,加水至

1000mlo

【操作】

1.采血

(1)静脉采血法：用EDTAK抗凝1~2h内的标本，运用玻棒、毛细

管、注射针头等在距载玻片一端1cm处加1滴抗凝血，直径约4mm。

(2)皮肤采血法：选择第三、四手指，并先采红细胞、白细胞计数,

再采血1滴置干净玻片上用于血涂片制备。

2.制作涂片左手平执载玻片，或放在类似桌子等平坦地方，右手

持推片从后方移动接近血滴，使血液沿推片边缘绽开，将推片与载玻片呈

30。〜45。角，用匀称速度向前将血液推成厚薄相宜的血涂片，血涂片应呈

舌状，头、体、尾三部分，且清晰可见。全部血液必需在推片到达末端前

用完。推大于一片血片。贫血病人推片速度要快。

3.干燥涂片

空气干燥：快速干燥。

4.标记涂片在载玻片的一端用记号笔编号，注明患者姓名或门诊/

住院号。

5.染色

(1)瑞氏染色法：待血涂片干透后，用蜡笔在两端画线，以防染色

时染液外溢。然后将玻片平置于染色架上，滴加染液(I液)3~5滴，使

其快速盖满血涂片，约05~lmin后，滴加等量或稍多的缓冲液(II液)，

轻轻摇动玻片或用吸球对准血涂片吹气，使染液充分混合。5〜lOmin后用

流水冲去染液，待干。

(2)吉姆萨染色法：将固定的血涂片置于被pH6.4〜6.8磷酸盐缓冲

液稀释10~20倍的吉姆萨染液中，浸染10〜30min(标本较少可用滴染)。

取出用流水冲洗，待干燥后显微镜检查。

(3)瑞一吉复合染色法：操作步骤同瑞氏染色法，只是染色时将瑞

一吉复合染液I液和II液替代瑞氏染液的I液和II液。

6.视察结果将干燥后的血涂片置显微镜下视察。用低倍镜视察血

涂片体、尾交界处的血细胞。在显微镜下，成熟红细胞染成粉红色；血小

板染成紫色；中性粒细胞胞质染成粉红色，含紫红色颗粒；嗜酸性粒细胞

含大的桔黄色颗粒；嗜碱性粒细胞胞质含有大量深紫蓝色颗粒；单核细胞

胞质染成灰蓝色；淋巴细胞胞质染成淡蓝色。视察后显微镜擦拭。

【留意事项】

1.瑞氏染液簇新配制的染液偏碱，染色效果较差，经在室温下贮

存肯定时间，美蓝渐渐转变为天青B后方可运用，这一过程称染料成熟。

放置时间愈久，天青B愈多，染色效果愈好，但必需盖严瓶口，以免甲醇

挥发或氧化成甲酸。甲醇必需用AR(无丙酮)。染液中也可加中性甘油3ml,

防止甲醇挥发，使细胞染色较清晰°

2.采血

(1)不能采集以下部位的血液：①示指或拇指血液。②感染部位血

液，如甲沟炎。③耳垂部位血液，含单核细胞太多。

4.干燥涂片血涂片干透后方可固定染色，否则细胞尚未坚固地吸

附在玻片上，在染色过程中简单脱落。

5.染色步骤

(1)操作留意事项与操作不当的后果见表1-3。

操作留意事项操作不当的后果

加染液应适量过少则易蒸发沉淀，一旦染料沉积在血涂片

上，则不易冲洗，使细胞深染不易检查C

冲洗时不能先倒掉染液，应染料镇静在血涂片上

以流水冲洗

冲洗时间不能过久脱色

冲洗完的血涂片应立放于支剩余水分浸泡脱色

架上

(2)染色时间与染液浓度、室温与细胞多少有关。染液淡、室温低、

细胞多则染色时间要K；反之，可削减染色时间。必要时可增加染液量或

延长时间。冲洗前，应先在低倍镜下视察有核细胞是否染色清晰，核质是

否分明。应当在详细实践中摸索合适的时间，特殊是在更换染液时。每批

染色液和缓冲液，均需试染，以便驾驭染色时间和加缓冲液的比例。

6.结果视察低倍镜下视察血涂片应厚薄相宜，细胞不重叠，头尾

与两侧有肯定的空隙，一些体积大的特殊细胞常在血涂片的尾部出现。如

有可能，干燥后的血涂片先用中性树胶封片后再视察，不仅能长期保存血

涂片，而且视察效果更佳。

染色效可能缘由订正措施

果

太蓝涂片太厚、冲洗时间太短、中性水在含1%硼酸的95%乙醇溶

pH太高、染色时间太长、稀释染液冲洗2次，用中性水冲洗,

液重复运用、贮存染液暴露于阳光待干镜检

