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文档简介
ICS11.020
CCSC05
22
吉林省地方标准
DB22/T3224—2021
EGFR基因突变检测PCR技术规范
EGFRMutationDetectionPCRTechnologyStandard
2021-04–16发布2021-05-01实施
吉林省市场监督管理厅发布
DB22/T3224—2021
前言
本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定
起草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。
本文件由吉林省卫生健康委员会提出并归口。
本文件起草单位:吉林大学
本文件主要起草人:姜艳芳、何佳雪、张鹏、刘思文、刘勇、邹红雁、胡馨元、胡欣彤。
I
DB22/T3224—2021
EGFR基因突变检测PCR技术规范
1范围
本文件规定了EGFR基因突变检测的样本要求、检测方法、生物安全要求、材料与试剂、数据处理、
结果判定、废弃物处理与防止污染的措施。
本文件适用于荧光PCR法检测组织样本中EGFR基因特定突变。
2规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,
仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本
文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
GB19489实验室生物安全通用要求
SN/T1193基因检验实验室技术要求
3术语和定义
本文件没有需要界定的术语和定义。
4缩略语
下列缩略语适用于本文件。
EGFR表皮生长因子受体(EpidermalGrowthFactorReceptor)
ctDNA循环肿瘤脱氧核糖核酸(CirculatingTumorDeoxyriboNucleicAcid)
FFPE福尔马林固定石蜡包埋组织(Formalin-FixedandParrffin-Embedded)
NTC无模板对照(NoTemplateControl)
5生物安全要求
采样及检测过程所涉及的实验操作应按GB19489规定执行。
6材料与试剂
6.1仪器与耗材
6.1.1II级生物安全柜。
6.1.2涡旋混合仪。
6.1.3恒温加热器(56℃~90℃可调)。
6.1.4恒温水浴锅(可达60℃)。
1
DB22/T3224—2021
6.1.5微量移液器:10µL、100µL、200µL、1000µL。
6.1.6微量带滤芯吸头:10µL、100µL、200µL、1000µL。
6.1.7医用冰箱:2℃~8℃、-20℃、-80℃。
6.1.8离心机:10mL转子,转速不低于10000g/min,可低温离心。
6.1.9离心机:1.5mL转子,转速不低于13000g/min,可低温离心。
6.1.10实时荧光定量PCR仪。
6.1.11离心管:200µL、1.5mL、2mL、10mL、15mL。
6.2试剂
6.2.1除另有规定,本方法试验用水应符合GB/T6682规定的二级水,所用化学试剂均为分析纯。
6.2.2核酸提取试剂。
6.2.3荧光PCR试剂。
6.2.4无水乙醇。
6.2.5异丙醇。
6.2.6二甲苯。
6.2.7RNaseA。
6.2.8TE缓冲液。
7样本
7.1采集
7.1.1组织样本
石蜡包埋病理组织或切片样品应确定含有肿瘤病变细胞,将石蜡包埋病理组织或切片样品切成厚度
22
为5µm的切片,FFPE样本的组织面积应介于0.5cm~1cm,切片用量为5片。
7.1.2外周血样本
10mL,使用streck管采集,不可使用肝素抗凝剂。
7.1.3记录
样本接收记录表参见附录A。
7.2保存与运输
7.2.1FFPE样本保存在2℃~8℃低温运输,最长可以保存3年。
7.2.2streck管血液样本避光常温运输,忌暴晒、冷冻,在室温下最多可以保存3d。
8检测
8.1在试剂准备间生物安全柜内进行以下操作:
a)根据样本类型,按照样本数+2(阳性和阴性对照品各一)配制反应体系;
b)将配好的PCR体系转移至样本制备间;
8.2在样本制备间生物安全柜内进行以下操作:
2
DB22/T3224—2021
a)组织样本:刮取5片FFPE样品至1.5mL离心管中,通过脱蜡、去除RNA、柱提法等步骤提取
DNA并进行洗脱及纯化,获得可用于荧光PCR反应的待检DNA,待检的样品的DNA浓度为1.5~
3ng/µL;
b)血液样本通过进行离心、去除RNA、柱提法等步骤提取ctDNA并进行洗脱及纯化,获得可用于
荧光PCR反应的待检ctDNA;