太红冲洗时间太长、中性水pH太低、规范操作。簇新配置中性水。

贮存染液质量不佳、涂片干燥前加保证染液质量不佳

封片

太淡染色时间太短、冲洗时间太长复染。应先加缓冲液，后加

染液，或加染液与缓冲液的

混合液，不行先加染液

染料沉染料沉淀、染液未过滤、涂片太脏用甲醇冲洗2次，并马上用

积水冲掉甲醇，待干后复染

蓝色背固定不当、涂片未固定贮存过久、留意涂片的固定。运用EDTA

景运用肝素抗凝剂抗凝静脉血

试验二、白细胞计数与分类计数

原理：用白细胞稀释液将血液稀释肯定的倍数，同时破坏溶解红细胞。将

稀释的血液注入血红细胞计数板，在显微镜下计数肯定体积内的白细胞

数，经换算即可求出每升血液中的白细胞数量。

器材：显微镜、改良牛鲍计数板、试管、吸管、微量吸管、滴棒。

试剂：白细胞稀释液

操作：

1s加稀释液用吸管吸取白细胞稀释液0.38ml于小试管中。

2、吸取血液用微量吸管吸取簇新全血或末稍血203,擦去管尖外部余

血。将吸管插入小试管中白细胞稀释液的底部，轻轻放出血液，并吸取上

层白细胞稀释液清洗吸管2~3次。

3、混匀将试管中血液与稀释液混匀，待细胞悬液完全变为棕褐色。

4、充池再次将小试管中的细胞悬液混匀。用滴棒蘸取细胞悬液1滴，充

入改良Neubauer计数板的计数池中，室温静置2〜3min,待白细胞完全

下沉。充两个池双份计数取平均值。

5、计数在低倍镜下计数四角4个大方格内的白细胞总数。

6、计算：白细胞=4X10X20X106=20X107L

留意事项：

1s稀释用吸管、微量吸血管、血红细胞计数板均为计量工具，运用前需

经过严格的校正，否则将干脆影响计数结果的精确。

2、运用标本可为由静脉搏穿刺实行的簇新全血，也可为静脉末梢血。采

集末梢血时，应留意采血部位不得有冻疮、水肿、发结、炎症等，以免标

本失去代表性；同时也应留意不能过度挤压，以免组织液混入引起血液凝

因或造成计数结果不精确。

3、在充池时，如充液不足、液体外溢、断续充液，或产生气泡、充液后

移动盖玻片等，均会使细胞分布不匀称，造成计数结果不精确。

4、计数池内的细胞分布应匀称，一般状况下各大方格间的细胞数相差不

超过10%,若相差太大，应重新充池。

5、计数大小方格内的压线细胞时，遵循数上不数下、数左不数右的原则。

6、白细胞数量过多时，可采纳加人稀释倍数的方法，留意区分杂质和白

细胞。

分类计数：

原理：将血液制成细胞分布匀称的血涂片，用瑞氏染液染色，依据各类细

胞的形态特点和颜色差异将白细胞进行分类并计数。通常分类100个白细

胞，计算得出各种白细胞所占的百分率。

器材：显微镜、分类计数器、香柏油、拭镜纸、清洁液。

试剂：瑞氏染液、磷酸盐缓冲液

操作：

1、染色将血涂片用瑞氏染液染色，冲洗干净，自然干燥后待用。

2、低倍镜视察低倍镜下视察白细胞分布和染色状况。

3、油镜视察选择血涂片体尾交界处细胞分布匀称、着色良好的区域，按

肯定的方向依次对所见的每1个白细胞进行分类，并用白细胞分类计数器

作好记录，共计数100个白细胞。

4、计算求出各类细胞所占的百分率

留意事项：

1、由于各种白细胞体积大小不等，体积较小的淋巴细胞在血涂片的头、

体部较多，而尾部和两侧以中性粒细胞和单核细胞较多，因此分类最佳区

域为体、尾交界处。

2、分类时要有秩序地、没肯定方向连续地进行，既不重复亦不遗漏，避

开主观选择视野。

3、分类计数结果的记录也可采纳手工画“正”或"++++”的方法。

试验三、红细胞计数

原理：稀释液将血液稀释肯定倍数，充入计数池后，在显微镜下计数肯定

体积内的红细胞数量，经换算求出每升血液中的红细胞数量。

器材：微镜、改良牛鲍记板、试管、微量吸管、玻璃棒。

试剂：细胞稀释液

操作：

1、加稀释液取小试管1支，加红细胞稀释液2ml。

2、加血用清洁干燥微量吸管采集末稍血或抗凝血10ul擦去管外余血，

轻轻加至红细胞稀释液底部，再轻吸上清液清洗吸管2〜3次，马上混匀。

3、充池混匀后用微量吸管或玻璃棒将红细胞悬液充入计数池，室温下平

放3〜5min,待细胞下沉后于显微镜下计数。

4、计数用高倍镜依次计数中心大方格内4角和正中5个中方格内的红细

胞数。

5、计算

红细胞/L=Nx5x10xi0限200二NxlO】。二100xio12

N：表示5个中方格内数得的红细数。

x5：将五个中方格红细胞数换算成1个大方格红细胞数。

xlO:将1个大方格红细胞数换13血液内红细胞数。

xlO6：1L=106UI

200：为血液的稀释倍数。

留意事项：白细胞

试验四、网织红细胞计数

原理：织红细胞胞质内残存的少量核蛋白体和核糖核酸等嗜碱性物质，在

活体染色时可被煌焦油蓝染成蓝色网状或颗粒状，可与完全成熟的红细胞

区分。

器材：微镜、香柏油、拭镜纸、清洁液、试管、玻片

试剂：10g/l煌焦油蓝水溶液，标本簇新全血。

操作：

1、加染液于小试管中加入10g/L煌焦油蓝生理盐水溶液2滴，再加入簇

新全血2滴，马上混匀，置室温下15〜20min。室温不行过低37度。

2、制备涂片取1小滴制成薄血涂片，自然干燥。

3、视察在低倍镜下选择红细胞分布匀称的部位进行视察。

4、计数在油镜下计数至少1000个红细胞中的网织红细胞数。

5、计算

网织红细胞分数二M/1000

网织红细胞肯定值（网织红细胞/L）=红细胞/Lx网织红细胞分数

试验五、红细胞沉降率

原理：肯定量的枸椽酸钠抗凝全血置于特制血沉管中，直立于特制血沉架

上lh后读取红细胞下沉后血浆的高度。

器材：魏氏血沉管、血沉架、吸管、试管。

试剂：09mmol/L枸椽酸钠溶液，簇新全血。

操作：

1、加抗凝剂吸取浓度为109mmol/L的枸檬酸钠0.4ml于试管中。

2、采静脉血取静脉血1.6ml,加入含抗凝剂的试管中，混匀。

3、装血沉管用血沉管吸入混匀全血至刻度“0”处，拭去管外残留余

血O

4、立血沉管将血沉管直立于血沉架上。

留意事项：

1、运用分析纯枸椽酸钠抗凝剂，配制时浓度应精确，配成后液体不浑

浊、无沉淀，保存期为2周。

2、严格限制采血量，使抗凝剂与血液比例为1：4O

3、血沉管内径要标准，放置要垂直，不得倾斜。

4、胞在单位时间内下沉的速度与血浆蛋白的量与质，血浆中脂类的量和

质，红细胞的大小与数量，是否成串钱相聚以与血沉管的内径、清洁度、

放置位置是否垂直，室温凹凸等因素都有关系。

5、采集时应空腹。

6、血沉的标本要在采集后3h内测定，并充分混匀。

7、温过低、过高和贫血时，对结果有影响。为此，血沉应尽量放在18~

25C。室温下测定。室温过高时血沉加快，可以按温度系数校正。室温过低

时血沉减慢，无法校正。

试验六、血小板计数

原理：液经稀释液按肯定比例稀释和破坏红细胞后，充入血细胞计数板内

在显微镜下计数肯定范围内的血小板数量，经过换算求出每升血液中血小

板的数量。

器材微镜，血细胞计数板，采血针，血红蛋白吸管，试管。

试剂10g/L草酸铁稀释液。

操作：

1、吸取稀释液精确吸取10g/L草酸核稀释液0.38ml,置于清洁小试管

中。

2、采血常规消毒无名指，穿刺后，让血液自然流出，精确采血20ul.置

于含有草酸镂的稀释液中，马上充分混匀。

3、稀释静置待完全溶血后再混匀lmin,置室温lOmin。

4、充液静置取混匀的血小板悬液1滴充入血细胞计数板内，静置10~

15min,使血小板充分下沉。空气干燥的季节应将血细胞计数板置湿盒内。

5、计数用高倍镜计数血细胞计数板中心大方格内的四角和中心共5个中

方格内血小板数量。

6、计算每升血小板数二5个中方格内血小板数xlO'/L

留意事项

1、草酸铁稀释液要清洁，无细菌、尘埃等污染。存放时间较长后应过滤

后再运用。