c)根据样本类型,将适量已提取的DNA与PCR反应体系进行混合;同时设置NTC阴性和阳性对
照;
8.3在扩增间进行如下操作:
a)实时荧光定量PCR仪中进行PCR反应,组织样本检测参数见表1。
表1组织样本荧光PCR参数
温度
步骤时间循环数
℃
1955min1
9525s
26420s15
7220s
9325s
36035s31
7220s
b)实时荧光定量PCR仪中进行PCR反应,血液样本检测参数见表2。
表2血液样本荧光PCR参数
温度
步骤时间循环数
℃
19510min1
9540s
26440s15
7230s
9340s
36045s28
7230s
3
DB22/T3224—2021
9数据处理
检测完成后,计算机自动进行数据分析。
10阴阳性对照
10.1实验室对照品
10.1.1阳性对照品为临床阳性样本合成的质粒DNA与血浆DNA混合样本;阴性对照品为超纯水。
10.1.2阳性对照品检测结果为阳性;阴性对照品检测结果为阴性。
10.2内标基因
检测试剂应自带内标基因,以确认PCR检测是否正确运行。
11结果判定
11.1当检测指标值大于该指标阳性判断值时,判定为阴性。
11.2当检测指标值小于或等于该指标阳性判断值时,判定为阳性。
11.3组织样本各指标阳性判断值见表3。
表3组织样本各指标的阳性判断值
指标名称检测内容阳性判断值
E746_A750del(1)
L747_T751>Q
E746_A750del(2)
L747_E749del
L747_P753>S
L747_T751del
E746_T751>I
L747_S752del
E746_T751del
19-DelL747_A750>P26或ΔCtCut-off值<11
E746_T751>A
L747_P753>Q
E746_S752>A
L747_T751>S
E746_S752>V
L747_T751del
E746_S752>D
L747_T751>P
L747_A750>P
L858RL858R26或ΔCtCut-off值<11
T790MT790M26或ΔCtCut-off值<7
H773_V774insH
20-InsD770_N771insG26或ΔCtCut-off值<9
V769_D770insASV
G719XG719A/G719S/G719C26或ΔCtCut-off值<7
S768IS768I26或ΔCtCut-off值<8
L861QL861Q26或ΔCtCut-off值<8
4
DB22/T3224—2021
11.4血液样本各指标阳性判断值见表4。
表4血液样本各指标的阳性判断值
指标名称检测内容阳性判断值
E746_A750del(1)L747_T751>Q
E746_A750del(2)L747_E749del
L747_P753>SL747_T751del
E746_T751>IL747_S752del
E746_T751delL747_A750>P
E746_T751>AL747_P753>Q
E746_S752>AL747_T751>S
19-delE746_S752>VL747_T751delCt值FAM-Ct值HEX<11
E746_S752>DL747_T751>P
L747_A750>PL747_L747_T751del
S752>QE746_T751>VL747_A750>P
E746_T751>TE746_A750>QP
L747_K754>QLE746_T751>Q
L747_S752>Q
E746_K754>EQHL
T790MT790MCt值FAM-Ct值HEX<8
G719A/G719S/G719CG719A/G719S/G719CCt值FAM-Ct值HEX<12
H773_V774insHD770_N771insG
20-insV769_D770insASVD770_N771insSVDCt值FAM-Ct值HEX<11
V769_D770insASVH773_V774insNPH
L858RL858RCt值ROX-Ct值HEX<11
L861QL861QCt值ROX-Ct值HEX<12
S768IS768ICt值CY5-Ct值HEX<12
12废弃物处理和防止污染的措施
12.1废弃物应经121℃高压灭菌30min后再弃置。
实验室废弃物处理和防止污染的措施应按SN/T1193的规定执行。
5
DB22/T3224—2021
A
A
附录A
(资料性)
样本接收记录表
样本接收记录表见表A.1。
表A.1样本接收记录表
住院号/样本实验室
序号姓名开单科室检测项目条码号接收日期样本状态送样人
门诊号类型接收人
正常 ___
正常 ___
正常 ___
正常 ___
正常 ___
正常 ___
正常 ___
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