2、毛细血管采血时，针刺应达3mm深，使血液流畅。拭去第1滴血后马

上采血，以防血小板聚集和破坏。假如同时做白细胞和血小板计数时，应

先采血做血小板计数。

3、血液加入血小板稀释液内要充分混匀，但不行过度振荡，以免导致血

小板破坏和聚集。

4、血小板悬液充入血细胞计数板内须要静置10~15min,使血小板完全

下沉后再计数。但应留意保持湿度，避开水分蒸发而影响计数结果。

5、计数时间线不行太强，留意微有折光性的血小板与尘埃等的鉴别，附

着在血红细胞旁的血小板也要留意，不要漏数。

6、应在lh内计数完毕，否则结果偏低。

7、所用计量器材必需标准化。

8、检查前，患者应避开服用含有阿司匹林与其他抗血小板药物。

试验七、尿葡萄糖定性检查

原理：葡萄糖或其他还原性糖的醛基在热碱性溶液中，能将班氏试剂的蓝

色硫酸铜还原为黄色的氢氧化亚铜，进而形成红色氧化亚铜沉淀。

器材：试管架、中试管、滴管、试管夹、酒精灯。

试剂：

1s甲液枸椽酸钠，无水碳酸钠，蒸镭水加热助溶。

2、乙液硫酸铜，蒸储水加热助溶。冷却后，将乙液缓慢加入甲液中，不

断混匀，冷却至室温后补充蒸镭水至1000ml。如溶液不透亮则须要过滤,

煮沸后出现沉淀或变色则不能应用。

操作：

1、鉴定班氏试剂质量取中号试管1支，加入班氏试剂2.0ml,摇动试管

缓缓加热至沸腾，视察试剂有无颜色与性状改变，若试剂仍为透亮蓝色，

可进行以下试验。

2、加尿液向班氏试剂中加离心后的尿液02ml,混匀。

3、加热煮沸接着煮沸l~2min,或置沸水浴5min,自然冷却。

4、推断结果推断结果见表

糖定性试验结果推断

反应现象报告方式葡萄糖含量（mmol/L）

蓝色不变一<5.6

蓝色中略带绿色，但无沉淀±5.6〜11.2

绿色伴少许黄绿色沉淀+<28

较多黄绿色沉淀,以黄为++28~56

土黄色浑浊，有大量沉淀+++57~112

大量棕红色或砖红色沉淀++++>112

留意事项：

1、试剂与尿液的比例为10：lo

2、煮混时应时常摇动试管以防爆沸喷出，出可在沸水浴中试验。

3、检验糖尿病患者尿液中葡萄糖，应空腹或餐后2h留取尿标本0

4、尿液中有大量尿酸盐存在时，煮沸后也呈浑浊并带绿色，但久置后并

不变黄色而呈灰蓝色，故必需于冷却后视察结果。尿中含大量镂盐时可抑

制氧化亚铜沉淀的生成，应加碱煮沸除去。蛋白含量较高时也影响铜盐的

沉淀，可用加热乙酸法除去。

5、一些非糖还原性物质，如水合氯醛、氨基比林、PAS、阿匹林、青霉素、

链霉素、VitC、异烟肿等，当基在尿中含量过高时亦呈阳性反应，应停药

3d后再进行检查。在静脉输注大剂量VitC者5d内不宜做尿糖定性，或定

性时先将尿液煮沸使之分解破坏。

试验八尿沉渣镜检

原理：采纳显微镜视察的方法，依据尿液细胞、管型等有形成分的形态特

征，识别并记录其在显微镜肯定视野内的数量。

器材：载玻片、离心机、刻度离心管、盖玻片、滴管、一般显微镜、定量

尿沉渣分析板。

操作：

1、未离心干脆涂片法

(1)混匀：充分混匀尿液。

(2)制备涂片：取混匀的尿液1滴于载玻上，加盖玻片，留意避开产生气

泡。

(3)视察计数：①先用低倍视察全片细胞、管型等成分的分布状况，然后

用高倍镜确认。留意运用暗视野视察尿液有形成分，特殊是透亮管型。②

管型在低倍镜下视察，至少计数20个视野；细胞在高倍镜下视察至少计

数10个视野，取其三均值报告；尿结晶和盐类数量以每一高倍视野+、2

+、3+、4+报告。计数时要留意细胞的完整性，还要留意有无其他异样

巨大细胞、寄生虫虫卵、滴虫、细菌、粘液丝等，男性尿液标本还要留意

有无精子与卵磷脂小体。

2、离心沉淀涂片法

(1)离心尿液：透用于尿外观非明显浑浊的尿标本，是尿沉渣检查标准化

推行的方法。取尿液10ml离心5min,要求相对离心力为400go1500r/min

离心5min

(2)提取尿沉渣：手持离心管倾斜45。~90。，用滴管吸去上层尿液，保留

下层0.2ml尿沉渣。

(3)涂片：轻轻混匀尿沉渣后，取1滴置载玻片上，用18mmxl8mm或

22mmx22mm的盖玻片覆盖后显微镜检查。

（4）视察计数：与未离心尿干脆涂片法相同。

3、定量尿沉渣分析法定量尿沉渣分析板由1块硬质塑料板制成，每块板

内分为10个统一深度的计数池，每1个计数池内的计数区为l.Oul计数区

分为10个大方格，每个大方格又分为9个小方格。

（1）未离心法：干脆取充分混匀的尿液1滴充入定量尿沉渣分析计数池内，

在低倍镜下计数10个大方格内管型总数，在高倍镜下计数10个大方格内

细胞总数，此即每微升尿液某种细胞或管型的数量。

（2）离心法：尿液标本处理同离心尿沉淀涂片法，然后充池计数，方法同

上。

4、报告结果

（1）涂片法：细胞以最低数〜最高数/HP、管型以最低数~最高数/低倍镜

视野报告。结晶以所占视野面报告，无结晶为（一）；结晶占1/4视野：+）；

结晶占1/2视野为（++）；结晶占3/4视野为（+++）；结晶满视野为（++++）。

假如细胞、管理的数量过多难以计算，也可按结晶的报告方式报告结果。

（2）定量尿沉渣分析板法：以每微升某种细胞或管型数报告。

试验九尿沉渣定量检查

（一小时尿沉渣计数法）

操作：

1.标未收集：患者先排尿弃去，精确收集3h尿液于干燥容器内送检

（标本留取时间5:30〜8:30）。

2,精确测量3h尿量，充分混合。取混匀尿液10ml,置刻度离心管中，

1500r/min离心5min,用吸管吸奔J_层尿液9ml,留下1ml,充分混匀。

吸取混匀尿液1滴，注于血细胞计数板内。细胞共数10个大方格，管型

共数20个大方格。最终计算出红细胞/h、白细胞/h、管型/h。

留意事项：

1.尿液应簇新，PH应在6以下。

2.尿液比重最好在1.026以上。

3.如尿液中含多量磷酸盐时，应加少量稀醋酸液（切勿加多），使其

溶解；含大量尿酸盐时，应加温使其溶解。

4,亦可采纳尿沉渣定量分析板或尿沉渣自动分析仪进行尿沉渣定量

检查，详见有关资料。

试验十本-周氏蛋白定性检查

试剂：

1.200g/L磺基水杨酸溶液；

2.2mol/L醋酸盐缓冲溶液（pH4.9±0.1）c

操作：

1.先蒋尿液用磺基水杨酸法作蛋白定性检查，如呈阴性反应，则可认

为尿液标本中本-周氏蛋白阴性。

2,取透亮尿液4ml于试管中，再加入醋酸盐缓冲液1ml,混匀后，放

置56C。水浴中15分钟。如有浑浊或出现沉淀，再将试管放入沸水中，煮

沸3分钟，视察试管中浑浊或沉淀的改变，如浑浊变清、浑浊减弱或沉淀

削减，均提示本-周氏蛋白阳性。若煮沸后，浑浊增加或沉淀增多，表明

此尿液中还有其它蛋白质，此时应将试管从沸水中取出，马上过滤。如滤

液起先透亮，温度下降后浑浊，再煮沸时又透亮，提示本-周氏蛋白为阳

性。

留意事项：

1.过多的本-周氏蛋白，在90C。以上不易完全溶解，故需与比照管

比较，也可将尿液稀释后再测。

2.煮沸过滤除去尿中白、球蛋白时，动作要快速，并需保持高温，否

则本-周氏蛋白也会滤去。

试验十一尿含铁血黄素定性试验

试剂：

1.20g/L亚铁富化钾水溶液（用时簇新配制）；

2.3%盐酸。

操作：

1.取混匀的簇新尿液15ml,以2000r7min离心5min,倾去上清液。

2,在沉渣中加入簇新配制的20g/L亚铁氟化钾水溶液与3%盐酸液各

2ml,充分混匀,室温静置lOmin。

3.再离心沉淀，取沉淀物涂片，加盖玻片后用高倍镜（必要时用油镜）

检杳

.一i如见有分散或成堆蓝色闪光颗粒（直径l~3um）即为阳性，如在

细胞内则更为可信。

留意事项：

1.全部试管、玻片、试剂均应防止铁剂污染，以免出现假阳性。

2.一般应做阴性比照，如亚铁氟化钾与盐酸混和后即显深蓝色，表示

试剂已污染高铁，不宜再用。

试验十一尿乳糜定性检查

【试剂】

1.乙酸（AR）；

2.苏丹III醋酸乙醇染色液或猩红染色液。

【操作】

1.取尿5-10ml,加乙酸2-3ml,混合振摇后，使脂肪溶于乙酸。

静置数分钟后，2000r/min离心5mino

2,吸取乙酸与尿液的界面层涂片，加苏丹III醋酸乙醇染色液或猩红染

色液1滴。

3.镜检视察是否有红色脂肪小滴。

［留章事项］

1.尿液中加少量饱和氢氧化钠，再加乙酸，有助于澄清。

2.将分别的乙配层隔水蒸干，若留有油状沉淀，也可加苏丹川，镜检

证明有无脂肪小滴。

试验十二尿胆色素原定性试验

【试剂】

1,对二甲氨基苯甲醛试剂；

2.饱和醋酸钠溶液；

3.氯仿；

4.正丁醇。

【操作】__

1.在试管中，加入尿标本2ml与对二甲氨基苯甲醛试剂2ml,混合。

2,马上加饱和醋酸钠溶液4ml,混合，加氯仿3ml,振摇混合后，上

层水溶液呈红色者为阳性反应。

3.阳性结果应用下法证明：如尿胆原含量多，用一次氯仿不能完全抽

提尿胆原，应多次用氯仿抽提，直至氯仿层呈淡粉红色或无色为止，再视

察上层水溶液色泽。如上层水溶液为红色时，再加正丁醇4ml插提，如水

溶液仍呈红色则证明尿中胆色素元为阳性。

【留意事项】

1.醋酸钠溶液必需为饱和液。

2.当尿胆色素原浓度太高时，应将尿标本稀释25~100倍。

3.尿液必需簇新，不能久置。

试验十三尿苯丙酮酸定性试验

（三氯化铁法）

【试剂】

1.lOOg/L三氯化铁液；

2.磷酸盐沉淀剂。

【操作】

L尿液4ml加磷酸盐沉淀剂1ml,混匀，静置3min,如出现沉淀，

可用滤纸过滤或离心除去。

2,滤液中加入浓盐酸2~3滴和100g/L三氯化铁溶液2~3滴，每加

1滴马上视察颜色改变。以尿液显蓝绿色并持续2〜4min,为阳性。

【留意事项】

1.尿中若含酚类药物（如水杨酸制剂）与氯丙嗪，也可与氯化铁结合

显色，试验前应停用此类药物。胆红素也可造成假阳性。

2.小儿诞生后6周内不易查出。故于诞生6周后检查为宜。

3.大多数苯丙酮尿症患者的尿液可出现阳性。但约1/4-1/2病例可

能会漏检

4.亦可采纳2.4-二硝基苯月井法。

试验十四脑脊液显微镜检查

器材：显微镜、改良牛鲍计数板、微量吸管、刻度吸管、小试管。

试剂：生理盐水或红细胞稀释液，1%冰乙酸，白细胞稀释液，瑞氏染液或

瑞■吉染液。

操作：

(1)充池：干脆用微量吸管吸取混匀的脑脊液，充入血细胞计数板的上下

2个计数池。

⑵计数：静置2〜2min后，低倍镜下计数2个计数池内四角和中心大方

格共10个大方格内的细胞数。

(3)计算：10个大方格内的细胞总数即为每微升脑脊液细胞总数，再换算

成每升脑脊液细胞总数。

1细胞总数：

(1)澄'蓍脑普液：混匀后用滴管干脆滴入计数池，计数10个大方格

内红、白细胞数，其总和即为每ul的细胞数，(如细胞较多，可计数一大

格内的细胞数xlO)。

(2)浑浊或带血脑脊液：用血红蛋白吸管吸取混匀的脑脊液20ul,

加入含红细胞稀释液0.38ml的小试管内，混匀后滴入计数池内，用低倍镜

计数4个大方格中的细胞总数，再乘以50即为每ul脑脊液的细胞总数。

2.白细胞数：

(1)非血性标本：小试管内放入冰乙酸1〜2滴，转动试管，使内壁

沾有冰乙酸后倾去之，然后滴加混匀的脑脊液3〜4滴，数分钟后，混匀

充入计数池，按细胞总数操作中的红、白细胞计数法计数。

(2)血性标本：将混匀的脑脊液用1%冰乙酸溶液稀释后，按细胞总

数操作中的红、白细胞计数法计数，结果x稀释倍数。

3.细胞分类：

(1)干脆分类法：白细胞计数后，将低倍镜换成高倍镜，干脆在高

倍镜下依据细胞核的形态分别计数单个核细胞(包括淋巴细胞与单核细

胞)和多核细胞，应数100个白细胞，并以百分率表示。若白细胞少于100

个，应干脆写出单核、多核细胞的详细数字。

(2)染色分类法：如干脆分类不易区分细胞时，可将脑脊液离心沉

淀，取沉淀物2滴，加正常血清1滴，推片制成匀称薄膜，置室温或37C。

温箱内待干，进行瑞氏染色后用油镜分类。

如见有不能分类的细胞，应另行描述报告。

留意事项：

1、干脆白细胞计数时，也可用微量吸管吸取冰乙酸后尽可能全部吹出，

仅使吸管内壁粘附少许冰乙酸，再吸以少量混匀的脑脊液于吸管中，数分

钟后吸管内红细胞溶解，然后再充池计数。

2、细胞计数时，如发觉较多细胞有皱缩或肿胀等异样现象，应照实报告,

以帮助临床医学鉴别是陈旧性出血或簇新出血。

3、血性脑脊液中的白细胞必需校正后才有价值，校正方法是分别计数血

液红细胞、白细胞数和脑脊液细胞总数、白细胞数，扣除因出血而带进脑

脊液的白细胞数。

脑脊液红细胞数x血液白细胞数

白细胞校正数脑脊液白细胞未校正数一血液内红细胞数

4、细胞涂片时，为了使细胞简单粘在玻片上，可取沉淀的细胞悬液2滴,

加血清1滴，混匀后涂片。

5、涂片染色分类时，如见内皮细胞或异样细胞，则另行描述报告，必要

时用巴氏或HE染色查找肿瘤细胞。

6、试验结果后，血细胞计数板用075%乙醇浸泡消毒60min,忌用酚浸泡,

以免损坏计数板。

7、细胞计数时，应留意新型隐球菌与白细胞的区分。

试验十五脑脊液蛋白质定性检查

原理：脑脊液中球蛋白与苯酚结合，形成不溶性蛋白盐而产生白色浑浊或

沉淀。

器材：小试管、刻度吸管、尖滴管。

试剂：5%饱和苯酚溶液

操作：

1、加试剂取试剂2ml于小试管中。

2、加标本用尖滴管垂直滴加脑脊液标本1~2滴。

3、视察结果在黑暗背景下马上用肉眼视察结果。

4、推断结果

(1)清晰透亮，不呈现云雾状为(一)。

(2)呈微白雾状，对光不易望见，黑色背景下才能见到(±)o

（3）灰白色云雾状为（+3

（4）白色浑浊或白色薄云状沉淀为（++）。

（5）白色絮状沉淀或白色浓云块状为（+++）。

（6）马上形成白色凝块为（++++）。

留意事项：

1、当室温在10C。以下时，应将试剂保存在37C。温箱中，否则饱和度降低,

可致假阳性。

2、试管内径以小为佳，一般为（13±l）mm,加入试剂后马上视察结果。

3、标本中如红细胞过多，应离心沉淀取上清液检测。

试验十六浆膜腔积液显微镜检查

器材：显微镜、改良牛鲍计数板、微量吸管、小试管。

试剂：生理盐水或红细胞稀释液，冰乙酸，白细胞稀释液，瑞氏染液或瑞

-吉染液。

操作：

（一）有核细胞计数

1、干脆计数法

(1法除红细胞：在小试管内放入冰乙酸1~2滴，转动试管，使内壁粘附

少许冰乙酸后倾去，滴加混匀浆膜腔积液3~4滴，混匀，放置数分钟，

破坏红细胞。

(2)充池：用微量吸管取混匀破坏红细胞后的浆膜腔积液充入血细胞计数

板的2个计数池内。

(3)计数：静置2~3min后，低倍镜计数2个计数池内四周和中心大方格

共10个大方格内的有核细胞数。

(4)计算：10个大方格有核细胞总数即每微升浆膜腔积液的有核细胞总

数，再换算成每升浆膜腔积液的有核细胞数。

2、稀释计数法

(1)稀释破坏红细胞：依据标本内有核细胞多少，用白细胞稀释液对标本

进行肯定倍数稀释，混匀，放置数分钟，破坏红细胞。

(2)充池：用微量吸管取混匀稀释后的浆膜腔液充入1个计数池。

(3)计数：静置2~3min后，低倍镜计数1个计数池内的四角和中心大方

格共5个大方格内的有核细胞总数。

(4)计算：依据5个大方格内的有核细胞总数稀释倍数，计算每升浆膜腔

积液的有核细胞数。

(二)有核细胞分类

1s干脆分类法有核细胞计数后，将低倍镜转为高倍镜，干脆在高倍镜下

依据细胞形态和细胞核形态进行分类，共分类计数100个有核细胞，分别

计数单个核细胞（包括淋巴细胞、单核细胞与间皮细胞）和多个核细胞（粒

细胞）的百分率。方法基本与脑脊液同，漏出液中有核细胞数量常在100X

106/L以下；渗出液中有核细胞数量较多，常在500X107L以上。

2、涂片染色分类法在抽出穿刺液后，马上以1000r/min离心5min,取

沉淀物制成匀称的薄片，置于室温下或37C。恒温箱内尽快干燥，瑞氏或瑞

-吉染色后油镜分类计数100个有核细胞。一般标本中可见到淋巴细胞、

嗜中性粒细胞、嗜酸性粒细胞、间皮细胞等。

留意事项：

1、有核细胞计数应包括间皮细胞。

2、必要时可采纳细胞玻片离心沉淀仪收集细胞，以提高白细胞分类计数

的精确性。

3、有核细胞分类计数误差大，尤其是陈旧性、细胞变形的标本，故举荐

采纳涂片染色分类计数。

4、染色分类计数过程中，若发觉间皮细胞和不能分类的异样细胞应中外

描述或作HE、巴氏染色查找肿瘤细胞。

试验十七浆膜腔积液粘蛋白定性试验

原理：浆膜腔上皮细胞在炎症刺激下分泌粘蛋白。粘蛋白是一种酸性糖蛋

白，其等电点pH为3~5,因此，可在稀乙酸中出现白色沉淀。

器材：100ml量筒，滴管。

试剂:冰乙酸、蒸镭水。

操作：

1、加试剂加2~3滴冰乙酸于100ml量筒中，再加大约100ml蒸僧水，

混匀，此时溶液的pH为3〜5,静置数分钟。

2、加标本垂直滴加待测标本1滴于量筒中。

3、视察结果马上在黑色背景下视察有无白色云雾状沉淀生成与其下降程

度。

4、推断结果

（1）阴性、阳性结果的推断。

1）阴性：清晰，不显雾状或有稍微白色雾状浑浊，但在下降过程中消逝。

2）阳性：出现白色雾状浑浊并渐渐下沉至量筒底部不消逝。

（2）阳性程度的推断

1）渐呈白雾状为（土）

2）可见灰白色雾状为（+）

3）白色薄云状为（++）

4）白色浓玄状（++++）

留意事项:

1s血性浆膜腔积液经离心沉淀后，用上清液进行检查。

2、量筒的高度与蒸偏水的量要足够。

3、加入标本后马上在黑色背景下细致视察结果。如浑浊不明显，下沉缓

慢，中途消逝者为阴性。

试验十八精子活动率和活动力检查

原理：精液液化后，将精液滴于载玻片上，显微镜下视察精子的活动状况,

计算活动率和活动力Q

器材：显微镜，载玻片，盖玻片。

试剂：5g/L伊红Y染液

标本：簇新液化精液°

操作：

1s计算精子活动率取液化精液1滴于载玻片上，加盖玻片，高倍镜下视

察100个精子，计数有尾部活动精子数，计算其百分率，即精子活动率C

2、视察精子活动力在视察活动率的同时，视察精子活动的强度，将精子

活动分为a、b、c、d四个级别，即精子活动力。a级：精子呈前向快速运

动；b级：缓慢或呆滞的前向运动；c级：非前向运动；d级：死精子。

3、染色若不活动精子大于50%,可进行体外活体染色，以鉴别其死活。

取簇新液化精液和伊红Y染液1滴于载玻片上，混匀，lmin后推成薄片，

自然干燥后于显微镜（高倍镜）下视察。死精子呈红色，活精子不着色。视

察100个精子，以不着色精子的百分率报告精子活率。

留意事项：

1、排精后lh内送检，时间过长，精子活动率和活动力减低。

2、检查时留意保温，温度过低，精子活动率、活动力下降。如室温低于

10C。时，应将标本先放入37co温育5-lOmin后镜检。

试验十九精子计数

原理：采纳碳酸氢钠破坏精液的粘稠度，甲醛固定精子，然后充计数池，

显微镜下计数肯定范围内的精子数，换算成每升精液中的精子数。

试剂：精子稀释液。

标本：簇新精液化精液◊

操作：

1、取稀释液取精子稀释液0.38ml于小试管内。

2、加精液加入混匀的液化精液203,充分混匀。

3、充池取1滴精子悬液充入计数池内，静置3~5min。

4、视察高倍镜下计数中心大方格内四角与中心5个中方格内的精子数。

以精子头部作为基准进行计数。

5、计算

精子计数二5个中方格内精子数xlo'/L

精子总数二精子数/Lx精液量(ml)xl()3

如